Em formação

O que é esse minúsculo inseto?


Tirei esta foto no centro do México. O inseto tem cerca de 1 mm de tamanho. Encontrei muitos deles mortos sobre uma mesa, tantos que a princípio pensei que fossem apenas pó. Suponho que tenham vindo de uma planta que ficava acima da mesa.

Alguém sabe o que pode ser?

EDITAR:

Encontrei o culpado andando por perto! Acho que isso confirma o que outros apontaram: parece ser a cutícula muda de um pulgão. (desculpe pela má qualidade das fotos)

Muito obrigado!


Já que você sugere que eles vêm de uma planta, eles podem ser pulgões secos. Esses insetos geralmente se alimentam de seiva de plantas, e eu já notei alguns pequeninos, brancos e aparentemente mortos nas plantas.

Como sugerido nos comentários, na verdade não são pulgões mortos, mas apenas a cutícula que deixam após a muda, ou ecdise.


Qual é o menor inseto da Terra? -Laurenz, 8, Molino, Filipinas

Quando vi sua pergunta, comecei a explorar com minha rede de insetos e uma lupa. Eu estava procurando por minúsculos insetos quando encontrei minha amiga Laura Lavine, uma cientista da Washington State University que estuda insetos.

Ela disse que há quase um milhão de tipos diferentes de insetos na Terra. O menor de todos os conhecidos são chamados de borboletas.

Como todos os insetos, as borboletas têm seis patas. E como a maioria dos insetos, eles também têm asas. Alguns nadam debaixo d'água e usam suas asas como remos. Suas asas também são um pouco peludas. Acontece também que a mosca não é realmente uma mosca. É uma espécie de vespa.

“Eles são quase impossíveis de detectar a olho nu”, disse Lavine.

Na verdade, as moscas das fadas são quase 400 vezes menores do que a formiga típica. E eles têm cerca de duas ou três vezes a largura de um cabelo humano.

Imagino que encontrar uma mosca das fadas seria como encontrar uma agulha em um palheiro. Você teria que manter um olho atento.

Comecei a me perguntar como exatamente os entomologistas poderiam localizar essas minúsculas borboletas ou outros tipos de pequenos insetos na natureza. Por exemplo, alguns anos atrás, os cientistas descobriram um novo tipo de mosca das fadas na Costa Rica. Foi nomeado Tinkerbella nana depois da fada de Peter Pan.

Lavine explicou que os cientistas costumam usar redes ou armadilhas para capturar os insetos. Às vezes, eles precisam vasculhar a sujeira e o lixo, ou folhas em decomposição, uma colher de chá de cada vez para ver o que conseguem encontrar.

Os cientistas também podem usar o que sabem sobre o comportamento e habitat do inseto para ajudar a rastreá-los. Os Fairyfly, apesar de seu nome bonito, são insetos assassinos. Eles colocam ovos dentro do ovo de um inseto hospedeiro. Quando o ovo da mosca das fadas choca, ela come o ovo hospedeiro. Se mantivermos nossos olhos abertos para seus insetos hospedeiros e seus ovos, também poderemos encontrar a mosca das fadas.

As borboletas são importantes para o meio ambiente, acrescentou Lavine. Agricultores e cientistas podem usar borboletas para ajudar a se livrar de insetos maiores que danificam videiras, amoras e cana-de-açúcar. Essas criaturas minúsculas nos ajudam a fazer um grande trabalho.

O mundo dos insetos está cheio de criaturas interessantes. Pensar no menor inseto também me fez pensar no maior inseto do nosso planeta. O maior bug é uma bengala gigante. Tem quase 60 centímetros de comprimento. Mas quem sabe? Pode haver insetos ainda maiores ou até insetos menores que ainda não descobrimos rastejando em nosso planeta.

Obrigado pela sua pergunta, Laurenz. Isso me lembra que mesmo as pequenas coisas podem nos inspirar a imaginar grande.


Pequenos insetos alpinos são grandes mensageiros da mudança climática

West Glacier, Mont. - Dois raros insetos alpinos - nativos do norte das Montanhas Rochosas e dependentes de águas frias de geleiras e riachos alpinos alimentados com derretimento de neve - estão em perigo devido ao aquecimento climático induzido pela geleira e pela perda de neve, de acordo com um estudo do U.S. Geological Survey e seus parceiros.

O estudo de 20 anos fornece a primeira avaliação abrangente do status atual, distribuição e requisitos de habitat para cada espécie e foi usado para informar a revisão do status para consideração de proteção sob a Lei de Espécies Ameaçadas dos EUA devido à perda de habitat induzida pela mudança climática.

Os pesquisadores descobriram que a mosca-da-pedra e a mosca-pedra da geleira ocidental têm uma distribuição estreita e estão restritas a seções curtas de riachos alpinos, muitas vezes abaixo das geleiras, com previsão de desaparecimento nas próximas duas décadas.

“Os insetos aquáticos alpinos que vivem em geleiras e riachos alimentados pela neve estão adaptados a temperaturas de água muito frias e, portanto, são especialmente vulneráveis ​​ao aquecimento e à perda de neve e gelo”, disse Joe Giersch, entomologista do USGS e principal autor do estudo. “Embora esta pesquisa se concentre em duas espécies de insetos, nossas descobertas se aplicam a comunidades inteiras de organismos de riachos alpinos, cuja sobrevivência depende da presença de gelo e neve permanentes alimentando os riachos em que vivem.”

Ao longo da duração do estudo, os pesquisadores amostraram 272 riachos alpinos no Parque Nacional Glacier, onde os insetos são nativos, e outras áreas fora da distribuição conhecida nas Montanhas Rochosas de Montana e Wyoming.

O meltwater stonefly foi encontrado em 113 riachos dentro do Parque Nacional Glacier e áreas circunvizinhas. A probabilidade de encontrar o inseto aumentou com as temperaturas frias dos rios e a proximidade de geleiras e campos de neve permanentes, e diminuiu com o aumento da distância da fonte do rio.

A geleira ocidental stonefly foi encontrada apenas em 10 riachos, seis no Parque Nacional Glacier e quatro em cadeias de montanhas a quase 400 milhas a sudoeste.

Ambos os stoneflies estavam presentes em fontes alpinas alimentadas com água subterrânea, que podem fornecer refúgio quando as condições dos riachos alpinos diminuem.

Os ambientes de riachos alpinos no norte das Montanhas Rochosas são especialmente vulneráveis ​​às mudanças climáticas devido ao rápido aquecimento, resultando na perda de geleiras e neve acumulada. O Parque Nacional Glacier é um ícone dos impactos combinados das mudanças climáticas e da perda de neve e gelo - mais de 80% das geleiras do parque foram perdidas desde meados do século XIX.

Este estudo traz à tona como uma espécie obscura pode ser verdadeiras sentinelas biológicas da mudança climática, pois sua sobrevivência depende de um habitat que está se fragmentando e degradando rapidamente, dificultando sua adaptação. Os resultados fornecem um raro exemplo que liga a perda de habitat induzida pelas mudanças climáticas com implicações de conservação para espécies raras e pouco estudadas.

"Ao vincular claramente o declínio da geleira à perda de espécies alpinas, podemos afirmar com mais segurança as ameaças à conservação das espécies alpinas no Parque Nacional Glacier e também estender a discussão a situações semelhantes em todo o mundo", disse Scott Hotaling, candidato ao doutorado na Universidade de Kentucky e co-autor do estudo.

“Essas mosca-pedra estão se retirando montanha acima em busca de água fria, mas não há para onde ir porque estão literalmente no topo do continente”, diz Clint Muhlfeld, ecologista da USGS e coautor do estudo. “A perda de geleira e neve induzida pelo aquecimento global não apenas ameaça algumas espécies de extinção, mas também tem efeitos de longo alcance na biodiversidade regional e global.”

O estudo é um esforço colaborativo entre o USGS, a Universidade de Kentucky, a Universidade de Montana e o Parque Nacional Glacier.

Mais informações sobre os impactos do clima em insetos alpinos raros podem ser encontradas no site do USGS Northern Rocky Mountain Science Center.


MATERIAIS E MÉTODOS

Como a viscosidade e as interações da asa flexível com o ar são importantes nesta escala, uma simulação numérica direta do problema de interação fluido-estrutura totalmente acoplado é apropriada. Neste artigo, o método de contorno imerso (Peskin, 2002 Zhu e Peskin, 2002) é usado para simular duas asas flexíveis imersas em um fluido viscoso e incompressível. O método de limite imerso tem sido usado com sucesso para modelar uma variedade de problemas na dinâmica de fluidos biológicos. Esses problemas geralmente envolvem as interações entre fluidos viscosos incompressíveis e limites elásticos deformáveis. Alguns exemplos de problemas biológicos que foram estudados com o método de limite imerso incluem locomoção de animais aquáticos (Fauci, 1990 Fauci e Fogelson, 1993 Fauci e Peskin, 1988), fluxo sanguíneo cardíaco (Kovacs et al., 2001 McQueen e Peskin, 1997 McQueen e Peskin, 2000 McQueen e Peskin, 2001) e fluxos ciliares (Grunbaum et al., 1998).

Neste artigo, o é definido como 10, correspondendo ao caso de alguns dos menores insetos voadores, como Thripidae frankliniella(Sunada et al., 2002). A rigidez de flexão adimensional varia de cerca de 0,25 a 4. A massa de um tripes é de cerca de 6,0 × 10-8 kg (Tanaka, 1995) e seu comprimento de asa é de cerca de 0,75 mm. Supondo que uma asa pese cerca de 3,0 × 10 -9 kg (isto é 1/20 da massa total, e as asas emplumadas provavelmente pesem muito menos) e o comprimento da asa seja 0,75 mm, ρ s seria aproximadamente igual a 4,0 × 10 –6 kg m –1. Dada uma corda da asa de cerca de 0,25 mm e uma densidade do ar de 1,2 kg m –3, m′ Seria igual a 0,016. Como esse valor é muito menor que um, os efeitos da inércia na asa são ignorados. A asa é modelada como um limite sem massa que resiste a flexões e alongamentos.

A ideia básica por trás do método numérico de limite imerso é a seguinte.

Em cada etapa de tempo, calcule as forças que os limites impõem ao fluido. Essas forças são determinadas pela deformação dos limites elásticos. Forças externas adicionais usadas para conduzir o movimento do limite também podem ser aplicadas ao fluido.

Espalhe a força da grade Lagrangiana descrevendo a posição dos limites para a grade cartesiana usada para resolver as equações de Navier-Stokes.

Resolva as equações de Navier-Stokes para um intervalo de tempo.

Use o novo campo de velocidade para atualizar a posição do limite. O limite é movido na velocidade do fluido local, impondo a condição de não escorregamento.

Mais detalhes sobre o método de limite imerso e sua discretização podem ser encontrados no Apêndice.

Simulações numéricas

As simulações numéricas bidimensionais de vôo neste artigo foram construídas para serem semelhantes aos experimentos físicos de Dickinson e Götz (Dickinson e Götz, 1993) e simulações numéricas bidimensionais anteriores de palmas e arremessos (Miller e Peskin, 2005). Dickinson e Götz usaram uma asa de alumínio com uma corda de 5 cm imersa em uma solução de sacarose com uma viscosidade cinemática de 0,0000235 m 2 s –1 (cerca de 20 vezes a da água) movendo-se com uma velocidade característica na faixa de 0,04–0,12 ms -1. As dimensões do tanque de sacarose usado no experimento físico eram de 1 m de comprimento por 0,4 m de largura. Os mesmos parâmetros listados para este experimento físico foram usados ​​em todos os seguintes experimentos numéricos, com duas exceções: (1) o tamanho do tanque computacional foi aumentado para reduzir os efeitos de parede em níveis inferiores e (2) a velocidade de translação foi alterada para simular = 10. Nas simulações a seguir, usamos um tanque computacional com tamanho de 1 m × 1 m. Por conveniência numérica, colocamos este tanque dentro de um domínio periódico ligeiramente maior, de tamanho (1 m + 30 h) × (1 m + 30 h),Onde h= Δx= Δy é a largura da malha de nossa grade fluida. As bordas do tanque computacional são feitas de pontos de limite imersos que são ligados por molas rígidas a pontos de destino estacionários. A região dentro das quatro paredes é chamada de 'tanque computacional'. As equações de Navier-Stokes foram resolvidas em uma grade cartesiana 1230 × 1230, e cada asa foi discretizada em uma matriz Lagrangiana de 120 pontos. Miller e Peskin (Miller e Peskin, 2005) apresentaram uma análise de convergência que mostrou que este tamanho de malha está dentro da faixa de convergência para o problema de duas asas em abaixo de 100.

A menos que seja declarado de outra forma, o movimento das asas flexíveis foi prescrito fixando-se pontos-alvo no topo 1/5 do limite ao longo da borda dianteira da asa com molas (Fig. 2). Os pontos alvo se moviam com o movimento prescrito e aplicavam uma força ao limite proporcional à distância entre o alvo e os pontos limites correspondentes. O 4/5 inferior da asa (borda de fuga) estava livre para dobrar. Isso tem o efeito de modelar uma asa flexível com uma borda de ataque rígida. No caso "quase rígido", as molas foram presas a pontos-alvo ao longo de todo o comprimento da asa, o que evitou qualquer deformação significativa. O coeficiente de rigidez dimensional das molas que ligam os pontos de limite aos pontos alvo foi ktarg= 1,44 × 10 5 kg s -2, e o coeficiente de rigidez para a tensão ou compressão da asa também foi definido como kstr= 1,44 × 10 5 kg s –2. Esses valores foram escolhidos para evitar qualquer estiramento ou deformação significativa das asas na caixa rígida.

A rigidez dimensional de flexão ou flexão da asa variou de kfeixe= 0,125 κ a 2 κ Nm 2, ondeκ = 5,5459 × 10 –6 Nm 2. Como afirmado acima, esta faixa de rigidez à flexão corresponde a valores adimensionais que variam de 0,25 a 4. Escolhemos este valor de κ para representar o caso em que as deformações durante a translação são pequenas, mas a flexão ocorre quando as asas estão próximas. Esta faixa de valores foi encontrada para produzir deformações que são qualitativamente semelhantes às observadas em vídeos de vôo.

Desenho da asa flexível. O domínio do fluido é representado como uma grade cartesiana e os pontos de fronteira (asa) são representados como círculos vermelhos. Esses pontos interagem com o fluido e se movem na velocidade local do fluido. As molas verdes representam a rigidez à flexão e alongamento do limite. O movimento desejado da asa é prescrito pelos pontos-alvo ao longo do 1/5 superior da asa, mostrados acima como círculos azuis. Esses pontos não interagem com o fluido e se movem de acordo com o movimento desejado da asa. Eles também aplicam uma força ao limite real através da as molas alvo (molas amarelas). Como as molas alvo estão conectadas apenas ao bordo de ataque da asa, isso tem o efeito de fazer uma asa com um bordo de ataque rígido e bordo de fuga flexível.

Desenho da asa flexível. O domínio do fluido é representado como uma grade cartesiana e os pontos de fronteira (asa) são representados como círculos vermelhos. Esses pontos interagem com o fluido e se movem na velocidade local do fluido. As molas verdes representam a rigidez à flexão e alongamento do limite. O movimento desejado da asa é prescrito pelos pontos-alvo ao longo do 1/5 superior da asa, mostrados acima como círculos azuis. Esses pontos não interagem com o fluido e se movem de acordo com o movimento desejado da asa. Eles também aplicam uma força ao limite real através da as molas alvo (molas amarelas). Como as molas alvo estão conectadas apenas ao bordo de ataque da asa, isso tem o efeito de fazer uma asa com um bordo de ataque rígido e bordo de fuga flexível.

Para os menores insetos que provavelmente se transportam em rajadas de vento, usamos a razão entre a força de sustentação média produzida durante o golpe e a força de arrasto média como uma medida simples de eficiência de vôo. A sustentação (o componente vertical da força) é gerada para ajudar a manter os insetos flutuando enquanto o arrasto (o componente horizontal da força) é de menos importância, uma vez que qualquer impulso produzido provavelmente seria inundado por rajadas de vento. Essa métrica é particularmente apropriada quando as asas estão próximas umas das outras porque o componente horizontal da força atuando em cada asa é cancelado. Vale a pena notar que uma série de outras medidas de eficiência são usadas na literatura, muitas das quais são provavelmente mais apropriadas para insetos de médio a grande porte (por exemplo, Wang, 2004).

Cinemática dos golpes de palmas e arremessos

Descrições quantitativas da cinemática da batida das asas dos menores insetos voadores estão atualmente indisponíveis. Em parte, isso se deve ao fato de esses insetos serem extremamente difíceis de filmar. Muitos desses insetos podem ter até 0,25 mm de comprimento e bater suas asas em frequências de 200 Hz ou mais (Dudley, 2000). Os autores sabem de vários vídeos de alta velocidade não publicados de Thysanoptera, Muscidifurax raptor e Nasonia vitripennis filmado de uma única câmera, mas a reconstrução quantitativa da cinemática da batida de asa não é possível de um ângulo de câmera. A cinemática de voo simplificada de gonorréia e arremesso usada neste artigo são semelhantes às usadas por Lighthill (Lighthill, 1973), Bennett (Bennett, 1977), Maxworthy (Maxworthy, 1979), Spedding e Maxworthy (Spedding e Maxworthy, 1986), Sun e Xin (Sun e Xin, 2003), Miller e Peskin (Miller e Peskin, 2005) e Chang e Sohn (Chang e Sohn, 2006) para investigar a aerodinâmica de vôo usando modelos matemáticos e físicos.

Foi simulado um único golpe de aplauso para cima ou um único golpe para baixo. Essa simplificação foi feita porque a influência da esteira produzida pela braçada anterior é pequena para de 10 e abaixo. Chang e Sohn (Chang e Sohn, 2006) encontraram mudanças na força dos vórtices de ponta em na ordem de 100, quando os movimentos de bater palmas e arremessar isolados foram comparados com palmas cíclicos e movimentos de arremesso, no entanto, a aerodinâmica geral e as forças que atuam nas asas em = 10 eram bastante semelhantes.

Velocidades de translação e rotação como funções do tempo adimensional durante o estalo e arremesso. (A) Para sobreposição de 0% durante o aplauso, a translação termina antes do início da rotação. Para uma sobreposição de 100%, a translação e a rotação terminam simultaneamente. (B) Para sobreposição de 0% durante o lançamento, a asa completa sua rotação antes do início da translação. Para uma sobreposição de 100%, a asa começa a girar e transladar simultaneamente.

Velocidades de translação e rotação como funções do tempo adimensional durante o estalo e arremesso. (A) Para sobreposição de 0% durante o aplauso, a translação termina antes do início da rotação. Para uma sobreposição de 100%, a translação e a rotação terminam simultaneamente. (B) Para sobreposição de 0% durante o lançamento, a asa completa sua rotação antes do início da translação. Para uma sobreposição de 100%, a asa começa a girar e transladar simultaneamente.


É assim que os insetos induzem as plantas a fazer galhas

A maioria das galhas produzidas por pulgões Hormaphis cornu são verdes. Mas mutações em um gene desencadeiam o desenvolvimento de uma galha vermelha. Crédito: David Stern

Os insetos podem reprogramar o crescimento das plantas, transformando partes comuns das plantas em abrigos com padrões complexos que são refúgios seguros para alimentação e reprodução.

Essas estruturas, chamadas de galhas, fascinam os biólogos há séculos. Eles são criados por uma variedade de insetos, incluindo algumas espécies de pulgões, ácaros e vespas. E eles assumem inúmeras formas, cada qual específica em formato e tamanho para a espécie de inseto que os criou - de protuberâncias em forma de cone a pontas longas e finas. Alguns até se parecem com flores.

Os insetos criam galhas ao manipular o desenvolvimento das plantas, mas descobrir exatamente como eles realizam essa façanha "parece um dos grandes problemas não resolvidos da biologia", diz David Stern, líder de grupo no Campus de Pesquisa Janelia do Howard Hughes Medical Institute. "Como um organismo de um reino assume o controle do genoma de um organismo em outro reino para reorganizar completamente seu desenvolvimento, para produzir um lar para si mesmo?"

Agora, Stern e seus colegas identificaram os primeiros exemplos de genes de insetos que orientam diretamente o desenvolvimento da galha. Esses genes são ativados nas glândulas salivares dos pulgões e parecem direcionar a formação de galhas quando os insetos cuspem sua saliva nas plantas. Um gene que a equipe identificou determina se essas galhas serão vermelhas ou verdes, relataram os pesquisadores em um artigo publicado em 2 de março em Biologia Atual.

"Acho que eles descobriram um território essencialmente novo", disse Patrick Abbot, ecologista molecular da Universidade Vanderbilt que não estava envolvido no trabalho. Há uma grande probabilidade de que genes semelhantes sejam encontrados em outros insetos, diz ele. "Isso me faz querer correr para o laboratório e começar a examinar meus dados."

Descobrir como estudar a formação de galhas tem sido um desafio de longa data, diz Stern - algo que o interessa desde que ele era um estudante de graduação fazendo trabalho de campo na Malásia. Os insetos galhadores não são organismos modelo de laboratório como as moscas-das-frutas, e não se sabe muito sobre sua genética.

Os pulgões Hormaphis cornu se alimentam de folhas de hamamélis e induzem as plantas a produzir galhas. Crédito: David Stern

Há alguns anos, enquanto vagava pela floresta do campus à beira do rio de Janelia, Stern fez uma observação conveniente. Hormaphis cornu pulgões fazem galhas em hamamélis, pequenas árvores floridas abundantes no campus. Mesmo em uma única folha, Stern notou, alguns pulgões Hormaphis estavam produzindo galhas verdes, enquanto outros, vermelhas. Ele criou um experimento natural - uma chance de comparar dois tipos de galhas visivelmente distintos e descobrir o que é geneticamente diferente entre os pulgões que os formam.

Quando Stern e sua equipe sequenciaram os genomas dos pulgões que produziram galhas verdes e daqueles que produziram galhas vermelhas, eles identificaram um gene que variava entre os dois genomas. Pulgões com uma versão de um gene que eles chamaram de "determinante da cor da galha" tornaram-se pulgões verdes e uma versão diferente tornou-se vermelhos. A descoberta despertou sua curiosidade, pois o gene não se parecia com nenhum gene identificado anteriormente.

Para mergulhar mais fundo, eles coletaram pulgões de ambas as aveleiras e bétulas do rio. (Hormaphis cornu os pulgões vivem nas bétulas do rio no verão, mas não fazem galhas ali.) De volta ao laboratório, os pesquisadores dissecaram cuidadosamente as minúsculas glândulas salivares dos insetos. Nessas glândulas, a equipe buscou genes que eram ativados apenas nos pulgões que causavam galhas. Os pesquisadores descobriram que o gene determinante da cor da galha era semelhante a centenas de outros genes, todos ativados especificamente nos pulgões formadores de galhas. A equipe de Stern apelidou esse grupo de genes da bicicleta.

Os pulgões galhadores das hamamélis ativam esses genes para produzir proteínas BICICLETAS. Os insetos podem cuspir essas proteínas nas células da planta para reprogramar o tecido da folha para formar uma bílis em vez de partes normais da planta, diz Aishwarya Korgaonkar, uma pesquisadora do laboratório Stern que ajudou a liderar o projeto.

A equipe agora está trabalhando para identificar as moléculas da planta visadas pelas proteínas BICYCLE dos pulgões, diz Korgaonkar. Isso poderia ajudá-los a entender como as proteínas da BICICLETA incitam as plantas a formar galhas.

"Depois de anos se perguntando o que está acontecendo, é muito gratificante ter algo para mostrar", diz Stern.


Whitefly

As moscas-brancas são minúsculas pragas de insetos brancos como a neve que (quando vistas sob uma lente de aumento) se assemelham a mariposas. Quando vistos sem ampliação, esses insetos parecem mais caspa voadora! Embora possam se assemelhar a mariposas, na verdade estão mais relacionados a insetos cochonilhas. Na verdade, eles são freqüentemente confundidos com insetos de cochonilha. Os estágios de adulto e ninfa se alimentam sugando os sucos das plantas. A alimentação pesada dessas pragas pode dar às plantas uma aparência manchada, causar amarelecimento e, eventualmente, a morte da planta hospedeira.

A melada pegajosa excretada por esses insetos vitrifica as superfícies superior e inferior das folhas, permitindo o desenvolvimento do fungo do molde de fuligem preto. Além de não ser atraente, o bolor fuliginoso interfere na fotossíntese, o que retarda o crescimento das plantas e costuma causar queda das folhas.

As pragas de insetos mais comuns e talvez mais difíceis de controlar em estufas e paisagens interiores são as moscas brancas. Três espécies comuns de moscas-brancas, a estufa, a batata-doce e a asa em faixas, são pragas em potencial em uma ampla variedade de culturas. Eles atacam uma ampla gama de plantas, incluindo mudas, algodão, morangos, vegetais e poinsétias. Além de atacar muitas culturas diferentes, as moscas-brancas são difíceis de controlar. Os estágios imaturos são pequenos e difíceis de detectar. Os produtores costumam comprar plantas, sem saber da presença de infestação por mosca-branca.

Uma vez que os adultos se desenvolvem e emergem dentro de uma estufa ou estufa, eles rapidamente se distribuem por uma safra inteira ou infestam outras plantas disponíveis. Os programas de controle químico direcionados à praga geralmente têm sucesso limitado. Dois estágios de vida (ovo e pupa) são tolerantes à maioria dos inseticidas. As medidas de controle também são complicadas porque os insetos se agarram à parte de baixo das folhas, tornando-as difíceis de alcançar com produtos químicos ou sprays de óleo.

Todas as espécies dessa praga vegetal se desenvolvem do ovo até os quatro instares ninfais antes de se tornarem adultas. O tempo decorrido (do ovo ao adulto) varia com as espécies. Os ovos são depositados na parte inferior das folhas e costumam ser encontrados em um padrão circular ou em forma de crescente. A & quotcrawler & quot sai do ovo, move-se por uma curta distância e então se acomoda e começa a se alimentar - sugando o suco de sua planta hospedeira. O restante do desenvolvimento ninfal é passado nessa condição sedentária. A mosca branca adulta emerge da caixa da pupa e voa para outras plantas hospedeiras para botar ovos e começar o ciclo novamente. Ninfas de quarto instar (chamadas pupas) e adultos são mais freqüentemente usados ​​para distinguir uma espécie de outra.
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Ao escolher um produto para eliminar as moscas-brancas de suas flores e plantas, lembre-se de que cada produto pode matar apenas estágios específicos da praga. Você também pode considerar que o produto preferido pode ter outros usos, como controle de pragas interno ou externo.
Por exemplo, sprays de óleo de pesticidas e sabonete Safer Insecticide causam poucos danos às moscas-brancas adultas, pois eliminam principalmente os estágios de ninfa e pupa da mosca-branca. Talstar One Bifenthrin Concentrate, Permethrin Pro, Tempo SC e sprays de piretrina-rotenona eliminam adultos e ninfas apenas. O spray de óleo é o melhor para prevenção durante todo o ano. Embora sprays de óleo, Safer Soap e Pyrethrin-Rotenone sejam usados ​​extensivamente em plantas, eles não são os produtos de escolha no tratamento de casas para controle de pragas de uso geral.
Permethrin Pro e Tempo SC podem ser usados ​​em uma ampla variedade de situações: controle de pragas em ambientes internos (insetos boxelder, baratas, formigas, traças, etc.), controle de pragas em ambientes externos (ornamentais) e (no caso de Tempo SC) podem ser usados para o tratamento de restaurantes e outras plantas alimentícias comerciais. Para o melhor controle de pragas de plantas a longo prazo, o Talstar One geralmente funciona muito melhor do que outros sprays, produzindo excelente eliminação das moscas brancas existentes, bem como resíduos mais longos do que outros inseticidas.
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Aplique o seu inseticida quando as ninfas ou adultos do primeiro estágio surgirem. Em populações pesadas de mosca-branca em estágios de vida mistos, duas a três aplicações por semana podem ser necessárias para controlar a população com um inseticida de contato. Leia e siga as instruções do rótulo, cada produto pode ter limites diferentes sobre a frequência com que as aplicações podem ser feitas.

A aplicação adequada do inseticida também é um componente chave para um programa de controle de pragas bem-sucedido. É necessário aplicar o inseticida na parte inferior das folhas para obter um bom controle. À medida que muitas safras amadurecem, uma densa copa de folhagem se forma, o que interfere na distribuição de pesticidas. Com essas culturas, é necessário controlar a mosca-branca antes da formação desse dossel ou espaciar as plantas para que possam ser tratadas adequadamente.


MOTH FLIES

O caráter de identificação chave para a mosca mariposa é o padrão único de veias em suas asas. Todo o corpo e as asas da mosca-mariposa são cobertos por minúsculos pêlos, o que lhe dá uma aparência de mariposa. A olho nu, esta minúscula praga pode parecer uma pequena mosca com asas grossas, o auxílio de uma lupa revela a aparência inconfundível de mariposa. Esta pequena mosca não tem mais do que 1/8 de polegada de comprimento, incluindo as asas. Eles são geralmente na cor preta.

Biologia e história de vida da mosca mariposa

Os adultos da mosca-mariposa podem ser bastante irritantes em casa, aparecendo em pias e ralos de banheiras. Essas pragas se reproduzem em grande número nas estações de esgoto e são facilmente levadas pelo vento para as casas. Seu pequeno tamanho permite que eles penetrem nas telas comuns. Têm sido notados casos de asma brônquica causada pela inalação do pó resultante da desintegração dessas pequenas moscas.

As moscas mariposas põem ovos em uma massa de 30 a 100. Esses ovos eclodem em menos de 48 horas. As larvas e pupas da mosca mariposa vivem na película fina encontrada em drenos, linhas de campo de fossas sépticas ou pedras de filtro. As larvas se alimentam de sedimentos, vegetação em decomposição e plantas e animais microscópicos. O estágio larval dura de 9 a 15 dias e o estágio de pupa de 20 a 40 horas. A mosca adulta recém-emergida está sexualmente madura ao emergir e copula nas primeiras horas de vida.

Inspecionando moscas mariposas

A chave para eliminar uma infestação de mosca-mariposa é encontrar as fontes de reprodução e eliminá-las.

As larvas da mosca mariposa vivem na película úmida que se desenvolve nas laterais de um ralo e na armadilha do ralo. A presença de muitas moscas adultas dentro de um ralo é um bom sinal de que o ralo é um criadouro. Para verificar possíveis criadouros, coloque um pedaço de fita adesiva nos ralos (ou rachaduras no chão) sem cobrir totalmente a abertura. Se a abertura estiver totalmente coberta, não haverá fluxo de ar e não surgirão moscas. Verifique a fita periodicamente. Se houver moscas presas em sua fita, você encontrou uma fonte. A eliminação dessa fonte é discutida em Eliminação da mosca-mariposa.

A fonte número um de infestações por mosca-mariposa parece ser os problemas sépticos ou de esgoto que não foram detectados. O aparecimento de moscas mariposas costuma ser a primeira indicação de outro problema! Há muitas áreas em um prédio onde as moscas-da-traça podem se reproduzir, então não termine sua inspeção depois de encontrar uma fonte. Essas pragas adoram os detritos orgânicos encontrados em esgotos, fossas sépticas, ralos, vassouras e esfregões molhados, até mesmo no solo próximo a vazamentos ou rompimento de um encanamento. Nas residências, as moscas mariposas geralmente se reproduzem em ralos de banheiros, principalmente em chuveiros. As frigideiras são propensas a vazar e a área embaixo delas se torna um excelente criadouro para a mosca-mariposa.

Não negligencie o ar livre em sua inspeção. Qualquer sinal de umidade na parede externa ou embaixo de uma casa deve ser investigado.

Eliminação da mosca mariposa

Embora os sprays espaciais matem facilmente as moscas-mariposas adultas em uma casa e em torno de pátios e varandas, eles não eliminam totalmente a infestação por moscas. O controle total vem com a localização e eliminação de criadouros discutidos em Moth Fly Inspection. Use a armadilha de feromônio Gold Stick para capturar moscas adultas em cozinhas, banheiros ou outras áreas onde a atividade da mosca mariposa foi detectada. Se um ralo for considerado um terreno fértil, limpe-o completamente (esfregando-o, se possível) e use o Invade Bio Drain Gel para destruir o filme que abriga os organismos.

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Como essas minúsculas larvas de insetos saltam sem pernas

PRIMAVERA Não importa a ausência de pernas. Um mosquito jovem, do tamanho de um grão de arroz, pode voar graças a um travamento inteligente.

G.M. FARLEY ET AL/REVISTA DE BIOLOGIA EXPERIMENTAL 2019

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Sem pernas? Não é um problema. Algumas larvas de insetos rechonchudos ainda podem saltar até 36 vezes o comprimento do seu corpo. Agora, o vídeo de alta velocidade revela como.

First, a legless, bright orange Asphondylia gall midge larva fastens its body into a fat, lopsided O by meshing together front and rear patches of microscopic fuzz. The rear part of the larva swells, and starts to straighten like a long, overinflating balloon. The fuzzy surfaces then pop apart. Then like a suddenly released spring, the larva flips up and away in an arc of somersaults, researchers report August 8 in the Journal of Experimental Biology.

In nature, something has to go wrong for this to happen, says evolutionary ecologist Michael Wise of Roanoke College in Salem, Va. These midges normally grow from egg to adult safely inside an abnormal growth, or gall, that they trick silverrod plants into forming. But as Wise was trying to coax out some still-immature larvae, he realized that the supposedly helpless young — extracted prematurely when they were no bigger than rice grains — could not only vault out of a lab dish but also could travel a fair distance across the lab floor.

To get a better look at the insects’ jumps, he contacted evolutionary biomechanist Sheila Patek at Duke University. “He sees small fast things and thinks of his buddy Sheila,” Patek says. Her lab specializes in resolving never-before-seen subtleties of animal motion, typically using high-speed video. “The truth is, we film for people all the time, and it’s almost never small and fast by our standards,” she says. “But this actually was.”

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The larval jumps filmed were too great for a tiny larva’s muscles, Wise, Patek and colleagues concluded. Blobby little larvae were flipping themselves around with power equal to, or greater than, the oomph of high-power vertebrate flight muscles.

For small animals with constraints on muscles, “it actually works better to put energy into a spring,” Patek says. Small creatures can load energy into the spring gradually until whatever is latching the spring slips off. Then, the suddenly freed spring powers extreme motion.

Microscope images revealed hairlike structures on the larval surfaces that touched, suggesting that the tiny projections might stick together as type of latch. Such structures could inspire new types of adhesives, Patek says.

Patek had first recognized the latch-and-spring system in mantis shrimp, which throw punches so furiously they can smash aquarium walls, and then in a trap-jaw ant with killer jaws that spring shut in an instant. Those look not at all like the pliable little larvae, but Patek sees latches releasing springs. “My guess is they’re everywhere,” she says.

Still “latch systems are quite hard to study,” says coauthor Greg Sutton of the University of Lincoln in England, where he investigates the mechanics of insect moves. “We don’t know where the flea latch is,” for example, he says. The gall midge ends up with arguably the most clearly described system: the “smoking gun latch,” he calls it.

Details aside, tiny animals aren’t the only creatures using latches for fast moves, says Simon Poppinga of the Botanic Garden of the University of Freiburg in Germany, who wasn’t involved in the research. He studies the biomechanics of plants, which don’t grow muscles at all but have ways of moving fast. U.S. researchers have found that sphagnum moss fires “spore cannons,” capsules that deform as they dry and then suddenly crack open to launch spores at 16 meters per second that puff into miniature mushroom clouds (SN: 7/23/10, p. 8).

Poppinga and colleagues recently showed that Chinese witch hazel trees build up forces in the mature fruit that suddenly shoot out a seed rotating a bit like a bullet from a rifle. Unlike gall midge launches, though, these tree latches break when they let go. The leap of a legless seed is fast and dramatic, but it’s not repeatable.

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A version of this article appears in the August 31, 2019 issue of Science News.


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Análise

“Persuasive, rollicking, and informative. He may not get you to hug your termites, but you will see them in a whole new light. Bugs are truly awesome in numbers and variety. On the surface, bugs seem so alien to us. But in anecdote after anecdote, Waldbauer gives us plenty with which we can identify. Waldbauer celebrates not only the good things bugs do but also the bizarre. What Waldbauer shows us is that bugs are vitally important to our planet. They help plant life grow. They are great cleanup crews, removing waste material. They till and aerate soil. They provide food for all kinds of animals, including fish and birds and some mammals. Clearly, bugs are good.”Vicki Croke, Boston Globe

“This book will open the eyes of readers who, like the great majority of mankind, regard insects with contempt or disgust. It will make them look on our six-legged fellow creatures with more interest and sympathy, and will thus add a new dimension to their own lives.”Anthony Daniels, Sunday Telegraph (UK)

“Written in a gentle style that is easy to read yet still authoritative, the breadth of insect ecology is paraded before us.”Richard Jones, BBC Wildlife

“Waldbauer is an entomologist with an unwavering verve for his pursuits. Here he catalogs ecologically important insects by their 'occupations' within an ecosystem, explaining how they live and how they make possible life in general. Among insects' occupations are their roles in regulating plant and animal populations and tilling the soil. In some cases, their capabilities and behaviors are nothing short of mind-boggling. Waldbauer reports that one species of Great Plains ants has brought to the surface about 1.7 tons of subsoil per acre. An average colony of honeybees harvests 44 pounds of pollen and 265 pounds of nectar a year. Such anecdotes combine with the author's keen insight into the mechanics of ecosystems to make a strong case on behalf of the lowly insect.”Science News


Diversidade

Insects are the most diverse of all groups of organisms, with over 800,000 species named and many thousands, probably millions, yet to be discovered. Insect diversity may be linked to their close association with the angiosperms (flowering plants). The Coleoptera (beetles) are the most diverse of all insect orders, with at least 350,000 species, representing one fourth of all known animal species. (Asked what could be inferred about the work of the Creator from a study of His works, British scientist J. B. S. Haldane is reported to have quipped, Ȫn inordinate fondness for beetles.") The evolutionary reasons for the mind-boggling diversity of this single order are not clear. Other major orders of insects include the Diptera (flies), Hymenoptera (bees and wasps), Hemiptera (true bugs), and Lepidoptera (moths and butterflies). Note that each name describes the wing ( ptera means "wing"). For instance, Diptera means "two wings," referring to the presence of only one wing pair in this order. In the Coleoptera ("sheath wings"), the first pair of wings is modified into a hard covering for the rear pair, which is easily observed in a lady beetle, for instance.


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