Em formação

Pigmento voltando ao meu cinza


No passado eu tingia meu cabelo para cobrir o grisalho, mas isso se tornou um evento mais frequente, então decidi ficar grisalho. Meu cabelo está quase todo branco há quase 20 anos. O pigmento tem voltado aos meus cabelos gradualmente nos últimos 18 meses. Você tem alguma explicação para isso? Eu tentei pesquisar isso, mas não encontrei nenhuma resposta. Existem informações sobre os motivos pelos quais o cabelo perde a pigmentação, mas não para o seu retorno. Alguma ideia?


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Tudo sobre House Wrens

NOTA: meu principal interesse em House Wrens é impedi-los de usar caixas-ninho. Embora sejam pássaros nativos, comam muitos insetos e tenham um canto alegre, eles são agressivamente territoriais e prolíficos, e opto por não incentivá-los a usar ninhos em minha trilha, especialmente porque suas populações já estão aumentando. Algumas pessoas os amam.

Espécies: Existem cerca de 31 subespécies (anteriormente tratadas como espécies separadas) da carriça doméstica, ou HOWR, divididas em 5 grupos diferentes. Esta página da web lida com o Northern House Wren (Troglodytes aedon - chamado Sylvia domestica antes de 1809). Os índios Chippewa chamavam de O-du-na-mis-sug-ud-da-we-shi, significando grande ruído para seu tamanho. Às vezes referido como "Jenny Wren". Veja também Carolina Wren, e o menos comum Bewick's Wren.

Identificação: Este pequeno pássaro marrom tem um bico longo, pontiagudo e curvo, e cauda levantada. Suas asas curtas (atarracadas) e redondas permitem que eles manobrem através da vegetação densa. Os sexos são difíceis de distinguir. Ele ostenta marrom escuro & citações sobrancelhas & quot versus o distinto Branco sobrancelha listrada do maior Carolina Wren (Thryothorus ludovianus) As vagabundas juvenis têm uma garupa marrom avermelhada e suas partes inferiores são mais escuras. A Carolina Wren tem um peito marrom quente. o Winter Wren (Troglodytes troglodytes) é menor e mais escuro, com uma cauda mais curta e mais inclinada para cima. Também é mais provável que balance a cabeça e tenha uma chamada ponta a ponta distinta. Eles são enérgicos e velozes, com pernas rosadas e pés razoavelmente grandes. o Wren de Bewick (Thryomanes bewickii) é mais esguio, pescoço bastante longo, com uma cauda longa e barrada. Seu bico é mais longo e reto do que uma carriça doméstica. Ele também tem uma longa faixa branca sobre o olho e o seio é branco. Cactus Wrens são muito grandes e parecem quase thrashers. Existem também Sedge, Marsh, Rock e Canyon Wrens.

ESPÉCIES DE WREN RELACIONADAS À CASA WREN

CARRIÇA Sobrancelha Bico Cauda Seio Pernas Cor Tamanho Habitat
Bewick's Muito ousado Mais longo, reto, esguio Longas com barras cinzas e pretas e manchas brancas de amp, muitas vezes inclinadas para cima Parte inferior do ventre branco, mais acinzentada Marrom pálido opaco Sem brilho ou laranja nas partes inferiores Menor, mais esbelto que Carolina
Carolina Ousado, branco frio Pontudo, ligeiramente decurvo Sem manchas brancas Marrom quente Plumas buffy Cabeça grande e atarracada
casa Rosto pálido e simples Mais curto que o de Bewick Mais curto que o de Bewick, sem manchas brancas Garganta suja e cinza Rosado Mais uniforme marrom, asas fortemente marcadas, plumas marrom-acinzentadas Menor, mais esbelto que Carolina
Pântano
Rocha Cantos da cauda buffy Mais branco com flancos amarelos Mais claro marrom-acinzentado acima Oeste seco
Sedge Juncos / gramíneas pantanosas
Inverno Bastante ousado Mais curto, mais frequentemente inclinado para cima Barramento mais forte na barriga e flancos Mais escuro Juncos / gramíneas pantanosas

  • Os machos podem emitir seus trinados efervescentes 3-11 vezes por minuto. Quando eles chegam pela primeira vez na primavera (cerca de 9 dias antes das fêmeas), eles poderia fique em silencio.
  • Machos e fêmeas têm alta fidelidade ao local do ninho (retornando ao mesmo território ou próximo a cada ano).
  • Tanto os machos quanto as fêmeas podem tremer suas asas durante o acasalamento, ou quando perturbados ou repreendidos.
  • Uma fêmea experiente pode manobrar 4 ou 5 gravetos para dentro do ninho no decorrer de um minuto durante a construção do ninho.
  • Ao longo de 4,5 horas, uma carriça fêmea fez 110 visitas para alimentar seus filhotes. (Judd 1900.) 98% de sua dieta consiste em insetos - principalmente insetos (como percevejos), gafanhotos, lagartas e besouros. (Beal 1897.)
  • A música House Wren pode ser considerada alta e clara ou estridente e áspera. Os índios Chippewa chamavam-no de O-du-na-mis-sug-ud-da-we-shi, o que significa muito barulho para seu tamanho (Cooke 1884).
  • As carriças domésticas ocupam a mais ampla extensão latitudinal de qualquer passeriformes nativos no Novo Mundo (BNA.org)
  • As fêmeas escolhem seu parceiro, principalmente com base na qualidade do local do ninho. (BNL.org)
  • Um macho usurpador quase sempre remove ovos existentes ou filhotes, mas a fêmea residente fica com o usurpador cerca de metade do tempo (Kermott et al 1991)
  • Os pais geralmente removem os ovos danificados e os filhotes mortos (mesmo quase totalmente crescidos) (BNA.org)
  • O nome da espécie House Wren vem de A & eumldon, Rainha de Tebas, que acidentalmente cometeu infanticídio ao tentar matar o filho de um rival.

Música: vibrante, vibrante, enérgica. Ambos os sexos cantam (homens 3-11 vezes por minuto!). Ataques de canto alto de 4-10 minutos podem indicar um macho não acasalado. Eles continuam a cantar quando acasalados. & quotA repetição persistente de suas explosões de energia nervosa tem depois de algum tempo uma tendência a cansar o ouvinte.& quot (Gross, 1948) Os machos HOWR fazem uma & quot Canção do Whisper & quot (sem abrir o bico) enquanto copulam.

Distribuição: Ubíqua em floresta fragmentada (bordas, pequenos bosques), pântanos, terras agrícolas, áreas residenciais e parques próximos a árvores e arbustos. Reproduz-se na maior parte do Canadá até a parte mais ao sul da América do Sul e nas Índias Ocidentais. Veja o mapa. Geralmente não é encontrado no deserto, ou em grandes elevações nas montanhas. Os pássaros que nidificam no sul dos EUA (por exemplo, Alabama) PODEM ser não migratórios, mas a maioria dos HOWRs migram para o sul dos EUA ou n. e o centro do México para o inverno, chegando ao norte em meados de março a meados de maio, dependendo da localização. Os pássaros mais velhos e experientes tendem a chegar mais cedo. (Alguns HOWR do sul não são migratórios? Eles migram em bandos ou sozinhos?)

Supostamente, 90% dos machos ficam em um raio de 1,25 milhas durante a temporada de nidificação (folha de dados de Fitzwater para referência)

A maioria dos indivíduos do norte deixa as áreas de reprodução entre setembro e início de novembro.

Dieta: 98% de matéria animal - geralmente criaturas menos móveis como insetos (percevejos, salteadores de folhas, etc. - 29,34% da dieta), gafanhotos, grilos, lagartas e besouros, aranhas, formigas, abelhas, vespas e moscas. Eles comem pragas como mariposas ciganas e vermes do repolho (mariposas e lagartas constituem cerca de 13,9% de sua dieta), gafanhotos e carrapatos. Os insetos benéficos constituem apenas cerca de 3% de sua dieta. (Beal 1897.) Beal não encontrou evidências de que comam frutas ou produtos agrícolas.

Comportamento de nidificação: as doninhas domésticas chegam ao território de nidificação do final de março a meados de abril ou início de maio, dependendo da latitude. Eles normalmente começam a nidificar, em média por volta de 11 de maio (1 de maio a 22 de junho por Keneigh, 1941)

A fêmea escolhe o local do ninho e pode reorganizar ou remover completamente um ninho falso colocado pelo macho. Tanto a fêmea quanto o macho constroem o ninho, mas o macho se concentra em cantar e guardar o território de nidificação.

Um macho não acasalado não dorme na cavidade do ninho, mas as fêmeas podem fazê-lo na maioria ou em todas as noites durante a construção do ninho até a formação do ninho. Ninguém sabe exatamente quanto território um HOWR masculino irá defender, embora alguns tenham especulado sobre um acre. Normalmente os ninhos ativos ficam a quase 30 a 70 metros de distância.

Os HOWRs são muito territoriais dentro de suas espécies e com outras espécies, e podem bicar e remover ovos e crias dos ninhos. A predação pode ser mais alta em áreas onde as populações de HOWR são mais altas. Mais ninhos = mais HOWR = mais predação.

Poligínico. Os pares geralmente não ficam juntos após o final da temporada de reprodução (reunindo-se apenas em menos de 4% do tempo em um estudo), e eles geralmente trocam de parceiros para ninhadas subsequentes no mesmo ano. Às vezes, um homem serve duas mulheres, pegando a segunda, enquanto a primeira está "ocupada com as tarefas domésticas". (Dobrado)

Um macho sem par alimentado com filhotes de pardais domésticos (Hills, 1924. É raro encontrar outras espécies alimentando-se de pardais - Shy encontrou apenas 2 registros).

Caixas-ninho: as pragas domésticas são aninhadores de cavidade secundária, o que significa que não podem escavar seus próprios buracos de nidificação. Tolerante com as atividades humanas. O HOWR pode preferir uma caixa com um espaço menor. Uma caixa-ninho típica recomendada para HOWR tem um 4 x 4 ", é 6-8" de profundidade, buraco 4-7 "acima do chão, 1-1,5" buraco, montado 6-10 pés acima do solo. Nidifica naturalmente em cavidades de árvores existentes, especialmente em buracos antigos de pica-paus, mas usa facilmente os ninhos. Também nidifica em várias outras fendas ou cavidades & mdashe.g., Em um vaso de flores, lata em um monte de lixo, bota, espantalho, bolso de roupa pendurada, ninho de vespas de papel (escavado primeiro). Também em um buraco em uma parede de tijolos deserta andorinha de celeiro, Baltimore Oriole, águia-pesqueira (nos interstícios profundos), robin ou ninho de phoebe, e até mesmo em um ninho de martim-pescador em uma caixa de correio de banco de areia (Bent), máquinas agrícolas, saboneteira , ou crânios de vaca pendurados nas paredes. Um par de carriças construiu seu ninho no eixo traseiro de um carro que era usado diariamente. Quando o carro foi dirigido, as carriças iam junto e os ovos chocavam. (Northcutt, 1937).

Em um estudo, quando os HOWR puderam escolher entre caixas de nidificação vermelhas, amarelas, azuis, brancas e verdes, eles preferiram o vermelho e o verde, e usaram menos o branco. (McCabe, 1960.)

Localização da caixa de ninho: o HOWR pode preferir cavidades mais próximas do solo (10,5-17,7 pés, até 30 pés) e com entradas menores (1,6-2,2 polegadas) do que outros aninhadores de cavidade na área local, e não mostra nenhuma preferência aparente por cavidades que se abrem em particular direções, para cavidades em protuberâncias versus árvores vivas, ou para cavidades em espécies de árvores particulares. Em um local da Califórnia, eles preferiam locais de nidificação mais acima do solo com uma área de piso menor e tendiam a abrir mais para o sudeste do que para o norte.

Prefere locais próximos a vegetação caduca / borda, especialmente se houver muitos protuberâncias (árvores mortas em pé). Normalmente evita locais de nidificação e gema 100 pés de qualquer vegetação lenhosa significativa, a menos que não haja outras opções. No entanto, também evita locais em locais com muita vegetação, onde a visibilidade é baixa. Eles preferem locais onde o ninho fica escondido por todos os lados, exceto no ponto de entrada.

O habitat das carriças domésticas frequentemente se sobrepõe ao habitat do chapim e do chapim, resultando em uma competição que normalmente vencem. Eu me pergunto se a fragmentação da floresta está resultando no aumento das populações de HOWR.

Raramente nidifica em fendas de rocha, buracos em bancos de areia (Winnett-Murray 1986) ou ninhos abertos (por exemplo, de Eastern Phoebes ou Barn Andorinhas).

Espaçamento: Ninhos ativos para machos diferentes geralmente são separados por mais de cerca de 30 metros (Muller et al 1997), mas às vezes por apenas 10 a 15 metros. (DeMory et al 2010).

Monitoramento: Geralmente bastante tolerante a distúrbios ocasionais nos ninhos. Após a eclosão dos ovos, os adultos pode (raramente) atacar um monitor (cuidado com os olhos!). As fêmeas podem abandonar o ninho se ficarem presas no ninho antes do ponto médio do estágio de incubação, mas geralmente não desertam mais tarde. Os filhotes tendem a se desenvolver prematuramente se forem perturbados no final do ciclo de nidificação.

No início, os ninhos podem conter & gt50.000 ácaros (ugh). Os sacos de ovos de aranhas saltadoras predatórias são frequentemente transformados em estuques usados ​​nos ninhos, e os bebês aranhas comem os ácaros (pelo menos no laboratório - no campo, eles não reduziram o número de ácaros nos ninhos reais). Alguns pesquisadores acho que os sacos de ovos de aranha / mariposa são apenas adicionados / escolhidos para decoração. (A presença de casulos não teve efeito sobre o número, massa ou condição dos bebês. (Eckerle e Thompson 2005)

Um pesquisador desenvolveu psitacose aparentemente após contrair a bactéria Chlamydia psittaci de um ninho em Minnesota (provavelmente após respirar matéria fecal seca e carregada de poeira).

Cronograma de aninhamento (típico): a reprodução geralmente ocorre de março / abril a agosto no edifício do ninho dos EUA até o início do cultivo leva cerca de 36 dias (35 a 45). Compare isso com o Wren de Bewick, que leva de 52 a 53 dias do início ao fim.

  • Chegada: a temporada de reprodução começa no final de abril para as aves que vivem no sul, no início de maio, no norte. A reprodução ocorre posteriormente em latitudes e altitudes mais altas. O macho chega primeiro, estabelecendo território com ninhos de bonecos rústicos. O macho começa a construir ninhos em cavidades vazias dentro de alguns dias, senão horas após voltar da migração. Fêmea seleciona o local de nidificação real.
  • Escavação: HOWR não escava seus próprios buracos.
  • Construção de ninho: A reprodução geralmente começa em meados de maio até o final de junho para a primeira ninhada, final de junho até meados de agosto para a segunda ninhada.
    • O macho geralmente remove o material de nidificação antigo de um local (mas geralmente reutiliza os mesmos gravetos). O macho coloca gravetos no (s) local (is) do ninho e então a fêmea seleciona a cavidade onde colocará seus ovos.
    • Ninhos falsos: machos HOWR freqüentemente constroem ninhos falsos soltos em outras cavidades próximas, de & lt10 a & gt400 gravetos. Se gravetos forem removidos repetidamente, e o casal pretende realmente usar o local do ninho, o ninho pode eventualmente consistir apenas de um material típico de copo do ninho.
    • Uma vez que a fêmea tenha selecionado um local, ela começa de novo (mas pode reutilizar gravetos do "ninho fictício" feito pelo macho). Os ninhos são terminados rapidamente em (2-3 por Dobramento) 3-14 dias pela fêmea. Consulte as informações de identificação do ninho e do ovo. Centenas de pequenos palitos secos e ásperos são colocados no fundo da cavidade para formar uma base alta de 4 a 6 polegadas de profundidade. Um ninho em Iowa era composto de "52 grampos de cabelo, 68 pregos (grandes), 120 pregos pequenos, 4 tachas, 13 grampos, 10 alfinetes, 4 pedaços de grafite, 11 alfinetes de segurança, 6 fechos de papel, 52 fios, 1 fivela , 2 ganchos, 3 fechos de liga e 2 bugigangas. " O copo estreito do ninho é eventualmente forrado com grama, casca interna, cabelo, radículas e, finalmente, penas. Ele pode estar localizado na parte traseira da cavidade para proteção contra predadores. O total de viagens aos ninhos / dia para fêmeas antes da postura dos ovos pode exceder 300 (em média cerca de 170). No final da temporada, as fêmeas podem começar a botar ovos antes que o revestimento do copo esteja completo. Em algumas cavidades, os pássaros precisam rastejar para cima e sobre montes de gravetos para alcançar os ninhos na parte traseira da cavidade, o que provavelmente protege os ovos e os filhotes da predação.
    • ID do ovoPESCOÇO: minúsculo, brilhante, de arredondado curto ovalado a oval. A cor de base é branca, densamente salpicada com pontos minúsculos de vermelho acastanhado ou marrom canela, fazendo com que o ovo pareça salmão ou marrom avermelhado. A cor é mais profunda na extremidade arredondada, e o ovo pode ter uma coroa de manchas concentradas ali. Os ovos medem em média 0,64 x 0,50 polegadas (comprimento de 0,58 a 0,70 polegadas, largura de 0,46 a 0,53 polegadas).

    Referências e mais informações:

      Ninho de carriça doméstica, ovos e fotos de jovens (Sialis.org)
  • Johnson, L. S. 1998. House Wren (Troglodytes aedon). Em The Birds of North America, No. 380 (A. Poole e F. Gill, eds.). The Birds of North America, Inc., Filadélfia, PA.
  • Cornell - The Birdhouse Network Species Bios, de Alfred Otto Gross por Althea Sherman

    Não se pode observar um par de carriças em suas repetidas tentativas de enfiar gravetos longos e pesados ​​por uma entrada de caixa estreita, apenas grande o suficiente para permitir a entrada de seus corpos minúsculos, sem ficar muito impressionado com sua persistência obstinada, energia e habilidade.
    - Alfred Otto Gross, Life Histories of Familiar North American Birds, 1948

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    Última atualização em 9 de fevereiro de 2018. Design por Chimalis.


    Este experimento demonstra visualmente como os caules ajudam a transportar água e nutrientes do solo para as partes superiores de uma planta, como as flores. Esta ação de “sucção” é uma combinação de 2 fenômenos físicos diferentes. Um é transpiração e outro é coesão. A transpiração é a evaporação lenta da água das partes superiores de uma planta, como folhas, flores e botões. À medida que as moléculas de água superiores são puxadas para cima devido ao acima exposto, as moléculas que ficam mais abaixo movem-se para cima para ocupar seu lugar devido à coesão, ou seja, a força de atração entre partículas semelhantes.

    O processo se assemelha à sucção de um líquido por um canudo. Em vez da boca aqui temos a ação de sucção da transpiração. Este fenômeno é conhecido como ação capilar, pois a água sobe através de tubos estreitos ou capilares na haste denominada xilema. Após a mudança de cor, se você abrir as hastes com uma lâmina afiada, poderá observar os tubos coloridos (originalmente incolores) correndo por todo o seu comprimento. O experimento com aipo é baseado no mesmo princípio.

    Um resumo de projeto adequado, método, conclusão e uma boa pesquisa para reunir informações básicas são os principais ingredientes para tornar este experimento de feira de ciências um sucesso. A mudança natural da cor é muito rápida e pode começar apenas uma hora após a colocação das flores no corante alimentar.


    Conteúdo

    Por si só, os indicadores de pH são freqüentemente ácidos fracos ou bases fracas. O esquema geral de reação de um indicador de pH pode ser formulado como:

    Aqui, HInd representa a forma ácida e Ind - a base conjugada do indicador. A proporção deles determina a cor da solução e conecta a cor ao valor de pH. Indicadores de pH que são protólitos fracos, a equação de Henderson-Hasselbalch para eles pode ser escrita como:

    A equação, derivada da constante de acidez, afirma que quando o pH é igual a pKuma valor do indicador, ambas as espécies estão presentes na proporção de 1: 1. Se o pH estiver acima do pKuma valor, a concentração da base conjugada é maior do que a concentração do ácido, e a cor associada à base conjugada predomina. Se o pH estiver abaixo do pKuma valor, o inverso é verdadeiro.

    Normalmente, a mudança de cor não é instantânea no pKuma valor, mas existe uma faixa de pH onde uma mistura de cores está presente. Esta faixa de pH varia entre os indicadores, mas como regra geral, fica entre o pKuma valor mais ou menos um. Isso pressupõe que as soluções retêm sua cor enquanto pelo menos 10% das outras espécies persistirem. Por exemplo, se a concentração da base conjugada é 10 vezes maior que a concentração do ácido, sua proporção é de 10: 1, e conseqüentemente o pH é pKuma + 1. Por outro lado, se um excesso de 10 vezes do ácido ocorrer em relação à base, a proporção é 1:10 e o pH é pKuma − 1.

    Para obter a precisão ideal, a diferença de cor entre as duas espécies deve ser a mais clara possível, e quanto mais estreita a faixa de pH da mudança de cor, melhor. Em alguns indicadores, como a fenolftaleína, uma das espécies é incolor, enquanto em outros indicadores, como o vermelho de metila, ambas as espécies conferem uma cor. Embora os indicadores de pH funcionem de forma eficiente em sua faixa de pH designada, eles geralmente são destruídos nas extremidades da escala de pH devido a reações colaterais indesejadas.

    Indicadores de pH são freqüentemente empregados em titulações em química analítica e biologia para determinar a extensão de uma reação química. Devido à escolha subjetiva (determinação) da cor, os indicadores de pH são suscetíveis a leituras imprecisas. Para aplicações que requerem medição precisa de pH, um medidor de pH é freqüentemente usado. Às vezes, uma mistura de diferentes indicadores é usada para obter várias mudanças suaves de cor em uma ampla faixa de valores de pH. Esses indicadores comerciais (por exemplo, indicador universal e papéis Hydrion) são usados ​​quando apenas um conhecimento aproximado do pH é necessário.

    A tabela abaixo contém vários indicadores de pH comuns de laboratório. Os indicadores geralmente exibem cores intermediárias em valores de pH dentro da faixa de transição listada. Por exemplo, o vermelho de fenol exibe uma cor laranja entre pH 6,8 e pH 8,4. A faixa de transição pode mudar ligeiramente dependendo da concentração do indicador na solução e da temperatura na qual ele é usado. A figura à direita mostra indicadores com sua faixa de operação e mudanças de cor.

    Indicador Cor de baixo pH Transição
    baixo nível
    Transição
    ponta alta
    Cor de pH alto
    Violeta de genciana (violeta de metila 10B) amarelo 0.0 2.0 azul-violeta
    Verde malaquita (primeira transição) amarelo 0.0 2.0 verde
    Verde malaquita (segunda transição) verde 11.6 14.0 incolor
    Azul timol (primeira transição) vermelho 1.2 2.8 amarelo
    Azul timol (segunda transição) amarelo 8.0 9.6 azul
    Amarelo metílico vermelho 2.9 4.0 amarelo
    Azul de bromofenol amarelo 3.0 4.6 azul
    Vermelho congo azul-violeta 3.0 5.0 vermelho
    Laranja de metila vermelho 3.1 4.4 amarelo
    Laranja de metila filtrada (primeira transição) vermelho 0.0 3.2 cinza-púrpura
    Laranja de metila filtrada (segunda transição) cinza-púrpura 3.2 4.2 verde
    Verde de bromocresol amarelo 3.8 5.4 azul
    Vermelho de metila vermelho 4.4 6.2 amarelo
    Roxo metílico roxa 4.8 5.4 verde
    Azolitmin (tornassol) vermelho 4.5 8.3 azul
    Bromocresol roxo amarelo 5.2 6.8 roxa
    Azul de bromotimol (primeira transição) magenta & lt0 6.0 amarelo
    Azul de bromotimol (segunda transição) amarelo 6.0 7.6 azul
    Vermelho de fenol amarelo 6.4 8.0 vermelho
    Vermelho neutro vermelho 6.8 8.0 amarelo
    Naftolftaleína vermelho pálido 7.3 8.7 azul-esverdeado
    Vermelho cresol amarelo 7.2 8.8 roxo-avermelhado
    Cresolftaleína incolor 8.2 9.8 roxa
    Fenolftaleína (primeira transição) laranja-avermelhado & lt0 8.3 incolor
    Fenolftaleína (segunda transição) incolor 8.3 10.0 roxo Rosa
    Fenolftaleína (terceira transição) roxo Rosa 12.0 13.0 incolor
    Timolftaleína (primeira transição) vermelho & lt0 9.3 incolor
    Timolftaleína (segunda transição) incolor 9.3 10.5 azul
    Alizarine Yellow R amarelo 10.2 12.0 vermelho
    Índigo carmim azul 11.4 13.0 amarelo

    Edição de Indicador Universal

    faixa de pH Descrição Cor
    1-3 Ácido forte vermelho
    3 – 6 Ácido fraco Laranja amarelo
    7 Neutro Verde
    8 – 11 Base fraca Azul
    11-14 Base forte Violeta / Indigo

    Edição de medição precisa de pH

    Um indicador pode ser usado para obter medições bastante precisas de pH medindo a absorbância quantitativamente em dois ou mais comprimentos de onda. O princípio pode ser ilustrado tomando o indicador como um ácido simples, HA, que se dissocia em H + e A -.

    O valor da constante de dissociação de ácido, pKuma, deve ser conhecido. As absorbâncias molares, εHA e εA - das duas espécies HA e A - em comprimentos de onda λx e λy também deve ter sido determinado por experimento anterior. Supondo que a lei de Beer seja obedecida, as absorbâncias medidas UMAx e UMAy nos dois comprimentos de onda são simplesmente a soma das absorbâncias devidas a cada espécie.

    Estas são duas equações nas duas concentrações [HA] e [A -]. Uma vez resolvido, o pH é obtido como

    Se as medições forem feitas em mais de dois comprimentos de onda, as concentrações [HA] e [A -] podem ser calculadas por mínimos quadrados lineares. Na verdade, todo um espectro pode ser usado para esse fim. O processo é ilustrado para o indicador verde de bromocresol. O espectro observado (verde) é a soma dos espectros de HA (ouro) e de A - (azul), ponderados pela concentração das duas espécies.

    Quando um único indicador é usado, este método é limitado a medições na faixa de pH pKuma ± 1, mas este intervalo pode ser estendido usando misturas de dois ou mais indicadores. Como os indicadores têm espectros de absorção intensos, a concentração do indicador é relativamente baixa e o próprio indicador é considerado como tendo um efeito insignificante no pH.

    Em titulações ácido-base, um indicador de pH inadequado pode induzir uma mudança de cor na solução que contém o indicador antes ou depois do ponto de equivalência real. Como resultado, diferentes pontos de equivalência para uma solução podem ser concluídos com base no indicador de pH usado. Isso ocorre porque a menor mudança de cor da solução contendo o indicador sugere que o ponto de equivalência foi alcançado. Portanto, o indicador de pH mais adequado tem uma faixa de pH eficaz, onde a mudança na cor é aparente, que abrange o pH do ponto de equivalência da solução sendo titulada. [3]

    Muitas plantas ou partes de plantas contêm produtos químicos da família de compostos das antocianinas naturalmente coloridas. Eles são vermelhos em soluções ácidas e azuis em soluções básicas. As antocianinas podem ser extraídas com água ou outros solventes de uma infinidade de plantas coloridas são partes de plantas, incluindo folhas (repolho roxo), flores (gerânio, papoula ou pétalas de rosa), bagas (mirtilos, groselha preta) e caules (ruibarbo). Extrair antocianinas de plantas domésticas, especialmente repolho roxo, para formar um indicador de pH bruto é uma demonstração introdutória de química popular.

    Torneio, usado por alquimistas na Idade Média e ainda disponível, é um indicador de pH de ocorrência natural feito de uma mistura de espécies de líquen, particularmente Roccella tinctoria. A palavra tornassol é literalmente de 'musgo colorido' em nórdico antigo (ver Litr). A cor muda entre vermelho em soluções ácidas e azul em álcalis. O termo 'teste de tornassol' tornou-se uma metáfora amplamente usada para qualquer teste que pretenda distinguir com autoridade entre alternativas.

    Hydrangea macrophylla as flores podem mudar de cor dependendo da acidez do solo. Em solos ácidos, ocorrem reações químicas no solo que disponibilizam o alumínio para essas plantas, tornando as flores azuis. Em solos alcalinos, essas reações não podem ocorrer e, portanto, o alumínio não é absorvido pela planta. Como resultado, as flores permanecem rosadas.

    Outro indicador de pH natural útil é a especiaria açafrão. É amarelo quando exposto a ácidos e marrom avermelhado quando na presença de um álcali.


    Pigmento voltando ao meu cinza - Biologia

    Nome científico: Meteagris gallopava silvestris
    Nome comum: Leste da Turquia Selvagem

    (As informações para a página desta espécie foram reunidas pela Sra. Sherri Fawcett como parte de uma tarefa na Biologia 220W, primavera de 2004)

    O peru selvagem oriental (Meteagris gallopava silvestris) é a subespécie mais abundante e de ocorrência mais ampla dos cinco tipos de perus selvagens. Sua distribuição natural inclui quase todo o leste dos Estados Unidos. O peru selvagem é a maior ave de caça da América do Norte. Os perus machos (& ldquogobblers & rdquo) têm entre 2 & frac12 e 3 pés de altura e pesam em média 16 libras (com alguns indivíduos pesando consideravelmente maiores!). Os perus fêmeas (& ldquohens & rdquo) têm em média 60 centímetros de altura e pesam em média 4 a 5 kg. Gobblers têm penas pretas brilhantes, uma cabeça vermelha, um red & ldquobeard & rdquo que pode ter até 30 centímetros de comprimento e esporas afiadas em suas pernas. As galinhas são mais opacas, cinza-escuro e raramente têm esporas ou barbas. Existem muitas variações na cor (branco ao marrom avermelhado), algumas das quais podem ser devido a características genéticas e outras devido a deficiências nutricionais.

    Gama, Habitat e Dieta
    O peru selvagem forma bandos predominantemente de um único gênero, que podem variar em tamanho de 5 a 50 indivíduos. Um rebanho pode utilizar uma área de vida de mais de 1000 acres. Uma característica fundamental de uma variedade ótima de perus é a diversidade de habitats individuais (incluindo campos, prados, bosques, etc.). Cada um desses habitats é necessário para fornecer diferentes aspectos das necessidades de alimentação, alojamento e reprodução dos perus. Perus selvagens são especialmente abundantes em florestas úmidas a pantanosas, arbustos em estágios iniciais de sucessão ecológica e matas abertas. Os perus se empoleiram à noite nas árvores e passam grande parte de seus dias (especialmente nas primeiras horas do dia e no final do dia) em busca de comida de forma oportunista.

    Os perus são onívoros e consomem uma grande variedade de alimentos, dependendo da estação e da disponibilidade de alimentos. Na primavera, eles comem brotos de plantas, botões, insetos, tubérculos e qualquer mastro de inverno (bolotas, etc.). No verão, eles consomem vegetação e muitos insetos grandes (especialmente gafanhotos e besouros), outros invertebrados (caracóis, lesmas, aranhas, carrapatos e centopéias) e muitos pequenos vertebrados (incluindo salamandras, sapos, lagartos e até pequenas cobras). No outono, eles comem o mastro, frutas e sementes recém-caídos e também resíduos de grãos dos campos agrícolas. O mastro é especialmente importante para os perus, e bons anos de produção de mastros quase sempre levam a um aumento em suas populações.

    Predadores
    Os perus selvagens têm excelente visão e audição muito apurada. Eles utilizam esses sistemas sensoriais tanto para encontrar comida quanto para evitar predadores. É muito difícil para um predador (ou caçador ou caminhante) chegar perto de perus na natureza. Eles geralmente estão bem cientes da presença de qualquer intruso muito antes que o & ldquohunter & rdquo perceba a localização do pássaro. Os perus se movem principalmente a pé e podem correr facilmente a 20 km / h e, de acordo com uma fonte, até 40 km / h! Eles são capazes de voos curtos e podem alcançar, quando necessário, velocidades muito rápidas (até 55 mph!). As neves profundas podem inibir muito a capacidade dos perus de se locomoverem e encontrarem comida. A neve profunda e persistente pode reduzir muito o tamanho da população de perus selvagens e pode ser o principal fator na limitação da expansão para o norte de sua distribuição no Canadá.

    Rebanhos e territórios
    Bandos de perus selvagens têm estruturas sociais distintas, especialmente nos bandos de gobbler. A luta ritualizada (desafios vocais) e real entre os perus machos é uma ocorrência comum e serve para definir e redefinir a & ldquopecking order & rdquo do rebanho, especialmente no que diz respeito ao direito e oportunidade de reprodução. As lutas também podem ocorrer entre gobblers de bandos diferentes, pois eles afirmam a propriedade de territórios inteiros ou sobreposições significativas de territórios adjacentes. Os bandos de galinhas geralmente são constituídos exclusivamente por galinhas com filhotes ou por galinhas sem filhotes.

    Acasalamento e Reprodução
    No início da primavera, os gobblers marcam um território de reprodução individual e começam a & ldquogobble & rdquo ruidosamente para atrair as fêmeas. Quando uma galinha chega ao campo de visão do gobbler, ela para de vocalizar e começa uma dança ritualizada na qual abana sua cauda larga, estufando as penas do corpo e abrindo e arrastando suas asas enquanto se pavoneia. Gobblers também podem fazer um som de tambor por meio das contrações de seus músculos peitorais. O acasalamento ocorre então, e a fêmea parte em busca de um habitat de nidificação. Os machos então retomarão a vocalização e a dança e se acasalarão com o maior número possível de fêmeas.

    A fêmea é capaz de armazenar espermatozóides e, portanto, atrasar a fertilização por até 8 semanas, dependendo das condições climáticas e da disponibilidade de habitats de nidificação adequados. Um habitat de nidificação ideal é normalmente em arbustos densos, gramíneas altas ou em áreas com abundantes árvores caídas. Os ninhos consistem em uma depressão rasa no solo, forrada e coberta por folhas secas e outros pedaços de vegetação. Os ovos são postos um por dia durante um período de 8 a 20 dias. Normalmente, 10 a 15 ovos são depositados no ninho. Os ovos têm 2 e 30 cm de comprimento, cor marrom claro com manchas marrons. A fêmea cobre cada ovo posto com folhas e então se empoleira em uma árvore próxima até que todos os seus ovos tenham sido postos. Só então ela começa a incubação. Depois de iniciar a incubação, ela pode sentar-se no ninho quase continuamente por 28 dias.

    No final do período de incubação, os perus jovens (& ldquopoults) laboriosamente soltam suas cascas e são conduzidos quase imediatamente pela galinha para um dormitório no solo. Pelas próximas duas semanas, os perus e a galinha ficarão empoleirados em um habitat terrestre o mais escondido e seguro possível. Este é o momento, porém, em que uma porcentagem significativa dos peruzinhos é tomada por uma grande variedade de predadores. Metade a três quartos de cada temporada e perus rsquos não sobreviverão ao primeiro ano de vida. At two weeks, the poults are capable of flying up into tree roosts and soon after the hen and her surviving poults will rejoin a hen-and-poult flock. The average life expectancy of a poult is about 1 ½ years. Turkeys that survive their first year, though, have little to fear from any predator (except humans) and can live up to 15 years in their natural habitats. In the fall, young gobblers will leave the hen flocks and form or join gobbler flocks.

    Predadores
    Predators of wild turkeys are most significant during the first weeks through the first year of life, as mentioned above. Raccoons, gray and red foxes, dogs, feral cats, opossums, skunks, large birds (like crows and hawks), large snakes, and even chipmunks and gray and red squirrels all will actively prey on young turkeys and also turkey eggs.

    Population Control in Pennsylvania
    Wild turkey populations in Pennsylvania have undergone dramatic changes over the past 100 years. The formerly abundant turkey was in the early decades of the 20th Century nearly extinct within the boundaries of the commonwealth (population estimates were below 5000 individuals that were primarily located in very isolated habitat areas of Pennsylvania). Aggressive action by the State Game Commission, though, to control and limit hunting and to initiate captive breeding and release programs enabled the wild turkey population to be re-established. In the late 1970&rsquos turkey sightings in the fields and woods of Pennsylvania were still uncommon events, but by the 1990&rsquos turkeys were a regularly observed component of our fauna (a recent population estimate of wild turkeys in Pennsylvania indicates that there are over 400,000 individuals widely distributed across the commonwealth).

    There are many wild turkeys out on our nature trail. If you walk the trail quietly, you may see one. But you should know that they will see you long before you notice them!

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    Heat, Electrons, and Flame Test Colors

    The flame test is all about thermal energy, electrons, and the energy of photons.

    1. Clean a platinum or nichrome wire with acid.
    2. Moisten the wire with water.
    3. Dip the wire into the solid you're testing, making sue that a sample sticks to the wire.
    4. Place the wire in the flame and observe any change in the flame color.

    The colors observed during the flame test result from the excitement of the electrons caused by the increased temperature. The electrons "jump" from their ground state to a higher energy level. As they return to their ground state, they emit visible light. The color of the light is connected to the location of the electrons and the affinity the outer-shell electrons have to the atomic nucleus.

    The color emitted by larger atoms is lower in energy than the light emitted by smaller atoms. So, for example, strontium (atomic number 38) produces a reddish color, while sodium (atomic number 11) produces a yellowish color. The sodium ion has a stronger affinity for the electron, so more energy is required to move the electron. When the electron does move, it reaches a higher state of excitement. As the electron returns to its ground state, it has more energy to disperse, which means the color has a higher frequency/shorter wavelength.

    The flame test can be used to distinguish between the oxidation states of atoms of a single element, too. For example, copper(I) emits blue light during the flame test, while copper(II) emits green light.

    A metal salt consists of a component cation (the metal) and an anion. The anion can affect the result of the flame test. For example, a copper(II) compound with a non-halide produces a green flame, while a copper(II) halide yields a blue-green flame.


    The Euglena

    Euglena are unicellular organisms classified into the Kingdom Protista, and the Phylum Euglenophyta. All euglena have chloroplasts and can make their own food by photosynthesis. They are not completely autotrophic though, euglena can also absorb food from their environment euglena usually live in quiet ponds or puddles.

    Euglena move by a flagellum (plural &sbquo flagella), which is a long whip-like structure that acts like a little motor. The flagellum is located on the anterior (front) end, and twirls in such a way as to pull the cell through the water. It is attached at an inward pocket called the reservoir. Color the reservoir grey and the flagellum black.

    The Euglena is unique in that it is both heterotrophic (must consume food) and autotrophic (can make its own food). Chloroplasts within the euglena trap sunlight that is used for photosynthesis, and can be seen as several rod like structures throughout the cell. Color the chloroplasts green. Euglena also have an eyespot at the anterior end that detects light, it can be seen near the reservoir. This helps the euglena find bright areas to gather sunlight to make their food. Color the eyespot red. Euglena can also gain nutrients by absorbing them across their cell membrane, hence they become heterotrophic when light is not available, and they cannot photosynthesize.

    The euglena has a stiff pellicle outside the cell membrane that helps it keep its shape, though the pellicle is somewhat flexible and some euglena can be observed scrunching up and moving in an inchworm type fashion. Color the pellicle blue.

    In the center of the cell is the nucleus, which contains the cell's DNA and controls the cell's activities. The nucleolus can be seen within the nucleus. Color the nucleus purple, and the nucleolus pink.

    The interior of the cell contains a jelly-like fluid substance called cytoplasm. Color the cytoplasm light yellow. Toward the posterior of the cell is a star-like structure: the contractile vacuole. This organelle helps the cell remove excess water, and without it the euglena could take in some much water due to osmosis that the cell would explode. Color the contractile vacuole orange.

    Color the Euglena according to the directions. Organelles can be identified based on their descriptions and locations Answer the following questions

    1. Are euglena unicellular or multicellular?

    2. What Kingdom do euglena belong to? What Phylum?

    3. What organelle carries out photosynthesis?

    4. On which end is the flagellum located?

    7. Describe the two ways in which the euglena get their nutrients.

    8. What is the eyespot used for?

    9. What is the function of the nucleus?

    10. What is the function of the contractile vacuole?

    What would happen if the cell did not have this organelle ?

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