Em formação

Por que o ganso cacarejante foi separado como uma espécie distinta do ganso do Canadá em 2004?


De acordo com a Wikipedia, em 2004 a American Ornithologists 'Union transformou o ganso cacarejante em uma nova espécie, separando-o do ganso canadense. Os britânicos seguiram o exemplo em 2005.

Qual foi a base para essa divisão? Por que uma nova espécie foi necessária aqui? A descendência desses dois foi considerada consistentemente infértil ou a mudança foi baseada em outra coisa?


A resposta aceita não indica que você pode obter a resposta diretamente da AOU se tiver acesso a uma biblioteca de ciências: eles publicam explicações sobre as mudanças na Lista de verificação da AOU em O Auk! O que envolve Branta hutchinsii é de Banks et al. 2004; o texto exato que eles usam são:

pp. 59-60. Vários estudos genéticos de gansos, incluindo trabalhos recentes com DNA mitocondrial (van Wagner e Baker 1986, Shields e Wilson 1987, Quinn et al. 1991, Paxinos et al. 2002, Scribner et al. 2003) verificaram sugestões anteriores com base nas diferenças em voz, hábitos de nidificação, habitat e tempo de migração, bem como em cor e tamanho (por exemplo, Brooks 1914, Aldrich 1946, Hellmayr e Conover 1948), que as formas tratadas como uma única espécie Branta canadensis por todas as listas de verificação da AOU anteriores e a maioria dos outros trabalhos, na verdade, constituem pelo menos duas espécies e, além disso, cada uma das duas espécies pode estar mais intimamente relacionada a outro membro do gênero do que entre si. Assim, nós dividimos B. canadensis reconhecendo um conjunto de formas de corpos menores como as espécies B. hutchinsii, e reorganizar nossos representantes do gênero na sequência Bernicla, leucopsis, Hutchinsii, canadensis, Sandvicensis. Uma análise adicional pode resultar em mais divisão.

Então, sim, isso se deve principalmente à análise do mtDNA e a vários estudos entre 1987 e 2003, conforme descrito na outra resposta.


Os gansos de "bochechas brancas" há muito são objeto de controvérsia taxonômica. De 1920 a 1950, as autoridades os classificaram em uma a quatro espécies. Embora Aldrich, em 1946, tenha afirmado que havia um acordo quase unânime entre os biólogos árticos de que havia duas espécies, a partir da taxonomia de Delacour dos anos 1950 foi mais frequentemente seguida, que tinha uma espécie (Branta canadensis) e doze subespécies.(1)

O que mudou o consenso foram os estudos de DNA. O DNA mitocondrial (mtDNA), que é transmitido sem recombinação, apresentou sequências distintas suportando duas espécies. Uma análise RFLP do mtDNA sugeriu que a divisão entre essas duas espécies aconteceu cerca de um milhão de anos atrás.(1)

As espécies se dividem principalmente ao longo das linhas de tamanho e local de reprodução. O ganso cacarejante (Branta hutchinsii) é menor e se reproduz na tundra ártica. A (presente) espécie de ganso do Canadá (Branta canadensis) geralmente assume uma forma maior e se reproduz principalmente em áreas não relacionadas à tundra.(1)

(1) - Mlodinow, S. G., et al. "Distribuição e identificação da subespécie do ganso cacarejante (Branta hutchinsii)." North American Birds 62.3 (2008): 344-360.


Fatos mais interessantes

  • Qual deles é o MENOR pássaro vivo.
  • Este pássaro pode HIBERNAR por meses: a Poorwill comum
  • O papagaio mais velho: arara azul e dourada
  • Os ÚNICOS pássaros que podem voar PARA TRÁS: beija-flores
  • A maior espécie de papagaio voador é: a arara-azul
  • O papagaio selvagem mais raro do mundo: arara-azul
  • Os papagaios que constroem "condomínios de pássaros": Papagaio quacre
  • O gavião mais comum da América do Norte
  • A coruja-real é a maior coruja do mundo
  • O recordista de falar mais palavras: o comum Periquito (com mais de 1.700 palavras)

© 2011 beautyofbirds.com - Todos os direitos reservados. Termos de uso / restrições de direitos autorais

Observação: qualquer conteúdo publicado neste site é um comentário ou opinião e está protegido pela liberdade de expressão. Ele é fornecido apenas para fins educacionais e de entretenimento e não tem a intenção de substituir o conselho profissional. Avianweb / BeautyOfBirds ou qualquer um de seus autores / editores não assume nenhuma responsabilidade pelo uso ou mau uso de qualquer material publicado. O uso deste site indica que você concorda com esses termos.


Com que frequência as espécies de pássaros hibridizam?

Existem muitas razões pelas quais queremos saber com que frequência espécies distintas hibridizam, ou seja, formam indivíduos resultantes do acasalamento de um macho de uma espécie com uma fêmea de uma espécie diferente. Por um lado, se esse tipo de mistura fosse muito frequente, seria difícil reconhecer espécies distintas, pois os híbridos formariam um continuum entre os pais. Isso não é um problema, como espécie (mais notavelmente em pássaros, conforme documentado em meu livro Especiação com Allen Orr) permanecem bastante distintos. Mas se as espécies permanecem distintas apesar da hibridização generalizada, como parece acontecer em alguns grupos como os patos, isso é evidência de que os próprios híbridos não estão se acasalando de volta com a espécie parental e borrando os limites das espécies. E se for esse o caso, podemos perguntar porque os híbridos são efetivamente estéreis. Isso pode ser porque eles são fisiologicamente estéril, como mulas, ou & # 8220comportamentalmente estéril & # 8221: híbridos podem ser capazes de ter descendentes, mas podem ter a aparência ou comportamento incorreto para atrair parceiros e, portanto, permaneceriam sem par.

Mas a hibridização pode ter outros efeitos evolutivos. Pode, por exemplo, atuar como uma forma de & # 8220mutação & # 8221: se os híbridos forem férteis, há uma chance de os genes serem movidos de uma espécie para outra, o que poderia então ser acionado pela seleção natural. Este fenômeno, denominado & # 8220 introgressão adaptativa & # 8221, está bastante bem documentado em nossa própria espécie: & # 8220 moderno & # 8221 Homo sapiens, por exemplo, mostra vários genes que vieram de denisovanos ou neandertais (alguns, como eu, consideram essas subespécies), e provavelmente foram levados a alta frequência pela seleção natural. Este artigo fornece muitos exemplos de introgressão adaptativa entre espécies mais bem demarcadas.

Os pássaros são candidatos especialmente bons para estimar as taxas de hibridização, como são amplamente observados, há todo um projeto de & # 8220citizen science & # 8221 (& # 8220eBird & # 8221) em que observadores e amantes de pássaros enviam registros de milhões de pássaros, e os híbridos são freqüentemente facilmente reconhecidos.

Mas até agora tínhamos muito pouca ideia de quantas vezes a hibridização ocorre. A única estimativa, e não é grande ou sistemática, foi feita por Ernst Mayr em 1963, que afirmou ter observado apenas cerca de um híbrido entre cada 60.000 skins de museu que examinou: uma taxa de hibridização de 0,00167% (0,0000167) . Mas esse valor baixo foi puramente improvisado & # 8220prestar estimativa & # 8221.

Agora, em um novo jornal em Evolução, três pesquisadores usaram dados do eBird para obter uma estimativa melhor da frequência com que as espécies de pássaros produzem híbridos. Você pode acessar o jornal gratuitamente clicando no link abaixo, o pdf está aqui, e a referência está no final. Acontece que a hibridização, conforme estimado por cientistas cidadãos, permanece baixa - aproximadamente a mesma ordem de magnitude que Mayr & # 8217s estimou anteriormente.

Primeiro, como você sabe quando um pássaro é híbrido? Isso geralmente é feito pela observação de um pássaro estranho que combina as características morfológicas de duas espécies que têm a oportunidade de se hibridar. (Pode ser verificado geneticamente, mas isso é difícil de fazer com pássaros selvagens.) No entanto, a intermediação, que é rara, geralmente é verificada por especialistas, que é como os híbridos encontram seu caminho para o banco de dados do eBird.

Existe um site inteiro dedicado aos híbridos de pássaros, e esse é seu nome de duas palavras. I & # 8217 mostrarei três fotos de supostos híbridos do site. Aqui, por exemplo, está uma foto de Híbridos de pássaros de um híbrido entre um pato selvagem e um pato preto:

Existem várias maneiras de calcular as taxas de hibridização. O mais simples é apenas o número de pássaros híbridos encontrados dividido pelo número total de pássaros observados. Mas as espécies de pássaros variam em número e, se várias espécies hibridizarem muito, isso pode dar uma superestimativa da frequência com que os membros de todas as espécies produzem híbridos. Para corrigir isso, você pode calcular um taxa de hibridização por espécie: o número total de espécies que produziram híbridos dividido pelo número total de espécies observadas. (Você também pode fazer isso para taxas de hibridização entre ordens de pássaros ou famílias de pássaros.) Isso, é claro, será mais alto, porque uma espécie é considerada como hibridizante mesmo que produza apenas um único híbrido. Alternativamente, você pode pegar cada espécie, calcular sua taxa de hibridização com todas as outras espécies e, em seguida, fazer a média entre todas as espécies para obter uma estimativa da frequência com que uma espécie de ave média produz híbridos. (Isso não foi feito neste artigo.)

É claro que existem erros introduzidos pelo uso de observações do eBird. Uma é a suposição de que os híbridos são reconhecidos como híbridos com a mesma frequência com que as aves de espécies puras são reconhecidas como puras. Isso não é improvável, dado que os híbridos costumam ser distintos, mas pode levar a subestimação se espécies de aparência muito semelhante, como toutinegras, produzem híbridos que, porque os pais são semelhantes, não são facilmente vistos como híbridos. Por outro lado, a hibridização pode ser superestimada porque observadores de pássaros podem relatar este evento emocionante mais de uma vez, então o mesmo híbrido é contado várias vezes. A época do ano também é importante, pois os híbridos são mais bem reconhecidos quando as espécies parentais estão em sua plumagem reprodutiva: durante a estação de acasalamento. Não entrarei em detalhes sobre como os autores lidaram com esses problemas, exceto para mencionar que eles usaram informações de localização para descartar híbridos que foram relatados várias vezes. Você pode ler o jornal para as advertências e preconceitos.

Os métodos: os autores usaram observações do eBird relatadas entre 1º de janeiro de 2010 e 31 de dezembro de 2018: nove anos de dados. As observações foram restritas aos EUA contíguos e as submissões foram examinadas e avaliadas por especialistas.

Aqui estão os resultados, todos os quais confirmam Mayr ao sugerir que a hibridização de pássaros é rara.

1.) A taxa geral de hibridização foi calculado a partir de 212.875 híbridos relatados entre 334.770.194 aves, ou uma taxa de 0,064%. Isso é quarenta vezes a taxa relatada por Mayr.

2.) A taxa de hibridização corrigida eliminando possíveis avistamentos múltiplos do mesmo híbrido: 0,076%, aproximadamente o mesmo que a taxa não corrigida.

3.) A taxa de hibridização eliminando espécies que eram muito propensas à hibridização. A eliminação das 10 espécies que hibridizam com mais frequência, principalmente patos e gaivotas, que hibridizam como gangbusters, trouxe a taxa de hibridização para 0,009%, cerca de 5 vezes maior do que a taxa de Mayr & # 8217s. Acontece que as famílias Anatidae (patos) e Laridae (gaivotas) contribuíram com 83% de todos os híbridos de aves no conjunto de dados.

4.) A taxa de hibridização de espécies: 242 espécies foram implicadas na formação de híbridos de 1146 espécies disponíveis, dando uma frequência de 21% das espécies formando híbridos.

5.) A taxa de hibridização de ordem. Há 25 ordens de pássaros nos EUA, 16 deles tinham espécies envolvidas em pelo menos um evento de hibridização, dando uma taxa de 64%. Aqui está um gráfico da ampla variação na taxa de hibridização entre as ordens de pássaros. Você pode ver que as duas ordens Anseriformes, que contém patos, gansos e cisnes, e Charadriiformes, que inclui gaivotas, constituem a maior parte da hibridização entre pássaros.

6.) A taxa de hibridização da família. existem 95 famílias de aves nos EUA, e 35 tinham espécies envolvidas na hibridização, dando uma taxa de 37%.

O resultado. Corrigindo vários relatos de híbridos e eliminando as espécies mais vadias de pássaros, os pesquisadores obtiveram uma taxa de cerca de 5 híbridos por 60.000 espécies: cinco vezes maior do que a de Mayr - mas o valor de Mayr & # 8217s não era confiável para começar. Isso ainda significa, no entanto, que os híbridos de pássaros são raros. Aqui estão os dados mostrados graficamente no papel, com a taxa de hibridização caindo à medida que as espécies mais vadias são removidas (oi, o pato selvagem!):

Existem implicações além disso? sim. Primeiro, há observações de meu colega Trevor Price e sua associada Michelle Bouvier que cruza em cativeiro entre membros de diferentes gêneros e até mesmo famílias podem produzir híbridos viáveis, pelo menos no & # 8220lab & # 8221. A ausência de tais híbridos na natureza significa que o isolamento pré-zigótico (discriminação de acasalamento e outros impedimentos ao fluxo gênico que operam antes da cópula) é muito forte ou que a viabilidade dos híbridos na natureza é muito menor do que a observada em cativeiro. (Provavelmente é uma combinação de ambos os fatores, mas suspeito que a discriminação do parceiro é muito forte na natureza e pode ser superada pelo confinamento forçado dos pássaros em cativeiro.)

Em segundo lugar, os dados genéticos de pássaros, particularmente DNA mitocondrial, mostram que as espécies permanecem bastante distintas, com sequências de DNA específicas da espécie conforme julgado por seus códigos & # 8220bar & # 8221. Isso mostra que, apesar das baixas taxas de hibridização, os híbridos não estão colocando genes estranhos em outras espécies com muita frequência.


Estado de conservação

Em 1918, quando o Tratado de Aves Migratórias foi aprovado, o tiroteio na primavera foi proibido nos Estados Unidos e Canadá. Isso regulava a temporada de caça para três meses e meio por ano. Os regulamentos de caça atualmente em vigor são para limites de temporada de tiro e limites de bagagem em relação à quantidade de aves atualmente na população. Um sistema de cotas foi estabelecido em 1960 para regular o número de gansos abatidos em um determinado ano.

Uma subespécie, Aleutian-Canadian Geese, foi listada como ameaçada pelo Serviço de Pesca e Vida Selvagem dos EUA em 1967. Isso foi devido à introdução de uma espécie de raposa ártica não nativa em suas ilhas de nidificação. Eles se tornaram predatórios sobre os gansos naturalmente indefesos. Esta introdução fez com que a população diminuísse para aproximadamente 800 indivíduos. No entanto, em 1990, devido ao aumento do número, o Serviço de Pesca e Vida Selvagem dos EUA alterou a lista para ameaçada. O estado do Alasca também mudou a lista de espécies de ameaçadas de extinção para uma espécie de preocupação especial. Gansos Aleutas-canadenses agora têm cerca de 15.000 indivíduos e nidificam em oito ilhas.

Por outro lado, algumas populações cresceram tanto, existem muitas organizações que estão tentando regular as populações desses gansos. Eles vêem isso como necessário porque, se a população de ganso continuar a crescer no ritmo atual, eles apresentarão um problema muito sério para o ambiente ao redor em apenas alguns anos. Outras organizações acreditam que os métodos e ideias dessas organizações são cruéis e desnecessários. Esses grupos acreditam que o crescimento da população não é tão ameaçador quanto alguns acreditam e que, na verdade, eles correm um grande risco devido à caça excessiva e à morte por pesticidas que as populações de gansos sofrem.

Lei de Aves Migratórias dos EUA: protegido

Lista Federal dos EUA: ameaçado

CITES: nenhum status especial

Lista do estado de Michigan: nenhum status especial

Lista Vermelha de Espécies Ameaçadas da IUCN: menor preocupação


Como os intrépidos biólogos trouxeram o equilíbrio natural de volta às ilhas Aleutas

Alasca

Steve Ebbert estava a pelo menos uma milha da Ilha Little Sitkin no Mar de Bering quando o motor do barco # 8217s falhou. Confrontado com a tarefa impossível de remar um inflável de 750 libras carregado com motores e engrenagens em ventos de 15 nós, ele agarrou a âncora e lançou-a para a costa, visando um canteiro de algas gigantes. Normalmente ele teria lutado como o inferno para evitar que as algas entupissem a hélice, mas neste caso ele estava rezando para que a âncora ficasse presa nela para que ele pudesse puxar o barco em direção à costa. Felizmente, a âncora prendeu. Ele puxou o barco até aquele ponto, então ergueu freneticamente a âncora e atirou-a de novo. E de novo. E de novo. Finalmente, ele chegou à praia. & # 8220Nas Aleutas, se seu motor de popa parar e você & # 8217 estiver offshore e o vento estiver soprando, sua próxima parada pode ser na Austrália ou na calota polar ártica, & # 8221 Ebbert diz, lembrando-se de como estava feliz por chegar à terra. & # 8220 Não é uma sensação boa quando você puxa o cabo e o motor não & # 8217 dá partida. & # 8221

Esse foi um dos primeiros quase-desastres de Ebbert, depois que ele chegou ao Refúgio Nacional de Vida Selvagem Marítimo do Alasca na primavera de 1995 como um jovem biólogo atirador em uma missão horrível e aparentemente impossível: matar até a última raposa em mais de 40 ilhas. Ele estaria realizando um esforço de décadas para restaurar algum tipo de equilíbrio natural a este arquipélago de outro mundo marcado por mais de 200 anos de intromissão humana. Ebbert e um grupo de biólogos intrépidos enfrentaram alto mar, ventos fortes e até mesmo vulcões em erupção na extremidade do mundo para escrever uma das maiores histórias de sucesso de conservação na história dos EUA.

O Refúgio Nacional de Vida Selvagem Marítimo do Alasca é uma paisagem acidentada composta de 3,4 milhões de acres em 2.500 ilhas vulcânicas & # 8212 tão remotas que a maioria das pessoas nunca ouviu falar delas & # 8212sarcando do final da Península do Alasca até quase Kamchatka, no Extremo Oriente russo. Tundra sem árvores, picos cobertos de neve, costas rochosas, praias de areia preta, lagoas de muskeg, leitos de algas e recifes de coral fornecem refúgio literal para uma profusão de vida, incluindo 450 tipos de peixes, 26 espécies de mamíferos marinhos e 40 milhões de indivíduos pássaros, de 30 espécies & # 8212 incluindo 80% das aves marinhas da América do Norte & # 8217s.

O naufrágio de um cargueiro japonês da Segunda Guerra Mundial na Ilha de Kiska. Steve Ebbert

As Aleutas no centro do refúgio eram um lugar particularmente feliz para um pássaro criar uma família até que os caçadores de peles russos chegaram em meados do século XVIII. & # 8220Eles vieram caçar lontras marinhas e focas, mas viram uma oportunidade de colocar raposas nas ilhas & # 8221 diz Ebbert. & # 8220Havia um suprimento pronto de comida: pássaros, ovos e filhotes. Como resultado, quase todas as ilhas onde você poderia pousar um barco estavam repletas de raposas que se reproduziam. & # 8221

Poucos anos depois de soltar alguns pares de raposas em uma determinada ilha, os caçadores poderiam retornar para coletar peles & # 8212 vermelho, prata, branco, o cobiçado & # 8220 azul & # 8221 (na verdade enegrecido) & # 8212 pelo carregamento. Enquanto os caninos floresciam, o som estridente de milhões de pássaros acotovelando-se nas margens e nos penhascos silenciou. Em 1811, os pássaros estavam se tornando tão raros que os Aleutas nativos que viviam em Attu, o local da primeira introdução de raposa conhecida, na extremidade oeste distante da cadeia, não podiam mais fazer roupas tradicionais com penas e peles de pássaros. Eles se voltaram para escamas de peixe.Enquanto isso, belas damas nos Estados Unidos e na Europa vestiam casacos luxuosos e estolas feitas de raposas crescidas na ilha e combinavam com chapéus ornamentados de penas de proporções tão escandalosas que algumas mulheres precisavam se ajoelhar para entrar nas carruagens.

Um barraco usado durante a temporada de caça às raposas em 1938. V.B. Scheffer / Biblioteca do Congresso

& # 8220Isso continuou até o colapso do mercado de ações & # 8221, diz Ebbert. & # 8220A pele caiu em desgraça. As pessoas não queriam mais armadilhas. Quando veio a Segunda Guerra Mundial, muitas das Ilhas Aleutas foram evacuadas, a maioria das pessoas nunca mais voltou. E então o Serviço de Pesca e Vida Selvagem dos EUA finalmente percebeu que você não pode ter um refúgio de vida selvagem se estiver criando raposas. & # 8221

Em 1940, quando a colheita de raposas terminou oficialmente e as Ilhas Aleutas se tornaram parte do Refúgio Nacional de Vida Selvagem Marítimo do Alasca, alguns temiam que já fosse tarde demais para pássaros como o ganso cacarejante das Aleutas. Era amplamente considerado que as aves migratórias já estavam extintas, mas um veterano da Segunda Guerra Mundial chamado Bob Jones, que em 1947 se tornou o primeiro administrador do refúgio, viu esperança em tênues filhotes de gansos voando para o oeste. Confiante de que os gansos que viu não eram a variedade comum do Canadá, ele lançou uma caça ao ganso épica para encontrar uma população reprodutora remanescente, que ele pensava estar escondida em algum lugar entre ilhas tão remotas que nunca foram povoadas por raposas.

Navegando em ondas violentas, ventos fortes e nevoeiro cegante, Jones navegou pelas ilhas em um dóri raso de 6 metros, ocasionalmente pegando carona em navios maiores para chegar às ilhas mais distantes. Ele procurou em vão por 15 anos, mas se recusou a desistir. Então, em 1962, ele viajou a bordo do cortador da Guarda Costeira dos EUA Winoa para chegar à Ilha Buldir, no extremo oeste das Aleutas. Lá, ele olhou para o céu e viu 56 gansos Aleutas cacarejando, & # 8220 voando dos penhascos altos e íngremes & # 8221 ele escreveu em suas anotações de campo naquele dia. Por fim, ele & # 8217d encontrou um rebanho sobrevivente. Continha cerca de 300 pássaros, e ele finalmente encontrou duas populações adicionais em ilhas remotas semelhantes. "Acontece que as raposas eliminaram todos os gansos, exceto naquelas três ilhas", diz Ebbert. & # 8220A solução para trazer de volta o ganso era clara & # 8212 matar as raposas. & # 8221

Uma raposa capturada com uma gaivota em uma das Ilhas Comandantes, na porção russa da cadeia de ilhas. Maximilian Buzun / Alamy Foto de stock

Após a assinatura da Lei de Preservação de Espécies Ameaçadas de 1966 (o precursor da Lei de Espécies Ameaçadas), o ganso cacarejante das Aleutas estava entre os primeiros 80 animais na Lista de Espécies Ameaçadas. Jones continuou sua campanha para exterminar sistematicamente as raposas. No início, ele usava principalmente iscas envenenadas, mas quando foram proibidas na década de 1970, ele começou a procurar biólogos que também fossem bons atiradores e caçadores. À medida que ele ganhou notoriedade por seus esforços para salvar a vida selvagem das Aleutas, incluindo lontras marinhas e muitas outras espécies, ele se tornou conhecido como & # 8220Sea Otter & # 8221 Jones. Em seus 33 anos de mandato como gerente de refúgio, ele superou muitos desafios singulares, entre eles, como lidar com gansos selvagens enjaulados enquanto enfrentavam o enjôo.

Jones aprendeu essa lição enquanto ajudava a reunir gansos para um programa de reprodução e reintrodução em cativeiro. Alguns desses animais criados em cativeiro começaram a se reproduzir nas ilhas em 1984. Na época em que o ganso cacarejante das Aleutas foi removido da Lista de Espécies Ameaçadas de Extinção em 2001, a população havia crescido para 37.000.

Steve Ebbert foi contratado em 1995 para continuar os esforços para erradicar as raposas que começaram com Jones. Ebbert cresceu em uma fazenda em Indiana, caçando guaxinins e ratos almiscarados. Treinado em silvicultura e biologia da vida selvagem, ele teve experiência com mapeamento por computador, sensoriamento remoto e controle de predadores (coiotes). Por mais que fosse o emprego dos seus sonhos, ele era o candidato dos sonhos para liderar os esforços para exterminar as raposas do refúgio.

Steve Ebbert e Jeff Williams marcam um ninho de ganso cacarejante nas Ilhas Nizki em 2004 (à esquerda). O ganso cacarejante (à direita) foi removido da Lista de Espécies Ameaçadas em 2001. Ned Rozell (à esquerda) Steve Ebbert (à direita)

Ebbert posicionou equipes de campo ao longo das ilhas na maioria dos verões e, rotineiramente, ajudou a administrar as linhas de armadilha. Ele amou o trabalho, mas não é para todos, ele admite. & # 8220O navio deixa você em maio e volta no início de setembro. Você está sozinho e tem que viver sem. Se você tiver um problema com seu colega de quarto, não poderá ir embora. Você tem que descobrir. É como estar em uma nave espacial. & # 8221

Cada tripulação de dois a dez pessoas recebeu tudo o que precisava para fazer abrigo, um aquecedor a querosene e comida suficiente em uma caixa de papelão para durar até o navio voltar no final do verão. A água potável estava nos banheiros do riacho nas praias (lavados duas vezes ao dia na maré alta). O tempo livre costumava ser gasto trocando romances e jogando damas. O resto do tempo foi gasto preparando e verificando armadilhas.

Antes de partir para as Aleutas, as tripulações receberam treinamento especial & # 8212não apenas para armadilhas, mas para se preparar para os fortes ventos que poderiam destruir suas tendas e roubar seus barcos. & # 8220As tendas são construídas em pisos de compensado com lona sobre estruturas de tubos de aço fixadas ao solo com cabos, & # 8221 Ebbert diz. & # 8220Mas uma tempestade pode rasgar sua barraca e entortar os postes. É melhor recolher seu equipamento, colocar pedras pesadas nele e encontrar cobertura. & # 8221

Manter um barco seguro e operacional nessas condições era particularmente complicado e arriscado. Eles podem rasgar e desinflar, ficar sem gás, serem levados pela água, quebrar. Cada barco tinha dois motores no caso de um falhar & # 8212; embora, em casos raros, ambos tivessem, como Ebbert aprendeu no início.

As Ilhas Aleutas se estendem da Península do Alasca até a Península de Kamchatka, na Rússia e # 8217s. Stocktrek Images, Inc. / Alamy Foto de stock

Como se ventos fortes, mares violentos e isolamento extremo não fossem suficientes, certas ilhas Aleutas às vezes lançam pedras e lava. Em agosto de 2008, um grupo de biólogos de aves marinhas que vivia na Ilha de Kasatochi, no meio da cadeia, teve que ser resgatado quando o Observatório de Vulcões do Alasca relatou um terremoto que durou 20 minutos. O vulcão adormecido da ilha estava prestes a explodir. & # 8220Nosso navio estava longe na cadeia, & # 8221 Ebbert lembra. & # 8220 Levaria dias para chegar até eles. & # 8221 Felizmente, havia um barco sobressalente, apropriadamente chamado Homeward Bound, perto de Adak. Com ventos de 30 nós e alto mar, o barco chegou à ilha e os biólogos embarcaram, levando consigo apenas o que podiam carregar. Eles estavam indo para o oeste, com o motor rugindo, quando o vulcão entrou em erupção, cobrindo toda a ilha com cinzas e lava.

A vida na ilha era, de certa forma, como viver em um museu gigante. Os caçadores que procuravam trincheiras encontraram artefatos nativos americanos e cavernas onde os antigos Aleutas enterraram seus mortos. Relíquias da Segunda Guerra Mundial & # 8212 & # 8212 naufrágios, aviões abatidos, metal retorcido e até mesmo munição & # 8212 espalharam pelas praias. Em 1998, Ebbert estava ajudando a montar uma cabana de caça na ilha Attu quando encontrou pelo menos uma dúzia de bananas de dinamite em uma caixa enterrada na areia. Outra vez, ele descobriu uma pilha de granadas de mão japonesas. Em 1999, uma equipe de campo tropeçou em uma mina naval não explodida que havia chegado à costa e se estabelecido em um canal de um riacho. & # 8220Round com pontas de metal, a mina parecia ter saído de um desenho animado, & # 8221 Ebbert diz. & # 8220Especialistas da base de Fort Richardson / Elmendorf voaram e explodiram. & # 8221

Uma raposa do Ártico em uma das Aleutas que ainda tem uma população delas. Eles foram removidos de mais de 40 ilhas e as populações de aves marinhas se recuperaram. Galaxiid / Alamy Foto de stock

Apesar de tantas quase catástrofes, o programa de erradicação da raposa foi um sucesso incrível. Em 2017, mais de 40 ilhas & # 82121,4 milhões de acres no total & # 8212 estavam livres de raposas. & # 8220Todas as & # 8216gettable & # 8217 ilhas foram obtidas, & # 8221 Ebbert diz, então eles voltaram mais atenção para a remoção de outros mamíferos invasores & # 8212rats, gado, coelhos, marmotas & # 8212 que podem dificultar a vida de aves marinhas nidificantes.

Os ratos, por exemplo, são notórios intrusos em muitas das ilhas do mundo & # 8217s & # 8212remotos e em outros lugares. Conhecidos por sua capacidade de prosperar em quase todos os lugares, de esgotos a coberturas, os ratos encontraram grandes pedaços de rocha vulcânica no meio do oceano, uma cadeia de utopias transbordando de pássaros em abundância para se alimentar. Os primeiros ratos a invadir as Aleutas provavelmente chegaram como clandestinos na década de 1780 em um navio de pesca japonês que naufragou na parte oeste da cadeia. A partir de então, muitas ilhas na cadeia foram infestadas por derramamentos de ratos & # 8220ratos & # 8221 ou por roedores que nadaram ou foram à deriva para um novo território. Se as raposas não fossem ruins o suficiente para eles, as aves marinhas evolutivamente indefesas seriam dizimadas por ratos correndo para seus ninhos emprestados.

O problema piorou tanto que, no início da década de 1990, os gerentes de refúgio desenvolveram um programa de derramamento de ratos, semelhante às equipes de resposta a derramamentos de óleo, para fornecer equipes de emergência equipadas para direcionar rapidamente e conter novas invasões.

Uma águia careca na ilha de Sanak. Steve Ebbert

Em 2008, biólogos do Serviço de Pesca e Vida Selvagem dos EUA e da organização sem fins lucrativos Island Conservation and Nature Conservancy lançaram corajosamente uma polêmica campanha de veneno em uma ilha tão fortemente infestada que havia sido rebatizada de Ilha Rat. Helicópteros transmitiram cargas úteis venenosas e # 8212pequenos bolos misturados com rodenticida considerados seguros para a avifauna nativa.

De fato, o projeto livrou-se de todos os ratos e, com o tempo, muitos dos pássaros que nidificaram voltaram. No entanto, teve uma consequência não intencional de matar dezenas de águias e centenas de gaivotas de asas glaucas. Os biólogos teorizaram que as gaivotas comeram o veneno e as águias comeram as gaivotas. Assim, os planos de envenenar ratos em qualquer outra ilha foram abandonados.

Um rato da Noruega na Ilha Rat, não muito antes de ser declarado livre de seus invasores titulares. Steve Ebbert

Ao contrário dos ratos, que chegaram por acidente (previsível), todos os outros tipos de mamíferos não nativos encontrados nas Aleutas foram colocados ali deliberadamente. & # 8220As pessoas pensam que essas ilhas são remotas e raramente visitadas, mas não escaparam desse instinto dos humanos de colocar animais em ilhas às quais eles não pertencem & # 8221 Ebbert diz. Animais com cascos & # 8212de gado, ovelhas e porcos a caribus e cavalos & # 8212 alteraram as comunidades de plantas nativas, causaram erosão e pisotearam ninhos de pássaros marinhos. Remover o gado, no entanto, é uma questão polêmica, especialmente em um pequeno número de ilhas de refúgio que contêm terras de propriedade privada. Gado e caribu foram eliminados em apenas algumas ilhas, mas nenhuma recentemente.

Em seus últimos anos de trabalho no refúgio, Ebbert e sua equipe se concentraram fortemente nos coelhos europeus. & # 8220Em muitos aspectos, os coelhos eram os mais difíceis, & # 8221 Ebbert diz. & # 8220Eles podem chegar a lugares onde podemos & # 8217t. Eles são pequenos o suficiente para que possam ter tocas na lateral de um penhasco e nunca chegar ao alcance do rifle. Provavelmente para evitar as águias, alguns nem saem à luz do dia. & # 8221 Eles também se reproduzem como, bem, coelhos & # 8212 frequentemente mais rápido do que até mesmo os biólogos mais atiradores de elite poderiam atingi-los. Eles conseguiram exterminar coelhos na Ilha Poa, uma das cinco ilhas com coelhos, e que ficou pendurada em penhascos e rastejando na escuridão, usando visão noturna infravermelha e rifles silenciados com miras balísticas.

Em 2017, Ebbert fez um balanço do programa de remoção de espécies invasoras. Todas as erradicações de raposas que eram práticas de serem concluídas foram concluídas. Os políticos não tinham vontade de mais esforços para erradicar o gado e o caribu. A prevenção do derramamento de ratos e a resposta a naufrágios estavam saindo das responsabilidades da equipe do refúgio. Ebbert percebeu que ele & # 8217d deixou sua marca. Ele tinha 58 anos e queria se aposentar para poder visitar a família em Indiana e viajar pelo país em seu trailer.

Milhares de auks na Ilha Kiska, no grupo das Ilhas Rat, nas Aleutas ocidentais. Galaxiid / Alamy Foto de stock

Depois que Ebbert largou o rifle e pendurou o colete salva-vidas, no Halloween daquele ano, o refúgio não preencheu sua posição, em meio a cortes de pessoal em refúgios nacionais de vida selvagem. Não há planos de erradicação atuais e nenhum planejado para o futuro próximo, apenas alguns esforços restantes para prevenir mais invasões e responder a elas caso um intruso apareça.

& # 8220 Sempre haverá ameaças de novas invasões & # 8221 Ebbert diz. Mas a falta de raposas permanecerá como seu legado. Com as ilhas & # 8217 localização remota e status protegido, é improvável que sejam reintroduzidas. & # 8220Muitos anos a partir de agora, cada caçador que participou do esforço de erradicação pode apontar para uma ilha em um mapa do Alasca e dizer: & # 8216Eu sei que fiz uma diferença duradoura lá naquele verão, e a ilha e as aves marinhas que nidificam ali são melhores para isso. & # 8217 & # 8221 No final daqueles verões, diz ele, & # 8220nossas barbas eram mais longas, éramos mais magros e mais fortes. Mas voltamos no tempo & # 8212; isso foi muito gratificante. & # 8221


Amateurnitologista

Inteligente, sarcástico, pragmático - isso é SO Chandler e SO membro da família corvid. Por que Blue Jay exatamente? Bem, eu queria enfatizar um pouco do afastamento de Chandler de sua família como no meme popular contrastando os famosos corvídeos mais sombrios / taciturnos (Crows, Ravens, Magpies) com o Gaio Azul. E tenho feito o meu melhor para tornar os Friendsbirds nativos de Nova York quando possível (a menos que seja indicado de outra forma), então, realmente, é um acéfalo. Você sabe quem não é um acéfalo? The Blue Jay! Inteligente o suficiente para usar ferramentas, lembrar de pessoas, prantear amigos e armazenar alimentos, este corvid tem muito em comum com Chandler, que também pode fazer todas essas coisas. Você deve se lembrar que Chandler era um grande planejador e que economizou seu dinheiro meticulosamente, da mesma forma que um Jay Azul se preparando para o inverno armazena comida em esconderijos. Chandler também sempre teve um pouco de paciência, especialmente sobre seu trabalho - tipo como os Jays são conhecidos por serem territoriais e agressivos, mas também sociais e gregários. Gregário- amigável- Friends- o personagem Chandler do programa de TV Friends. É fácil ver as conexões.


Este é muito fácil, e não apenas porque o pássaro se chama Phoebe (em parte por causa do nome, sim). Como Phoebe, a personagem, Phoebe, a ave, canta uma canção minúscula e desafinada. Adorável e facilmente reconhecível, Phoebes são vistas constantemente em movimento, pairando e voando, pousando raramente por muito tempo. Phoebe faz regularmente seus ninhos embaixo de pontes ou em poços de minas abandonados, o que lembra a vida frequente de Phoebe nas ruas. Curiosamente, a Phoebe de Say tem o hábito migratório de acabar milhares de quilômetros fora de seus habitats habituais, o que é um claro análogo aos voos selvagens da fantasia que Phoebe costuma fazer. Então, tipo, a não poderia ser mais óbvio, certo? A questão, porém, era qual Phoebe estava certa. Você pode pensar que é Phoebe oriental, já que afinal ela é nova-iorquina, mas acho que Phoebe realmente vem do espírito ocidental de boemia e pensamento livre. Ela é uma californiana de coração, se não no programa de TV. Além disso, isso permite a presença de uma gêmea escura na Black Phoebe, que pode representar sua irmã gêmea Ursula.

Bem, aí está. 6 pares indiscutíveis obtidos através dos métodos científicos mais rigorosos. Junte-se a nós na próxima vez, onde aprenderemos quais pássaros seriam os personagens de Seinfeld ou algo assim.


Nicola Naturalist Society - eventos de outono de 2019

Reuniões noturnas da Nicola Naturalist Society são realizadas às 19h no Lecture Theatre do NVIT (Nicola Valley Institute of Technology) em Belshaw Road, Merritt. Neste outono, nossas reuniões serão na terceira quarta-feira de cada mês (em vez de nossas quintas-feiras habituais). Nossas reuniões noturnas são gratuitas para os membros. Temos rifas incríveis.

Estamos agora no facebook. Confira nossa nova página no Facebook: NNS Facebook

Role para baixo para ver o que está por vir no outono de 2019

Por motivos de seguro, nossos passeios de campo são restritos aos nossos membros (os visitantes podem se associar por um dia). Para ingressar na Nicola Naturalist Society, clique aqui: Página de membros


Métodos

Sistema de estudo

O complexo Izembek (Fig. 1) compreende várias represas rasas no final da Península do Alasca (55 ° 15 ′ N, 163 ° 00 ′ W), adjacente ao Mar de Bering ao norte e ao Golfo do Alasca ao sul. O complexo suporta

31.000 ha de Eelgrass, com a maior área de Eelgrass na Lagoa Izembek (17.000 ha Hogrefe et al. 2014). Durante as condições de congelamento, o gelo marinho se forma ao longo das linhas costeiras e em áreas offshore rasas. Os níveis de gelo marinho freqüentemente variam entre as margens discretas, com aquelas situadas ao longo do lado do Golfo do Alasca da península permanecendo em grande parte sem gelo quando a Lagoa Izembek está congelada (Ward et al. 2009). Portanto, a distribuição dos gansos dentro do complexo Izembek durante o inverno é fortemente influenciada pelas condições prevalecentes do gelo marinho e, consequentemente, pela acessibilidade dos leitos de erva-doce.

Modelagem de tempo, espaço e variáveis ​​ambientais

O modelo simulou 319 d, de 1 de agosto a 15 de junho, abrangendo o período de todos os níveis de uso de brant da área (Tabela 1a ver Apêndice S1: Tabela S1a para detalhes). O modelo definiu o outono como 1º de agosto a 15 de dezembro, o inverno de 16 de dezembro a 31 de março e a primavera de 1º de abril a 15 de junho (Tabela 1a, ver Apêndice S1: Tabela S1a para detalhes), correspondendo aos períodos de estagiamento de queda de Brant, hibernação e estágio de primavera, respectivamente (Reed et al. 1989, Mason et al. 2006, 2007, Baldassarre 2014). O modelo funcionou até 15 de junho para garantir que todos os migrantes simulados na primavera pudessem emigrar, já que alguns não chegaram até 27 de maio (Tabela 1c, ver Apêndice S1: Tabela S1c para detalhes). O tempo foi dividido em intervalos de tempo discretos de 1 hora, dentro dos quais as condições ambientais foram consideradas constantes. Usamos um intervalo de tempo de 1 h, em vez de uma duração mais longa, pois o modelo precisava representar a exposição e cobertura do recurso alimentar de capim-enguia durante o ciclo das marés entre os intervalos de tempo. O modelo incorporou o ciclo diurno, com horas de luz do dia ou noite com base nos horários previstos de crepúsculo civil ao nascer e pôr do sol para o complexo de Izembek (Tabela 1a ver Apêndice S1: Tabela S1a para detalhes). Supunha-se que os gansos podiam se alimentar de dia e de noite.

Parâmetro Valor (es)
(a) Parâmetros de tempo e ambientais
Duração da etapa de tempo (horas) 1
Comprimento do modelo (dias) 319
Temporadas Outono, 1 ° de agosto a 15 de dezembro
Inverno, 16 de dezembro a 31 de março
Primavera, 1 de abril a 15 de junho
Duração da luz do dia (horas) 8.7–19.4
Porcentagem e duração da cobertura de gelo na Lagoa Izembek 0%
25%, 40 d
50%, 40 d
100%, 27 d
Ponto médio das condições de gelo Cedo, 15 de janeiro
Meados de 14 de fevereiro
Tarde, 15 de março
Taxa de perturbação de caça e navegação (h -1) Queda, 0,00, 0,30, 0,60 ou 0,42
Inverno, 0,00 ou 0,06
Primavera, 0,00
Taxa de perturbação natural (h -1) Queda, 0,13-0,32
Inverno / primavera, 0,32 todas as áreas
(b) Parâmetros de patch e eelgrass
Tamanho do remendo (m 2) 1000 × 1000 = 1,000,000
No. patches 308
No. sites 11
Elevação do patch (m MLLW) -2,43 a 0,87
Nível de água (m MLLW) Varia
Biomassa inicial de Eelgrass (B) (g DM m -2)
Locais do Mar de Bering B = 169.27 − 120.15H − 8.7932H 2
Locais do Golfo do Alasca B = 198.93 − 94.75H − 72.4132H 2 onde H = elevação do patch (m MLLW)
Comprimento inicial do rebento de Eelgrass (L) (m)
Locais do Mar de Bering L = 0,56279 - 0,39378H
Locais do Golfo do Alasca L = 0,48837 - 0,25641H Onde H = elevação do patch (m MLLW)
Mudanças sazonais da grama enguia na biomassa independente do esgotamento pelos gansos
Fim do declínio da biomassa, dia 138 Alteração proporcional por intervalo de tempo, 0,9996361223
Início do crescimento da biomassa, dia 245 Alteração proporcional por intervalo de tempo, 1,0003706031
Mudanças sazonais de Eelgrass no comprimento do rebento (Lrel) eurel = (136,23 - 1.1294D + 0,0027D 2) /136,23 onde D = Dias desde 1 de agosto
Metabolizabilidade do capim-enguia (%) 51
Conteúdo de energia do capim-enguia (kJ g -1 DM) 16.8
Biomassa flutuante de Eelgrass (porcentagem de biomassa enraizada no patch) Queda, 5% da biomassa enraizada
Inverno / primavera, sem biomassa flutuante
(c) Parâmetros de ganso
Tamanho da população (número que passa pelos sites) Queda de Brant, 160.736
Inverno de Brant, 43.210
Primavera Brant, 52.058
Queda cacarejante, 34.648
Tamanho dos rebanhos 1000 indivíduos
Primeira e última data de chegada Outono de Brant, 25 de agosto a 8 de outubro
Inverno de Brant, 25 de agosto a 8 de outubro
Primavera de Brant, 1 de abril a 27 de maio
Queda cacarejante, 2 de setembro a 6 de setembro
Data de partida Outono de Brant, 4 de novembro
Inverno de Brant, 15 de maio
Primavera de Brant, 15 de maio
Queda cacarejante, 29 de outubro
Distribuição inicial nos sites (proporção em cada site, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 67, 68, 80, 81, 85, 100) Brant outono / inverno 0,086, 0,280, 0,081, 0,093, 0,156, 0,215, 0,007, 0,035, 0,022, 0,000, 0,025, 0,000
Mola de Brant 0,059, 0,101, 0,087, 0,008, 0,477, 0,161, 0,073, 0,008, 0,026, 0,000, 0,000, 0,000
Cacarejar queda 0,383, 0,117, 0,042, 0,009, 0,107, 0,133, 0,007, 0,139, 0,062, 0,00, 0,001, 0,000
Massa corporal na chegada (g) Queda de Brant, 1369
Inverno de Brant, 1369
Primavera Brant, 1522
Queda cacarejante, 2202
Densidade de energia da gordura (kJ g -1) Brant / Cacarejar, 34,3
Massa de fome (g) Brant, 964
Cacarejar, 161
Massa corporal alvo durante o estadiamento (g) Queda de Brant, 1752
Inverno de Brant, 1715 (início do inverno) a 1585 (final do inverno)
Primavera Brant, 1611
Queda cacarejante, 2529
Massa corporal de partida (g) Queda de Brant, 1752
Inverno de Brant, 1611
Primavera Brant, 1611
Queda cacarejante, 2529
Profundidade máxima de forrageamento (m) Brant, 0,40
Cacarejar, 0,52
Taxa de consumo de biomassa de capim-enguia (g DM h -1) (C) Brant C = 60 × (0,419B) / (20,2 + B)
Cacarejar C = 60 × (0,659B) / (20,2 + B) onde B = biomassa de capim-enguia (g DM / m2).
Assimilação máxima de energia (KJ d -1) (Emax) Emax = 1713M 0,72 onde M = massa corporal
Queda de Brant M = 1597
Inverno de Brant M = 1585
Mola Brant M = 1491
Cacarejar queda M = 2366
Gasto de energia durante a forrageamento (J s −1) Queda de Brant, 13,5
Inverno de Brant (sem gelo), 15,3
Inverno de Brant (25% de gelo), 17,1
Inverno Brant (50% gelo), 17,1
Inverno de Brant (100% gelo), 19,9
Primavera Brant, 14,4
Queda cacarejante, 18,4
Gasto de energia durante o repouso (J s −1)
Queda de Brant, 12,8
Inverno de Brant (sem gelo), 15,3
Inverno Brant (25% gelo), 17,1
Inverno Brant (50% gelo), 17,1
Inverno de Brant (100% gelo), 19,9
Primavera Brant, 14,4
Queda cacarejante, 18,4
Custo de tempo por evento (s) de perturbação (DT) DT = pRdT onde pR = probabilidade de responder à perturbação e dT = tempo custo da resposta
Perturbação de base terrestre pR = 0.824 dT = 139
Perturbação do barco pR = 0.931 dT = 224
Perturbação natural pR = 0.980 dT = 206
Custo de energia por evento de perturbação (KJ) (DE) DE = pFdE onde pF = probabilidade de voar devido a perturbações e dE = custo de energia de resposta
Perturbação terrestre pF = 0.900
Queda de Brant dE = 10,23, inverno brant dE = 10,38, mola brant dE = 10.27
Queda cacarejante dE = 15.50
Perturbação do barco pF = 0.944
Queda de Brant dE = 17,02, inverno brant dE = 17,27, mola brant dE = 17.08
Queda cacarejante dE = 25.78
Perturbação natural pF = 0.917
Queda de Brant dE = 10,50, inverno brant dE = 10,65, mola brant dE = 10.53
Queda cacarejante dE = 15.90

O modelo incluiu 11 locais, compreendendo os seguintes embayments na Península do Alasca: Izembek Lagoon, Hook Bay, St. Catherine Cove, Middle Lagoon, Big Lagoon, Little John Lagoon e Kinzarof Lagoon. A Lagoa Izembek foi dividida em 6 subsites (denominados “locais”, doravante, Fig. 1, ver Dados S1 para detalhes) compreendendo locais onde as contagens da população são feitas na lagoa (Wilson e Dau 2016). Cada local foi dividido em manchas quadradas de 1x1 km. Patches eram a unidade de espaço que os pássaros ocupavam e se moviam entre eles.

A altura da maré (em metros, na maré baixa média m MLLW) durante cada intervalo de tempo dentro de cada local foi medida a partir do medidor de maré mais próximo (Fig. 1), considerando os seguintes deslocamentos observados no tempo das curvas de maré. Estes foram Izembek Lagoon, medidor Grant Point Hook Bay e St. Catherine Cove, medidor St. Catherine Cove Middle Lagoon e Little John Lagoon, medidor Morzhovoi Bay e Lagoa Kinzarof, Cold Bay com 1 h de atraso e Big Lagoon, medidor Morzhovoi Bay com atraso de 2 h (Tabela 1b, consulte o Apêndice S1: Tabela S1b para obter detalhes). A profundidade da água sobre cada patch durante cada intervalo de tempo foi calculada como a diferença entre a altura da maré durante o intervalo de tempo e a elevação do patch (ver Dados S1 para detalhes). Presume-se que os remendos ficam expostos quando a elevação do remendo era maior do que a altura da maré.

O modelo simulou quatro tipos de condições de gelo marinho no inverno, quando a erva-cidreira era parcial ou totalmente inacessível aos gansos na Lagoa de Izembek: sem gelo e 25%, 50% e 100% de cobertura de gelo de acordo com Petrich et al. (2014). Em geral, manchas com uma elevação mais alta e, portanto, com menor profundidade da água, foram mais suscetíveis ao congelamento. Outros locais além da Lagoa Izembek sempre mantiveram algumas manchas de grama sem gelo, mesmo quando a Lagoa Izembek estava completamente coberta de gelo (Petrich et al. 2014, consulte os Dados S1 para obter detalhes). A duração das condições do gelo marinho foi tomada como a média observada para diferentes extensões de cobertura de gelo (Petrich et al. 2014, Wilson e Dau 2016 Tabela 1a, consulte o Apêndice S1: Tabela S1a para detalhes), ou presume-se que ocorra durante todo o inverno como uma suposição extrema. Em simulações onde a cobertura de gelo não durou durante todo o inverno, três tempos alternativos de gelo foram assumidos, início, meio e tarde, com base nas variações observadas no tempo de gelo (Tabela 1a ver Apêndice S1: Tabela S1a para detalhes).

O modelo incorporou humanos (principalmente caça em terra e barco) e naturais (principalmente águias americanas Haliaeetus leucocephalus Linnaeus 1766) perturbações (Tabela 1c ver Apêndice S1: Tabela S1c para detalhes) com a frequência e distribuição de eventos com base em dados empíricos e observações (Ward et al. 1994, Daniels 2014).

Cada pedaço tinha uma taxa de perturbação específica da estação que, em combinação, afetava os custos de tempo e energia dos gansos (consulte os Dados S1 para obter detalhes). Os eventos de perturbação induzida pelo homem (caça e passeios de barco) seguiram os períodos legais de caça (permitidos no outono e na primavera, mas não no inverno) e foram mais frequentes perto dos pontos de acesso rodoviários. Os distúrbios naturais foram mais frequentes longe dos pontos de acesso rodoviários e no inverno e na primavera, quando as águias são mais abundantes (Ward et al. 1994, Daniels et al. 2019).

Modelagem de biomassa de eelgrass e comprimento de rebento

O suprimento de alimentos para a enguia em cada local foi modelado como o arranjo espacial da enguia ao longo da grade de manchas de 1 km 2 (Fig. 1). Cada trecho tinha uma elevação fixa (que determinava a profundidade da água durante o ciclo das marés) e, quando a enguia estava presente, continha uma biomassa acima do solo específica e o comprimento do rebento da enguia, que combinada com a elevação determinava a disponibilidade de alimento para os gansos (ver Dados S1 para detalhes). A elevação média de cada patch foi calculada a partir de um Modelo Digital de Elevação (DEM) do complexo Izembek usando ArcGIS 10.1 (ESRI, Redlands, Califórnia, EUA).

O comprimento do rebento de Eelgrass (m, meristema à ponta da folha não pastada mais longa) e a biomassa acima do solo (g / m 2) foram derivados de levantamentos de barco em todo o embainhamento usando um projeto de amostragem pontual sistemática (Ward e Amundson 2019). As pesquisas foram realizadas durante o pico de biomassa e comprimento do rebento da erva-doce em julho-setembro, entre 2007 e 2015 (Izembek 2007-2011 e 2015 Kinzarof 2008-2010 todos os outros 2012 Hogrefe et al. 2014). Uma regressão quadrática separada foi usada para relacionar a biomassa acima do solo à elevação para locais que fazem fronteira com o Golfo do Alasca e o Mar de Bering, porque os regimes de marés e as características geomórficas costeiras que influenciam o crescimento do capim-enguia diferiam entre esses dois lados da Península do Alasca (Tabela de Hogrefe et al. 2014 1b consulte o Apêndice S1: Tabela S1b para detalhes). Da mesma forma, regressões lineares separadas foram usadas para expressar o comprimento do rebento em termos de elevação (Ruesink et al. 2010 Tabela 1b, consulte o Apêndice S1: Tabela S1b para detalhes). Essas relações foram então usadas para prever a biomassa acima do solo no verão da erva-doce (1º de agosto) e o comprimento do rebento em relação à elevação média (m MLLW) de cada mancha.

Embora não tenha havido um declínio sistemático recente na biomassa da erva-doce dentro do complexo de Izembek, ainda houve uma variação considerável de ano para ano, com o mínimo em um período de dez anos em torno de 50% da média (2007-2018 Ward e Amundson 2019). Portanto, executamos duas simulações de modelo alternativo para a biomassa da enguia para contabilizar a variação temporal na abundância da enguia dentro do complexo de Izembek: simulações de biomassa média com base na biomassa média da erva-doce durante os levantamentos de todo o embayamento e simulações de biomassa mínima com base em 50% de a biomassa média dessas pesquisas. As simulações de biomassa média e mínima representaram a variação observada na biomassa de erva-doce (Ward e Amundson 2019).

Mudanças na biomassa de enguia do outono à primavera foram determinadas a partir de amostragem mensal de enguia em um prado que recebeu pouco ou nenhum pastejo de gansos na lagoa Izembek durante 2010 e 2011 (Fig. 2a). Esta relação foi usada para calcular as taxas de mudança da erva-doce durante três períodos do ano: queda da biomassa no outono (1 de agosto - 15 de dezembro), biomassa estável no inverno (16 de dezembro - 31 de março) e aumento da biomassa na primavera (1 de abril - 31 de maio Fig. 2a Tabela 1b (consulte o Apêndice S1: Tabela S1b para detalhes). Mudanças no comprimento do rebento da enguia ao longo do tempo foram determinadas a partir da mesma amostragem mensal de enguia em 2010–2011 (Fig. 2b). O comprimento relativo do rebento do capim-enguia foi calculado como uma proporção do comprimento máximo anual do rebento. Uma equação quadrática foi ajustada ao comprimento relativo do rebento para determinar a relação entre o comprimento do rebento e o dia (Fig. 2b Tabela 1b ver Apêndice S1: Tabela S1b para detalhes).

Os gansos se alimentam principalmente de enguias enraizadas no substrato quando ele está exposto e ao alcance nas marés baixas, mas também podem consumir eelgrass que se desloca e flutua para a superfície da água à medida que a maré sobe acima dos leitos de enguias (por exemplo, Moore 2002, Elkinton et al . 2013). Durante cada etapa de tempo, presumia-se que as aves se alimentavam de enguias enraizadas ou flutuantes, dependendo de qual produzia a maior taxa de consumo de energia.

Modelagem de migração de ganso, energética e comportamento

O modelo considerou três tipos de brant: migrantes de outono - gansos que passaram pelos locais durante a migração para o sul, migrantes de primavera - gansos que passaram pelos locais durante a migração para o norte e durante o inverno - gansos que passaram o inverno nos locais. Embora, na realidade, os migrantes do outono e da primavera sejam os mesmos gansos, eles foram considerados separadamente no modelo, uma vez que não incorporou outros locais de preparação e invernada ao sul. Os gansos cacarejantes só foram incluídos no outono, uma vez que não invertem nem param no complexo de Izembek na primavera. Gansos cacarejantes são conhecidos por se alimentarem em algum grau de outros alimentos que não a eelgrass (Hupp et al. 2013), mas para explorar o impacto potencial total dos gansos cacarejantes em brant por meio da competição alimentar entre espécies, presumimos que os gansos cacarejantes obtiveram todos os seus necessidades de energia do eelgrass. Os tamanhos das populações de ganso modeladas foram baseados na contagem média de pesquisas, feitas durante o estadiamento do outono (Wilson 2017b , 2019), inverno (Wilson 2017uma ), e encenação da primavera (Wilson 2017c ) em 2010–2016 (Tabela 1c, consulte o Apêndice S1: Tabela S1c para obter detalhes).

Devido ao grande tamanho da população de gansos nos locais, em vez de simular cada ganso individual, a maioria das simulações de modelo usava bandos compostos por 1000 indivíduos. Essa suposição era realista, uma vez que os gansos dentro dos locais tendem a se concentrar em grandes bandos em vez de se espalharem individualmente pelos locais (Ward e Stehn 1989). No entanto, para testar o efeito desse tamanho de lote assumido, também rodamos um conjunto de simulações com um tamanho de lote de 100 para comparar as previsões (veja os resultados abaixo). Presumiu-se que os indivíduos dentro dos bandos tinham comportamento, quantidade de energia e destinos compartilhados idênticos (ou seja, todos sobreviveram ou morreram). Cada bando de modelo foi atribuído aleatoriamente a uma data quando chegou a Izembek, desenhada a partir de uma distribuição uniforme entre o primeiro e o último gansos que chegaram observados dos três tipos de estação (Tabela 1c ver Apêndice S1: Tabela S1c para detalhes). Uma distribuição uniforme foi assumida para simplificar e como dados limitados estavam disponíveis para determinar a distribuição precisa das datas de chegada. Cada bando também recebeu um local de chegada, derivado da proporção média de gansos contados em cada local (incluindo os subsítios da Lagoa Izembek) durante o outono, inverno e primavera (Tabela 1c, ver Apêndice S1: Tabela S1c para detalhes). Os bandos permaneceram em seus locais de chegada, a menos que suas reservas de energia caíssem abaixo de um valor limite (veja abaixo os detalhes do movimento entre os locais).

O modelo rastreou a quantidade de energia armazenada por cada ganso, calculada como a massa corporal menos a massa corporal magra e multiplicada pelo conteúdo energético da gordura (Tabela 1c, consulte o Apêndice S1: Tabela S1c para obter detalhes). Os gansos de cada tipo também receberam uma massa corporal na chegada ao sistema (Tabela 1c, consulte o Apêndice S1: Tabela S1c para obter detalhes). Presumiu-se que os gansos permaneceriam no sistema até que um dia de partida específico do tipo e o estoque de energia de partida fossem alcançados (Tabela 1c, consulte o Apêndice S1: Tabela S1c para detalhes). Os gansos emigraram do sistema após o dia da partida ter sido atingido, mas somente se eles tivessem atingido a massa corporal de partida.

O gasto energético diário para cada estação foi calculado seguindo Nolet et al. (2016), usando estimativas de massa corporal de dados brutos de Mason et al. (2007), que incluiu aproximadamente 30% de juvenis na amostra. Foram calculados inicialmente dois valores possíveis de gasto energético diário: Taxa Metabólica de Campo (FMR), incorporando os custos da atividade, mas excluindo quaisquer custos adicionais de termorregulação, e Taxa Metabólica de Aquecimento (HMR), incorporando os custos de termorregulação. A FMR foi calculada a partir da taxa metabólica basal (BMR) e do comportamento das aves (Tabela 1c), e a própria BMR foi calculada a partir da massa corporal (Bruinzeel et al. 1997). O gasto energético de diferentes comportamentos foi calculado a partir de multiplicadores de TMB (Nolet et al. 2016, excluindo voo, que foi abordado com mais detalhes na Tabela 1c). O HMR foi calculado com ajustes ambientais para considerar a natureza predominantemente marinha do ambiente. Este método considera vários fatores na termorregulação aviária, incluindo a temperatura corporal individual (Tb), temperatura ambiente (Tuma), radiação solar (Rg), velocidade do vento (u) e o impacto das condições ambientais. Como a energia gasta por meio da atividade pode substituir a produção de calor por meio da termogênese regulatória (Swanson 2010), HMR ou FMR foi selecionado com preferência para o valor mais alto durante cada estação. Portanto, em brant, FMR foi o maior valor durante o outono, enquanto HMR foi o maior valor durante o inverno e a primavera, quando o brant foi regularmente exposto a temperaturas abaixo de sua zona de termoneutralidade. Gansos cacarejantes estavam presentes apenas durante o outono e não experimentaram condições ambientais que exigissem termorregulação adicional.

Presumimos que o capim enraizado estava disponível para os gansos se estivesse dentro da profundidade máxima de forrageamento dos gansos, 40 cm (Clausen 1994, 2000). Os gansos cacarejantes são cerca de 12 cm mais compridos do que o brant, do meio do ventre à ponta do bico, portanto, supõe-se que ganham 12 cm a mais de profundidade de forrageamento. Para cada intervalo de tempo, a profundidade da água em cada patch foi calculada como a diferença entre o nível da água e a elevação do patch, ambos medidos em relação ao MLLW. Isso pressupõe que a erva-brava está de pé na coluna de água e não se curva devido à corrente de água, por exemplo. Para testar a sensibilidade do modelo a esta suposição, incluímos a altura do capim-enguia na análise de sensibilidade do modelo (veja os resultados abaixo). A enguia enraizada foi classificada como totalmente disponível para gansos ou não disponível para gansos, dependendo se estava ao alcance da superfície da água ou exposta pela maré (Tabela 1c, ver Apêndice S1: Tabela S1c para detalhes). Presume-se que a enguia flutuante, quando presente no outono, está sempre disponível para os gansos.

A taxa na qual os gansos modelo podiam consumir enguia, durante o dia ou à noite, foi calculada usando uma resposta funcional derivada de gansos brent de barriga clara (Branta bernicla hrota) alimentando-se de Z. marina na Europa (Clausen 2013). A Fig. 3 mostra essa relação em comparação com as taxas de ingestão de alimentação aquática de brant em Eelgrass em Humboldt Bay (Stillman et al. 2015). Usamos a curva de resposta funcional de Clausen (2013) que foi derivada de estudos em gansos-brent de barriga clara que se alimentam de animais submersos Z. marina leitos no Limfjord, Dinamarca (57 ° N Clausen 1998, 2000), e de gansos Brent de barriga escura alimentando-se de animais submersos Z. marina no Mar Branco, Rússia (65 ° N Clausen 1997). Esses pássaros estavam, portanto, se alimentando do mesmo e submersos Zostera espécies como os pássaros fazem no complexo Izembek (55 ° N).As taxas de ingestão no Limfjord foram avaliadas a partir de medições indiretas, ou seja, pelas taxas de deposição fecal em bandos que ocasionalmente desembarcavam após longos períodos de alimentação extensa em Zostera. As taxas de ingestão foram estimadas seguindo a abordagem de Prop e Deerenberg (1991) - com detalhes fornecidos por Clausen (1994). A biomassa disponível durante os dias de alimentação em Zostera foi derivado por interpolação de biomassa, comprimento de folha e níveis de água conhecidos (dados de Clausen 1998, 2000). No Mar Branco, as taxas de ingestão foram estimadas a partir de medições diretas, onde aves alimentadas foram observadas de perto (& lt100 m) com um telescópio 20-60 × de uma torre de observação, e sua ingestão em termos de plantas inteiras ou folhas únicas foi contada por unidade de tempo. Biomassas de plantas e folhas foram medidas a partir de amostras de plantas e biomassa disponível durante os dias de alimentação em Zostera estimado a partir do comprimento das folhas e níveis de água seguindo os mesmos métodos de Clausen (2000). Os dados sobre a taxa de ingestão de nado de brant em enguias em Humboldt Bay são variáveis ​​e não mostram relação com a biomassa de enguias, mas a relação usada por Clausen (2013) prevê taxas de ingestão dentro da faixa observada (Fig. 3). Seguindo Wood et al. (2013), a taxa de consumo de gansos cacarejantes foi dimensionada alometricamente a partir das taxas de brant.

O modelo incorporou competição devido ao esgotamento de recursos, com cada bando de modelos esgotando 1000 vezes a quantidade de enguia consumida por um único ganso individual. Os gansos salgados e cacarejantes, portanto, competiam entre si e entre si por comida. Além disso, a competição por recursos ocorreu tanto dentro como entre bandos simulados, através do esgotamento sucessivo do capim-enguia entre os intervalos de tempo. Outros tipos de competição, como agressão ou evasão do concorrente, não foram modelados explicitamente, pois não foram considerados importantes neste sistema, e teriam sido incorporados em certa medida na resposta funcional, pois era baseada em observações de gansos reais. Nenhum limite foi definido para o número de gansos que poderiam ocorrer em um único patch.

A taxa na qual os gansos modelo podiam assimilar energia da alimentação foi calculada a partir da taxa em que eles podiam se alimentar, o conteúdo de energia da enguia e sua eficiência digestiva na assimilação da erva-enguia (Tabela 1c). Um limite foi colocado na ingestão diária máxima possível de energia, com base em uma equação alométrica de Kirkwood (1983).

Os gansos modelo tinham um tamanho alvo de armazenamento de energia (por exemplo, gordura) que tentavam atingir (Tabela 1c, consulte o Apêndice S1: Tabela S1c para detalhes). O tamanho do armazenamento de energia alvo foi assumido para mudar linearmente entre os dias de chegada e partida para gansos que chegam e partem dentro de uma estação (ou seja, brant de outono e gansos cacarejantes, e brant de primavera). O estoque de energia alvo de brant que permanece ao longo do inverno mudou linearmente entre os pontos fixos nas estações: chegada no outono até o final do outono, o final do outono até o final do inverno e, em seguida, o final do inverno até o armazenamento de energia de partida.

O tamanho do armazenamento de energia alvo de brant durante o inverno foi assumido para diminuir durante o inverno, para imitar a redução na massa corporal de brant observada durante o inverno no complexo de Izembek (Mason et al. 2007). As razões para este fenômeno, além da ingestão calórica reduzida, podem incluir o aprimoramento do desempenho de voo para evitar predadores (por exemplo, Zimmer et al. 2010). As águias americanas são especialmente numerosas na área de estudo durante o inverno e a primavera (Daniels 2014, Wilson et al. 2017uma ), portanto, evitar a predação pode ser um fator importante no gerenciamento da massa corporal dos gansos.

Ao atingir sua meta de armazenamento de energia, os gansos modelo regulavam a quantidade de comida que consumiam, reduzindo a quantidade de tempo que gastavam se alimentando e, portanto, aumentando o tempo de descanso. No entanto, se os gansos modelo não conseguissem atender às suas necessidades de energia, eles retirariam energia de seu depósito, diminuindo assim o tamanho geral do depósito. Os gansos que não conseguiram alcançar seu estoque de energia de partida permaneceram no sistema. Se o estoque de energia de um pássaro caísse a zero, ele morria de fome. Portanto, a mortalidade devido à fome foi incorporada como uma resposta do tipo tudo ou nada à redução no tamanho do estoque de energia, na qual os pássaros sobreviviam se o tamanho do seu estoque de energia fosse maior que zero, mas morriam assim que o tamanho do estoque caísse para zero. Fontes diretas de mortalidade por caça ou predação não foram incorporadas ao modelo e foram consideradas constantes entre as simulações do modelo.

Perturbações dentro das manchas acarretavam custos de tempo e energia para os gansos. O custo de tempo total foi calculado a partir da soma dos períodos perdidos devido a diferentes tipos de distúrbios humanos e naturais, enquanto contabilizando sua taxa (eventos de distúrbio / h) e a proporção de gansos respondendo ao evento (Tabela 1c, ver Apêndice S1: Tabela S1c para detalhes). Os mesmos custos de tempo foram presumidos para gansos crocantes e cacarejantes e foram obtidos de evidências empíricas sobre as respostas de brant à perturbação humana e natural durante a queda na lagoa Izembek (Ward et al. 1994). Os custos de energia subsequentes foram calculados com base na massa média das aves ao longo das estações (Gudmundsson 1995, Nudds e Bryant 2000, Mason et al. 2006, 2007).

O custo de tempo devido à perturbação reduziu o tempo que os gansos eram capazes de se alimentar em um intervalo de tempo. O custo total de energia foi calculado como a soma do custo de energia devido a cada tipo de perturbação, considerando as taxas de perturbação, o tempo de voo dos gansos, as demandas de energia do voo e a proporção de gansos respondendo à perturbação (Tabela 1c, ver Apêndice S1: Tabela S1c para detalhes). Assumiu-se que os custos de vôo compreendiam 10 s de vôo de decolagem com uso intensivo de energia, combinado com vôo em estado estacionário menos intensivo. Isso foi calculado usando a literatura disponível (Gudmundsson et al. 1995, Nudds e Bryant 2000) como uma função da filogenia, massa e estilo de voo. O custo de energia da perturbação aumentou a quantidade de energia gasta pelos gansos em um intervalo de tempo.

Durante cada etapa de tempo, os gansos modelo podem escolher se mover para um novo patch ou permanecer em sua posição atual. Se eles conseguissem manter o tamanho de seu armazenamento de energia dentro de 95% do armazenamento de energia alvo, os gansos modelo apenas se moviam para manchas dentro de seu local atual. Nesse caso, os gansos mudaram para o canteiro que maximizava sua taxa líquida de consumo de energia, levando em consideração a assimilação de energia e os custos de energia de forrageamento e descanso, mas não contabilizando a distância até o canteiro. Se seu armazenamento de energia fosse inferior a 95% do tamanho de seu armazenamento de energia alvo, os gansos modelo consideravam manchas dentro de uma distância fixa de 20 km, ou seja, a distância que os gansos poderiam se mover em 0,5 h. (meio passo de tempo). Ao se mover entre os locais, os gansos modelo ainda mudaram para o patch que maximizou sua taxa líquida de consumo de energia. Isso reflete as escolhas feitas por gansos reais (Moore e Black 2006) para minimizar o gasto desnecessário de energia. A distância e o custo energético da movimentação entre os patches não foram incorporados ao modelo.

Simulações de modelo

O modelo incorporou a estocasticidade em termos das datas de chegada e locais dos gansos, e o movimento dos gansos entre as manchas, gerando ganho de energia líquido igual. Portanto, cinco simulações replicadas foram executadas para cada combinação de valores de parâmetros do modelo, com previsões médias e intervalos de confiança de 95% associados apresentados. Para maior clareza, e como os intervalos de confiança de 95% eram frequentemente pequenos em relação às médias, os intervalos de confiança de 95% não são mostrados nas figuras. Em vez disso, os intervalos de confiança de 95% são indicados nas legendas das figuras. No total, foram executadas 170 simulações.

Validação de modelo e análise de sensibilidade

O modelo foi testado comparando suas previsões com os seguintes dados de campo observados: proporção de gansos sobreviventes, proporção de gansos emigrando, proporção de tempo gasto alimentando-se por gansos, taxa média de mudança de massa corporal, duração média do estágio, número de pico de pássaros, número de dias de uso de pássaros, diversidade de locais ocupados e distribuição de pássaros em todos os locais. Para avaliar o efeito do tamanho do lote assumido no modelo, dois conjuntos de previsões foram testados com base em um tamanho de lote de 1000 ou 100. O método de perturbação de parâmetro individual foi usado para avaliar a sensibilidade das previsões do modelo para ajustes nos valores dos parâmetros . Avaliamos a quantidade de mudança que ocorre na proporção do tempo de alimentação devido a mudanças de mais ou menos 25% nos valores dos parâmetros individuais. Optamos por variar o valor de cada parâmetro por um valor fixo, em vez de pelo valor pelo qual o parâmetro varia no sistema real, porque a quantidade de variação não foi medida em todos os casos.

Cenário I: mudanças na biomassa de eelgrass

Para examinar os efeitos das mudanças na biomassa da enguia, realizamos simulações nas quais a biomassa da enguia de cada patch foi sequencialmente variada em incrementos de 10% de 10% a 100% da biomassa média medida (Ward e Amundson 2019). As simulações subsequentes (ou seja, Cenários II-V) foram baseadas na biomassa média (simulações de biomassa média) e uma redução de biomassa de 50% neste valor (simulações de biomassa mínima) para representar a média e o limite inferior de biomassa observada dentro do complexo de Izembek durante o período de estudo decadal. As simulações foram realizadas para duas condições alternativas de gelo marinho no inverno, simulações sem gelo e 50% de cobertura Izembek ocorrendo no final do inverno (denominadas simulações de gelo 50% tardias daqui em diante).

Cenário II: mudanças na distribuição do eelgrass

Para avaliar a importância de outros locais além da Lagoa Izembek, simulações foram realizadas nas quais a biomassa da erva-doce foi definida como zero em áreas fora da Lagoa Izembek: Hook Bay, St. Catherine Cove, Middle Lagoon, Big Lagoon, Little John Lagoon e Kinzarof Lagoon . Embora tenhamos excluído esses locais, definindo a biomassa de eelgrass para zero, essas simulações representam um cenário em que essas áreas podem se tornar indisponíveis devido a uma combinação de fatores (por exemplo, perda de habitat, aumento da perturbação, redução na biomassa de eelgrass). Todas as combinações de biomassa média, biomassa mínima, sem gelo e simulações de gelo 50% tardio foram executadas.

Cenário III: mudanças no tamanho da população de ganso

Avaliamos o efeito dos aumentos potenciais no tamanho da população de ganso, alterando o tamanho das populações em incrementos de 20% dos tamanhos da população atual - de 120% a 200% das populações atuais. Três conjuntos de simulações foram executados em que (1) os tamanhos das populações de ambas as espécies de ganso foram alterados em todas as estações (ou seja, outono, inverno e primavera brant e outono cacarejando ganso) (2) o tamanho da população de brant no inverno foi alterado sozinho ( isto é, o número que hibernou em vez de migrar) ou (3) o tamanho da população de ganso cacarejante no outono foi alterado sozinho. Todas as combinações das simulações de biomassa média, biomassa mínima, sem gelo e 50% tardio de gelo foram executadas.

Cenário IV: mudanças na cobertura e tempo do gelo

As mudanças nas condições da cobertura de gelo foram simuladas variando tanto a extensão geral (nenhuma, 25%, 50% e 100% dentro da Lagoa Izembek) e o tempo (início, meio, final durante o inverno e durante todo o inverno Tabela 1a) da cobertura de gelo. O modelo assumiu que os custos de energia termorregulatória dos gansos eram maiores nas simulações com maior cobertura de gelo. Não simulamos os efeitos da cobertura de gelo na primavera, porque essa condição é rara desde a década de 1980 (Petrich et al. 2014). As simulações de biomassa média e de biomassa mínima foram executadas.

Cenário V: mudanças na perturbação

O efeito das mudanças na perturbação foi previsto variando a taxa de perturbação de zero a cinco vezes a taxa de perturbação atual. Para simplificar, assumimos que a distribuição e o tempo das perturbações permaneceram inalterados. As simulações variaram de distúrbios humanos e naturais ou apenas de distúrbios humanos variados. Todas as combinações de biomassa média, biomassa mínima, sem gelo e simulações de gelo 50% tardio foram executadas.


Aves: cisne coscoroba

23 quarta-feira Set 2015

(publicado originalmente no site de escrita Helium, agora desaparecido)

O cisne coscoroba, ou coscoroba coscoroba, é uma das sete espécies de cisne do mundo e tem a distinção de ser o menor em tamanho. Entre as aves aquáticas, ainda é bastante grande, pesando cerca de quatro quilos e medindo de três a quatro pés de comprimento, com uma envergadura de cerca de cinco pés. Ele é encontrado naturalmente apenas na América do Sul, onde os povos indígenas o nomearam após seu chamado, que soa algo como cos-co-ro-oa.

Este cisne é um branco impressionante (Google cisne coscoroba e veja muitas imagens deste belo pássaro). Suas seis penas primárias ou de vôo são pretas e podem ser vistas melhor quando ele está nadando ou voando. As asas são mais largas e mais curtas do que os outros cisnes. Seu bico é vermelho e achatado. Ao contrário de outros cisnes, o rosto deste cisne está coberto de penas. Suas pernas e pés são rosa a vermelho. Ele tem um pescoço mais curto do que os outros cisnes, mas mais longo do que o dos gansos. Na verdade, o cisne coscoroba se parece mais com um ganso do que com um cisne na cabeça. Machos e fêmeas parecem praticamente iguais, exceto que o macho é ligeiramente maior.

O cisne coscoroba é nativo da parte sul da América do Sul. No verão, ou época de reprodução, é encontrada no sul do Chile, ao sul de Concepcion, e no sul da Argentina, até cerca do sul da Província de Córdoba e Buenos Aires, na costa. Eles estão presentes até a Terra do Fogo, alguns indo para as ilhas ao sul do Canal de Beagle. Alguns foram relatados nas Ilhas Malvinas, bem como nas Ilhas Geórgia do Sul e Sandwich do Sul a leste. Eles voam para o norte no inverno, até Santiago no Chile, através da parte norte da província de Córdoba, Uruguai, sul do Paraguai e sul do Brasil até próximo a Curitiba. Ao voar, eles devem continuar batendo suas asas, pois não podem voar ou planar. Eles preferem elevações baixas, mas foram encontrados até cerca de 3.000 pés ou mais. Em algumas áreas do norte, pequenos grupos da espécie não migram.

Gosta de lagos de água doce e grandes lagoas, embora seja freqüentemente visto em água salobra, e tem sido relatado em praias do Brasil. A ave prefere águas não muito profundas e sem corrente. Favorece locais com grama alta ou arbustos para proteção, como pântanos e pântanos. O cisne coscoroba é uma ave sociável, tanto com sua própria espécie quanto com outras aves aquáticas. Muitas vezes pode ser encontrado em grupos de até 100 ou mais, embora possa crescer para 200 durante a muda. Ele voará com flamingos, e pequenos números são ocasionalmente vistos com cisnes de pescoço preto.

Um par vai ficar junto por toda a vida, o que é típico das espécies de cisne. Eles se reproduzem durante a primavera e o verão do sul. Os pares tendem a nidificar sozinhos ou em uma colônia espalhada por uma grande área. Eles defenderão seu território vigorosamente. A maioria dos pares terá uma embreagem por ano, mas alguns têm duas se a primeira for muito precoce. Os ninhos são feitos na grama alta perto da água e podem ser bem grandes. Eles são construídos com grama e outra vegetação, e são forrados com penas e penugem.

O tamanho da ninhada varia de quatro a nove ovos e o período de incubação é de cerca de 35 dias. A fêmea faz a incubação, enquanto o macho estará por perto, pronto para defender seu território. Uma fêmea sai do ninho duas vezes ao dia para encontrar comida, primeiro tendo certeza de que os ovos estão cobertos. O jovem cisne coscoroba é mais branco do que os pais, com manchas marrons e cinza principalmente no dorso. Pesa cerca de 120 gramas quando tem um dia. O macho adulto em particular irá proteger agressivamente os filhotes contra predadores. Os jovens voam quando têm três a quatro meses. Após a nidificação, os cisnes se movem para uma área de lago e mudam, geralmente durante o outono. Eles vivem até cerca de 20 anos de idade. Em cativeiro, vivem em média apenas sete anos.

O cisne coscoroba comerá matéria vegetal, como gramíneas, plantas aquáticas e sementes de plantas terrestres, mas também pequenos peixes, ostras, mexilhões, insetos aquáticos e pequenos animais. Para se alimentar, ele balança a cabeça e o pescoço, e às vezes a maior parte do corpo, sob a água.

A população estimada é de 10.000 a 25.000 cisnes, com algumas estimativas chegando a 100.000. A perda de habitat é uma ameaça para o cisne coscoroba. No entanto, não se acredita que seus números tenham diminuído mais de 30% em 10 anos. Por esse motivo, a União Internacional para a Conservação da Natureza (IUCN) atribuiu-lhe o status de “menos preocupação” em sua Lista Vermelha de Espécies Ameaçadas de 2004 e desde então permaneceu nesta categoria (até 2012).


ICYMI: Darwin, Schoenberg e Sibley: um novo alvorecer para o estudo da natureza?

O ABA Blog já existe há quase 8 anos, e há muito conteúdo bom nos arquivos que merece uma audiência agora que pode não ter sido recebido há muito tempo. Então, semirregularmente, traremos algumas dessas coisas de volta. Aqui está uma postagem do provocador de nossa equipe, Ted Floyd, que certamente se encaixa.

P ete Dunne, em sua maravilhosamente didática Companheiro de guia de campo essencial, classifica os nuthatches de cabeça marrom e pigmeu como os "nuthatches de pacote". Eu gosto disso! Para começar, gosto de como "pack nuthatch" transmite - digamos assim? -essencial informações sobre o comportamento de aglomeração desses duendes peripatéticos dos pinheiros. Também gosto de como "pack nuthatch" sugere algo sobre a evolução do nuthatch. Gosto de como o nome implica que os nuthatches de cabeça marrom e pigmeu são os parentes mais próximos um do outro. Eles são os únicos "nuthatches de pacote". Outros nuthatches, na formulação de Dunne, recebem outros apelidos.

É plausível, espero que você concorde comigo, que os nuthatches de cabeça marrom e pigmeu são o que os ornitólogos chamam de "espécie-irmã". Isso significa que eles evoluíram de um ancestral compartilhado ou "comum" - um não compartilhada por qualquer outra espécie de ave existente. Se os ornitólogos estivessem por aí para classificar esse ancestral comum, eles teriam dado um nome a ele. Talvez eles tivessem chamado aquele pássaro - por que não? - de Pica-pau-cinzento da matilha com P maiúsculo.

Hoje, é claro, os nuthatches de cabeça marrom e pigmeu são classificados como duas espécies distintas. Muitos milhares de anos atrás, no cenário descrito no parágrafo anterior, eles - ou, mais propriamente, seus ancestrais - eram uma única espécie.O processo de passar de uma espécie para duas espécies foi gradual. Não é como se o Pack Nuthatch repentinamente se dividisse em Nuthatch Brown -head e Pygmy nuthatch, digamos, 9:00 am G.M.T. na terça-feira, 23 de outubro de 4004 a.C. Em vez disso, houve algum período - durando talvez centenas ou milhares de anos - durante o qual os nuthatches de embalagem (devidamente hifenizados, em caixa baixa) não eram uma espécie nem duas espécies. (Esquerda: Pygmy Nuthatch de © Bill Schmoker.)

Acho que a maioria de nós não teve nenhum problema com o anterior. Entendemos que a “especiação” - o processo pelo qual as espécies passam a existir - geralmente requer muito tempo e tende a ser gradual. Entendemos que você não simplesmente muda um botão em algum ponto do tempo geológico e declara que a espécie UMA foi instantaneamente transformado em espécie A & # 8217 e A & # 8221.

Ou não? Nós realmente aceitamos que é assim que a evolução funciona?

Considere agora o exemplo das populações oriental e ocidental do gavião de ombros vermelhos. É certamente plausível que essas duas populações tenham surgido de um ancestral comum, alguns gaviões-vermelhos indiferenciados ("monotípicos"). Mas suas populações reprodutoras estão completamente isoladas no momento e com o isolamento contínuo de suas populações reprodutoras, eles podem muito bem evoluir para duas espécies distintas. Olhando para nossa bola de cristal, diremos que, daqui a milhares de anos, essas duas espécies separadas terão sido batizadas de Abutre do Pântano e Abutre da Califórnia, respectivamente. (À direita: Falcão-dos-ombros-vermelhos da Califórnia por © Bill Schmoker.)

Está tudo muito bem. Uma única espécie, o gavião de ombros vermelhos, há milhares de anos. E duas espécies, os urubus do pântano e da Califórnia, em algum ponto milhares de anos no futuro.

Mas e quanto agora mesmo, na segunda década do século 21? Esses pássaros ainda são uma espécie? Ou já se tornaram duas espécies?

Ou não são uma espécie nem duas espécies?

Pense no "pack nuthatches" de Pete Dunne. Em algum ponto de seu passado evolutivo, todos concordamos, esses nuthatches não eram nem uma espécie nem duas. Em vez disso, eles estavam em trânsito, se você quiser, de uma espécie para duas espécies. Eles estavam em processo de especiação.

A especiação é um processo contínuo. Aconteceu eras atrás, e ainda está acontecendo hoje.

E isso me leva ao que considero uma das grandes ironias do pensamento moderno. Muitos de nós rimos dos criacionistas por imaginar que todas as espécies surgiram, perfeitamente formadas, em um instante, em algum ponto do passado não tão distante. E, no entanto, muitos de nós - nós não criacionistas - fazemos exatamente a mesma coisa em nossa visão das “espécies” no tempo presente. Exigimos que uma população de organismos seja isto espécie, ou naquela espécie, ou Estes dois espécie, ou aqueles dois espécies, ou três espécies, ou quatro espécies & # 8230 Como os criacionistas, nós acalentamos a ideia do fixidez das espécies. Os criacionistas dizem que as espécies foram fixadas no momento da Criação. Dizemos que eles estão consertados agora.

Dizemos que o gavião de ombros vermelhos é qualquer uma marca em nossas listas de verificação ou dois carrapatos em nossas listas de verificação. Por outro lado, rejeitamos que o gavião de ombros vermelhos pudesse ser Ambas um carrapato e dois carrapatos ao mesmo tempo. E, no entanto, toda análise confiável da "ideia perigosa de Darwin" exige essa mesma interpretação.

T por volta do início de Na origem das espécies, Charles Darwin lança um ataque à proposição de que é significativo dizer que uma população de organismos é ou não é tal e tal espécie. No Capítulo 2 ("Variação sob a natureza") de Origem, Darwin escreve:

“Deve-se admitir que muitas formas, consideradas por juízes altamente competentes como variedades, têm o caráter de espécie tão perfeitamente que são classificadas por outros juízes altamente competentes como espécies boas e verdadeiras. Mas discutir se eles são corretamente chamados de espécies ou variedades, antes que qualquer definição desses termos seja geralmente aceita, é em vão bater o ar ”.

Em seguida, um tiro certeiro no arco do pensamento antigo sobre as espécies:

“Certamente nenhuma linha clara de demarcação foi traçada ainda entre espécies e subespécies - isto é, as formas que, na opinião de alguns naturalistas, chegam muito perto, mas não chegam exatamente ao nível de espécie ou, novamente, entre subespécies e variedades bem marcadas, ou entre variedades menores e diferenças individuais. Essas diferenças se misturam em uma série insensível e uma série impressiona a mente com a ideia de uma passagem real. ”

E alguns parágrafos abaixo:

“A partir dessas observações, será visto que vejo o termo espécie, como aquele dado arbitrariamente por uma questão de conveniência a um conjunto de indivíduos muito semelhantes entre si, e que não difere essencialmente do termo variedade, que é dado para formas menos distintas e mais flutuantes. ”

Deste ponto em diante em Origem, Darwin inicia a tarefa de desmantelar a velha ideia da fixidez das espécies. Capítulo após capítulo, Darwin apresenta exemplo após exemplo da fluidez da evolução por meio da seleção natural. A prosa vitoriana de Darwin pode ser um pouco trabalhosa para o leitor moderno, cada vez mais acostumado a transmitir cada ideia por meio do "tweet" de 140 caracteres. Mas os capítulos subsequentes valem o trabalho árduo: Darwin reúne evidências massivas em apoio à visão de que a evolução vem acontecendo há muito longos períodos de tempo e, além disso, que evolução ainda está acontecendo.

E então chegamos ao capítulo final de Na origem das espécies. Capítulo 14 ("Recapitulação e Conclusão") é um tour de force, um dos maiores tratados científicos de todos os tempos. Darwin parece dar tudo de si no Capítulo 14. E no Capítulo 14, Darwin desencadeia seu ataque final e devastador à ideia de que as populações de organismos devem ser atribuídas a isto espécie ou naquela espécies.

“Ninguém pode fazer qualquer distinção clara entre diferenças individuais e pequenas variedades”, escreve ele, “ou entre variedades e subespécies mais claramente marcadas, e espécies”.

“Na visão de que as espécies são apenas variedades fortemente marcadas e permanentes, e que cada espécie existiu primeiro como uma variedade, podemos ver por que nenhuma linha de demarcação pode ser traçada entre as espécies, comumente consideradas como tendo sido produzidas por atos especiais da criação e variedades que são reconhecidas como produzidas por leis secundárias. ”

Então ele realmente empurra:

“Quando as visões apresentadas neste volume sobre a origem das espécies, ou quando visões análogas são geralmente admitidas, podemos vagamente prever que haverá uma revolução considerável na história natural. Os sistematistas serão capazes de prosseguir com seus trabalhos como atualmente, mas eles não serão incessantemente assombrados pela dúvida sombria se esta ou aquela forma é em essência uma espécie. ”

Para muitas pessoas, Darwin deixa claro: “Isso pode não ser uma perspectiva animadora”.

É verdade: “Mas pelo menos seremos libertados da vã busca pela essência não descoberta e não descoberta do termo espécie”, conclui Darwin.

Tudo isso me leva agora à questão do compositor austríaco Arnold Schoenberg.

eu Se você pudesse ficar comigo nesta próxima seção, eu ficaria muito grato. Aceito que possa parecer estranho estar arrastando um compositor que nasceu há mais de 100 anos. Mas estou indo a algum lugar com isso, honesto. E, em breve, estarei falando sobre O Guia Sibley. Estaremos de volta a um terreno familiar em breve.

Arnold Schoenberg é talvez o compositor de “música clássica” mais famoso de todos os tempos. Sua escandalosa "conquista" foi descartar o que geralmente passou a ser considerado como Tonalidade ocidental—Uma forma de fazer música que caracteriza as obras de todos, de Franz Schubert e Felix Mendelssohn a Paul McCartney e Michael Jackson.

Se você olhar uma partitura - seja "Let It Be" ou "Der Erlkönig" - a primeira coisa que verá é uma indicação de assinatura chave. Esta armadura de clave é um sistema para ordenar as relações entre as várias notas dentro de uma obra musical particular. Na tonalidade ocidental convencional, ou "clássica", uma peça musical tem estar em uma determinada chave. "Let It Be" de McCartney está na tonalidade de Dó maior, por exemplo, e "Der Erlkönig" de Schubert está na tonalidade de Mi menor. Não faria sentido, de acordo com a tonalidade ocidental, dizer que uma peça estava simultaneamente em dó maior e Mi menor. Ainda mais estranho seria dizer que uma peça não estava em nenhuma tonalidade.

Entra Arnold Schoenberg. Como muitos compositores de sua geração, ele ultrapassou os limites da tonalidade convencional. Ao fazer isso, Schoenberg e seus contemporâneos estavam prestando atenção ao impulso artístico atemporal de ultrapassar os limites da forma e do estilo. Wolfgang Amadeus Mozart, o grande modelo da música clássica, deliciava-se com a expressão de tais impulsos. Seu Quarteto “Dissonance” começa de forma a obscurecer a armadura de clave da obra, mas depois de uma pequena provocação, a obra sai galopando na mais convencional das claves, Dó maior.

Schoenberg, no entanto, deu um passo adiante. UMA grande passo a frente. Quando se trata de expandir os limites da tonalidade ocidental, Arnold Schoenberg era o Neil Armstrong dos compositores. No último movimento do segundo quarteto de cordas, composto em 1908, Schoenberg deu o salto gigante da composição musical sem nenhuma armadura de clave.

Seria um eufemismo dizer que Schoenberg atonal a música era controversa. Na verdade, a música de Schoenberg era - e ainda é - amplamente odiada. Porque? Por que é que?

Bem, uma razão - e é uma grande razão - tem a ver com gosto pessoal. Para ser franco, muitas pessoas simplesmente não gostam do som da música atonal de Schoenberg. Isso é bom. Algumas pessoas não gostam do som de Mozart. Algumas pessoas não gostam do som de McCartney. Algumas pessoas não gostam do som de John Coltrane. Algumas pessoas não gostam do som de Ravi Shankar. Está tudo muito bem. É preferência pessoal - nem mais, nem menos - e eu não vou por aí.

Mas há outra razão, e esta vai nos trazer de volta à questão de "pack nuthatches" e Red-Shouldered Hawks. A outra razão é que a música de Schoenberg - mesmo para muitas pessoas que nunca a ouviram! - representa algo sinistro. A objeção a Schoenberg é mais ideológica do que estética. Nessa visão, a música de Schoenberg é destrutiva e degenerada. De acordo com essa visão, Schoenberg pegou algo maravilhoso - a grande tradição "clássica" de Mozart, Schubert e outros - e a degradou. A maneira antiga era ordenada e bonita, a nova era caótica e feia.

eu na minha opinião, O Guia Sibley é o maior guia de campo de todos os tempos.

Acho que muitas pessoas concordariam com essa minha avaliação. De vez em quando, porém, ouço uma reclamação particular sobre O Guia Sibley. Como observam os críticos, O Guia Sibley, em seu tratamento muito extenso da variação geográfica nas aves, abandona a prática milenar de atribuir “trinômios” a populações regionalmente distintas. Outros guias referem-se ao occidentalis e Wymani subespécie da gaivota ocidental, mas David Sibley simplesmente as chama de "norte" e "sul". Os papa-moscas do salgueiro recebem um monte de nomes (adastus, Brewsteri, Campestris, extimus, traillii& # 8230) em outros guias, mas eles são simplesmente "ocidentais" e "orientais" em O Guia Sibley. E no relato de Sibley sobre o Junco dos Olhos Negros, embora mostre trinta e um indivíduos espalhados por três grandes páginas, não há nenhuma menção a um trinômio.

Vou direto ao ponto e dizer que, ao contrário de muitos de meus amigos observadores de pássaros, aplaudo fortemente a decisão de Sibley de abrir mão do uso de trinômios.

Mas estou me adiantando.

Primeiras coisas primeiro. Porque? Por que Sibley fez isso? Por que os nomes trinomiais estão ausentes de O Guia Sibley?

Bem, um ótimo começo seria ler as próprias palavras de Sibley. Confira seu ensaio, "Em defesa da listagem e subespécies, mas não listando subespécies", que apareceu na edição de fevereiro de 2004 da Birding.

Enquanto isso, aqui estão três pensamentos meus:

1. Sou a favor da decisão de Sibley porque promove o conhecimento e a compreensão sobre o que realmente vemos na natureza. Eu acho que é realista para observadores experientes distinguir entre agrupamentos generalizados e um tanto difusos de "ocidentais" vs. "orientais" os papa-moscas do salgueiro. Pode-se dizer que muitos - embora certamente não todos - desses pássaros possuem um conjunto de características que correspondem a um ou outro agrupamento regional.

2. Por outro lado, quando começamos a entrar em Campestris Willow Flycatchers vs. traillii Willow Flycatchers, estamos cortejando um desastre. Bem, isso é um pouco forte. Mas acho que podemos certamente dizer que estamos flertando com a fantasia. De acordo com a parte 1 do magistério de Peter Pyle Guia de Identificação, quaisquer diferenças entre Campestris e traillii pode, de fato, ser fantasia. Eles podem ser simplesmente dois nomes diferentes (“sinônimos”) para a mesma população. (À direita: Willow Flycatcher por © Bill Schmoker.)

3. Então, por que todas as reclamações sobre nenhum trinômio em O Guia Sibley? Eu acho que é porque O Guia Sibley é análogo, em certo sentido, ao segundo quarteto de cordas de Arnold Schoenberg. Assim como muitas pessoas diriam que uma obra de música tem para ter uma assinatura chave, muitas pessoas acreditam que uma população de pássaros tem ser atribuível a um certo táxon.

Eu preciso ser muito claro sobre algo. eu sou não dizendo que os observadores de pássaros desejam que cada ave seja atribuída a um ou outro táxon. Todos nós sabemos sobre as gaivotas de Thayer. Sabemos que nem todo candidato individual, Thayer's Gull, pode ser definitivamente chamado por esse nome. Isso é não do que estou falando. Em vez disso, estou falando sobre toda a população. Eu acredito que muitos observadores de pássaros acreditam que a Gaivota de Thayer deveria ser qualquer sua própria espécie ou “Apenas” uma subespécie. Mas isso está perdendo o ponto, eu acredito. O debate fundamental, a meu ver, é não se a gaivota de Thayer é ou não uma espécie completa. Em vez disso, o debate é sobre algo mais profundo do que isso.

Pense no exemplo do Falcão de ombros vermelhos. A questão é não se a população da Califórnia é uma espécie completa (eu a chamei de “Buzzard da Califórnia”) ou “apenas” uma subespécie do gavião de ombros vermelhos. Não, a questão fundamental, a meu ver, é se o gavião de ombros vermelhos tem ser estar qualquer uma espécie ou duas espécies (ou mais). Eu não acho isso tem para ser um ou dois. Eu acredito que essa minha visão vem de uma leitura fiel de Na origem das espécies. E acredito que essa visão é uma consequência empolgante - e, em última análise, profundamente libertadora - do que considero ser uma das características mais úteis e revolucionárias da O Guia Sibley.

C chegamos agora, embora provisoriamente e de forma tênue, a um novo tipo de taxonomia aviária - uma sem nomes. Para ter certeza, é apenas o começo. O Guia Sibley, é claro, faz uso de nomes científicos, ou “binômios latinos”, para aqueles taxa que desfrutam de classificação de espécie completa. Mesmo que Sibley descarte Elegans como o trinômio para a população da Califórnia do Falcão de ombros vermelhos, ele com certeza emprega Buteo lineatus para a espécie como um todo.

E, verdade seja dita, o segundo quarteto de cordas de Schoenberg foi apenas um começo. Apenas o último movimento da obra é atonal. E mesmo esse último movimento termina com um acorde tonal de tom maior. Mas ele deixou o gênio sair da garrafa. Não havia como parar o que estava por vir - a completa atonalidade do que veio a ser conhecido como serialismo dodecafônico.

Agora espere um segundo! Como observei anteriormente, muitas pessoas ódio A música e o legado de Schoenberg. E, em certo sentido, Schoenberg deve ser considerado um fracasso. Embora certamente haja exceções, a maioria dos compositores "clássicos" têm não seguiu os passos de Schoenberg. A maior parte da música "clássica" do século 20 é não atonal. Enquanto isso, existem todos os outros músicos que geralmente trabalham fora do meio “clássico”: Paul McCartney e Michael Jackson, John Coltrane e Ravi Shankar, e muitos outros. Sua produção musical diversificada prosseguiu em grande parte sem referência ao legado de Schoenberg.

Não temos o mesmo direito de ignorar, talvez até mesmo de ódio, esta nova taxonomia aviária - esta abominação sem nomes?

As preferências musicais são, em primeira e última análise, todas relacionadas ao gosto pessoal. Tenho um amigo que afirma amar a música de Karlheinz Stockhausen. (Pesquise no Google.) Eu acho isso estranho da minha amiga, mas eu não diria que ela está errada (ou certa) por gostar de Stockhausen Gruppen.

É diferente, porém, com a ciência. Se alguém dissesse que o mundo é plano, eu diria que essa pessoa está errada. A mesma coisa com a profissão de que a Terra está no centro do nosso sistema solar. Isso não é mera preferência pessoal. Em vez disso, isso é uma questão de realidade. Suponho que existem aqueles que gostariam que o mundo fosse plano. E todos nós sabemos que muitas pessoas queriam que a Terra fosse o centro de nosso sistema solar. Eles se sentiram tão fortemente a respeito que executaram alguém - seu nome era Giordano Bruno - que discordou deles. Mas essa ação, por mais drástica que tenha sido, não teve qualquer influência - absolutamente nenhuma - sobre se a Terra está ou não no centro de nosso sistema solar.

O mesmo ocorre com a “crença” na evolução.

Não, eu não estou prestes a latir naquela árvore. Eu não vou tocar na evolução vs. Debate de criação.

Em vez disso, vou abordar as seguintes observações única e diretamente para aqueles que professam, aham, "acreditar" na evolução.

J apenas sobre a visão mais brilhante de Charles Darwin é indiscutivelmente seu ao menos apreciado insight.Darwin entendeu claramente que a evolução opera não ao nível de grupos ou populações, mas sim ao nível de Individual organismos. Sim, a evolução influencia as características que distinguem uma população de outra. Mas, novamente, a evolução opera no nível do indivíduo.

Demorou um século inteiro para que esse grande insight fosse firme e finalmente aceito pelo estabelecimento científico. E a ideia não seria transmitida ao público em geral até a publicação em 1976 do deslumbrante e incendiário manifesto de Richard Dawkins, O Gene Egoísta.

Porque? Por que houve tanta resistência ao insight de que a evolução opera não em grupos, mas sim em indivíduos, ou mesmo em seus genes individuais?

Darwin sugere uma resposta nesta provocação daquele capítulo 2 de Origem:

“Por isso, considero as diferenças individuais, embora de pequeno interesse para o sistemata, como de grande importância para nós, como sendo o primeiro passo em direção a variedades tão pequenas que dificilmente valem a pena registrar em obras de história natural.”

Darwin não está apenas indo contra aquelas pessoas que hoje conhecemos como criacionistas. Darwin também está enfrentando uma tradição científica fortemente arraigada de sistemática biológica.

Desde Adão, temos sido verdadeiros crentes - crentes, isto é, no conceito de espécie. Eu não estou falando sobre este particular conceito de espécie ou aquele particular conceito, mas sim na noção mais geral de que a própria espécie é de alguma forma real. A ideia da espécie ressoava perfeitamente com a visão de Platão sobre a ordem e a beleza do universo. E a ideia acabou sendo beatificada no cânone científico por aquele arquipatonista Carl von Linné - latinizado (é claro!) Para o mais familiar Lineu.

Não me entenda mal. Eu aceito totalmente que o conceito de espécie é uma forma útil de organizar informações sobre o mundo que nos rodeia. Mas isso não significa que esteja certo. Isso não significa que seja verdade. A este respeito, observo que é útil, com certeza, pensar em termos de nascer do sol, pôr do sol e o arco do dia - termos que reforçam constantemente a impressão de que o Sol gira em torno da Terra. Inquestionavelmente, pensamos, como Isaac Newton fez, em termos de espaço e tempo “absolutos”. No entanto, também sabemos, graças a Albert Einstein, que a distância entre dois objetos depende da posição e da velocidade de um observador.

O sistema solar geocêntrico de Aristóteles e o espaço e tempo absolutos de Newton estão, em certo sentido, vivos e bem. Vivemos nosso cotidiano de acordo com os preceitos aristotélicos e newtonianos. Ajustamos nossos relógios de acordo com os eventos que acontecem na Terra, não no sol. Operamos veículos motorizados, construímos pontes e enviamos foguetes ao espaço de acordo com os princípios da mecânica “clássica” ou pré-einsteiniana.

Mas estamos vivendo uma mentira, por assim dizer.

Sabemos que Aristóteles e Newton - por mais brilhantes que fossem e tão úteis quanto ainda são - sistemas erguidos que não são, em um sentido objetivo, verdadeiros.

Não deveríamos manter o conceito de espécie de Adão-Platão-Linnaeus no mesmo padrão?

T outro dia, meus filhos e eu fomos de trenó perto de nossa casa no condado de Boulder, Colorado. Estávamos nos divertindo muito, mas o Sol estava se escondendo no horizonte ocidental (conforme Aristóteles!), E era hora de voltar para casa. Enquanto caminhávamos de volta pela neve recém-caída, passamos por um grande bando de pássaros empoleirados ao longo da margem do Lago Waneka.

Naturalmente, nos perguntamos o que seriam.

Não muito tempo atrás, nós os teríamos desprezado como Gansos do Canadá.

Então veio a American Ornithologists ’Union, que em 2004" dividiu "o Canada Goose em duas espécies - uma chamada Cackling Goose, a outra mantendo o antigo nome de Canada Goose. Imediatamente, houve especulação, ainda em andamento - ainda totalmente desenfreada, eu diria - de que o complexo do "ganso de bochechas brancas" poderia consistir em outras espécies.

Não vamos nos preocupar com isso agora. Vamos voltar ao Lago Waneka.

Bem, havia grandes e pequenos. Havia médios. Alguns tinham pescoços longos, outros tinham pescoço curto. Alguns tinham seios cinza-escuro, outros quase brancos, e alguns tinham seios castanho-areia. Alguns tinham faixas brancas brilhantes no peito, mas a maioria não. Alguns tinham notas curtas e grossas, outros tinham notas longas e inclinadas. Muitos deles disseram hink, mas alguns deles disseram buzina.

Parecia algo saído do Dr. Seuss.

Nós vamos? O que estavam elas? Os realmente grandes eram talvez moffitti Gansos do Canadá. Os realmente pequenos provavelmente foram nomeados Hutchinsii Gansos cacarejantes. Os médios podem ter sido principalmente parvipes Gansos canadenses, mas quem sabe? - grandes gansos cacarejantes e pequenos gansos canadenses se sobrepõem em morfologia, plumagem e tudo mais. O que nos leva ao bicho-papão do Taverneri grupo intermediário de “gansos de bochechas brancas”, sem dúvida presente em pequenos números - e talvez presentes em números substanciais - no Colorado no inverno. Ninguém sabe. Ninguem sabe o que Taverneri é - ou o que eles são. Uma subespécie? Dois? Três? Eles são gansos do Canadá? Ou são gansos cacarejantes?

(Um aparte para meus amigos observadores de pássaros que estão no caminho para a evolução e identificação de "gansos de bochecha branca": ora, eu nem sequer toquei no problema da parafilia em relação ao ganso Barnacle da Europa e ao Nēnē do Havaí !)

Dr. Seuss teria amavam isto.

Nossa decisão lá no lago Waneka foi apreciar os gansos, um pássaro de cada vez. Ali, o grande com o peito castanho-arenoso estampado com uma faixa branca. Bem aqui, o médio com um bico atarracado, mas um pescoço relativamente longo. Lá fora, na água, o pequeno com o peito cinza escuro sem marcas. Outro médio, este de pescoço mais curto, mas de bico inegavelmente comprido. Aquele grupo ali, de pássaros de tamanhos variados, mas principalmente com faixas brancas no peito. Aqueles dois grandes juntos, os de seios claros. Oh. Eles estão ligando agora. Um deles é mais agudo do que o outro. E aí vem outro médio, este com um bico atarracado, mas um pescoço longo e fino. (Certo: Gansos por © Bill Schmoker.)

A experiência de estudar aqueles gansos, um pássaro de cada vez, foi emocionante. E foi, como sugeri antes, libertador. É estimulante e libertador envolver-se na vida na Terra como realmente é.

Eu aceito que as pessoas da minha geração continuarão a debater os conceitos e limites das espécies enquanto estivermos vivos. Mas me pergunto sobre meus filhos. E eles? Será que sua geração finalmente se livrará dos grilhões do pensamento platônico sobre o conceito de espécie? É estimulante e libertador pensar que talvez, apenas talvez, eles façam isso.


1. A citação de autoridade para a parte 10 continua a ser a seguinte:

Autoridade de início da parte da emenda final

Autoridade: 16 U.S.C. 668a-d, 703-712, 742a-j-l, 1361-1384, 1401-1407, 1531-1543, 3371-3378 18 U.S.C. 42 19 U.S.C. 1202.

Parte da alteração inicial da autoridade final

2. Emendar & sect & thinsp 10.13 revisando o parágrafo (c) para ler o seguinte:

(c) Que espécies são protegidas como aves migratórias? As espécies protegidas como aves migratórias são listadas em dois formatos para atender às diferentes necessidades do usuário: Alfabeticamente no parágrafo (c) (1) desta seção e taxonomicamente no parágrafo (c) (2) desta seção. A taxonomia e a nomenclatura geralmente seguem a 7ª edição da American Ornithologists 'Union's (AOU, agora reconhecida como American Ornithological Society (AOS)) Lista de verificação de aves norte-americanas (1998, conforme alterado até 2018). Para espécies não tratadas pelo AOS Lista de controle, nós geralmente seguimos Lista de verificação de Clements de pássaros do mundo (Clements et al. 2017).

(1) Lista alfabética. As espécies são listadas em ordem alfabética por nomes de grupos comuns (em inglês), com o nome científico de cada espécie após o nome comum.

ACCENTOR, Siberian, Prunella montanella

`AKEKE`E, Loxops caeruleirostris

`AKEPA, Havaí, Loxops coccineus

O`ahu, Loxops wolstenholmei

`AKIALOA, Kauai, Akialoa stejnegeri

Maui Nui, Akialoa lanaiensis

`AKIAPOLA`AU, Hemignathus wilsoni

`AKIKIKI, Oreomystis bairdi

`ALAUAHIO, Maui, Paroreomyza montana

O`ahu, Paroreomyza maculata

ALBATROSS, sobrancelha negra, Thalassarche melanophris

De pés pretos, Phoebastria nigripes

Chatham, Thalassarche eremita

Laysan, Phoebastria immutabilis

Coberto de luz, Phoebetria palpebrata

Salvin's, Thalassarche salvini

De cauda curta, Phoebastria albatrus

Vagando, Diomedea exulans

Branco-tampado, Thalassarche cauta

De nariz amarelo, Thalassarche chlororhynchos

`AMAKIHI, Havaí, Chlorodrepanis virens

Kauai, Chlorodrepanis stejnegeri

O`ahu, Chlorodrepanis flava

ANI, Groove-billed, Crotophaga sulcirostris

Smooth-billed, Crotophaga ani

`APAPANE, Himatione sanguinea

AUKLET, Cassin's, Ptychoramphus Aleuticus

Com crista, Aethia cristatella

Periquito, Aethia psittacula

Rinoceronte, Cerorhinca monocerata

AVOCET, americano, Recurvirostra americana

BANANAQUIT, Coereba flaveola

BEAN-GOOSE, Taiga, Anser Fabalis

Tundra, Anser serrirostris

BEARDLESS-TYRANNULET, Northern, Camptostoma imberbe

BECARD, colar cinza, Paquyramphus major

Rose-throated, Pachyramphus aglaiae

BITTERN, americano, Botaurus lentiginosus

Preto, Ixobrychus flavicollis

Schrenck's, Ixobrychus eurhythmus

Amarelo, Ixobrychus sinensis

BLACKBIRD, Brewer's, Euphagus cyanocephalus

De asas vermelhas, Agelaius phoeniceus

Ombros Tawny, Agelaius humeralis

Tricolor, Agelaius tricolor

Amarela, Xanthocephalus xanthocephalus

De ombros amarelos, Agelaius xanthomus

BLUEBIRD, oriental, Sialia sialis

Montanha, Sialia currucoides

BLUETAIL, Red-flanqueado, Tarsiger cyanurus

BLUETHROAT, Cyanecula svecica Iniciar página impressa 61296

BOBOLINK, Dolichonyx oryzivorus

BOOBOOK, Northern, Ninox Japonica

BOOBY, Abbott's, Papasula abbotti

BRAMBLING, Fringilla montifringilla

BUFFLEHEAD, Bucephala albeola

BULLFINCH, eurasiano, Pyrrhula Pyrrhula

Porto-riquenho, Melopyrrha portoricensis

BUNTING, azul, Cyanocompsa parellina

Cotovia, Calamospiza melanocorys

McKay's, Plectrophenax hyperboreus

Pinho, Emberiza leucocephalos

Reed, Emberiza schoeniclus

Neve, Plectrophenax nivalis

Variado, Passerina versicolor

De peito amarelo, Emberiza aureola

De sobrancelha amarela, Emberiza crisófilas

De garganta amarela, Emberiza elegans

BUSHTIT, Psaltriparus minimus

BUZZARD, rosto acinzentado, Butastur indicus

CANVASBACK, Aythya valisineria

CARACARA, Crested, Caracara Cheriway

CARDINAL, Norte, Cardinalis cardinalis

CARIB, Green-throated, Eulampis holosericeus

De garganta roxa, Eulampis jugularis

CATBIRD, preto, Melanoptila glabrirostris

Cinza, Dumetella carolinensis

CHAFFINCH, comum, Fringilla coelebs

CHAT, de peito amarelo, Icteria virens

CHICKADEE, com capa preta, Poecile atricapillus

Boreal, Poecile Hudsonicus

Carolina, Poecile carolinensis

Castanha-apoiada, Poecile Rufescens

Grisalho, Poecile cinctus

CHIFFCHAFF, comum, Phylloscopus collybita

CHUCK-WILL'S-WIDOW, Antrostomus carolinensis

CONDOR, Califórnia, Gymnogyps californianus

COOT, americano, Fulica americana

CORMORANT, Brandt's, Phalacrocorax penicillatus

Double-crested, Phalacrocorax auritus

Excelente, Phalacrocorax carbo

Little Pied, Phalacrocorax melanoleucos

Neotrópico, Phalacrocorax brasilianus

Pelágico, Phalacrocorax pelagicus

Com o rosto vermelho, Phalacrocorax urile

COWBIRD, bronzeado, Molothrus aeneus

De cabelos castanhos, Molothrus ater

Brilhante, Molothrus bonariensis

Faturado com tinta, Neocrex erythrops

Impecável, Porzana tabuensis

De peito amarelo, Hapalocrex flaviventer

Sandhill, Antigone canadensis

CREEPER, marrom, Certhia americana

CROSSBILL, Cassia, Loxia sinesciuris

De asas brancas, Loxia leucoptera

CROW, americano, Corvus brachyrhynchos

Havaiano, Corvus hawaiiensis

Noroeste, Corvus caurinus

Tamaulipas, Corvus imparatus

De pescoço branco, Corvus leucognaphalus

CUCKOO, Black-Billed, Coccyzus erythropthalmus

Amarelo-faturado, Coccyzus americanus

CURLEW, coxa eriçada, Numenius tahitiensis

Eurasiático, Numenius arquata

Do Extremo Oriente, Numenius madagascariensis

Longa cobrança, Numenius americanus

DICKCISSEL, Spiza americana

DIPPER, americano, Cinclus mexicanus

DOTTEREL, eurasiano, Charadrius morinellus

Luto, Zenaida macroura

De ponta branca, Leptotila verreauxi

De asas brancas, Zenaida asiatica

DOWITCHER, Long-Billed, Limnodromus scolopaceus

Faturamento curto, Limnodromus griseus

PATO, negro americano, Anas rubripes

Eastern Spot-Billed, Anas zonorhyncha

Arlequim, Histrionicus histrionicus

De cauda longa, Clangula hyemalis

Pacific Black, Anas superciliosa

Pescoço de anel, Aythya collaris

EAGLE, Careca, Haliaeetus leucocephalus

De cauda branca, Haliaeetus albicilla

EGRET, gado, Bubulcus ibis

Chinês, Egretta Eulophotes

Intermediário, Ardea intermedia

Avermelhado, Egretta rufescens

EIDER, comum, Somateria mollissima

Rei, Somateria spectabilis

De óculos, Somateria fischeri

Steller, Polysticta stelleri

ELAENIA, Caribe, Elaenia martinica

Esverdeado, Myiopagis viridicata

De crista branca, Elaenia albiceps

EMERALD, porto-riquenho, Clorostilbon maugaeus

EUPHONIA, Antillean, Euphonia musica

FALCON, Amur, Falco amurensis

Peregrino, Falco peregrinus

De pés vermelhos, Falco vespertinus

FINCH, Cassin's, Haemorhous cassinii

Casa, Haemorhous mexicanus

Roxa, Haemorhous purpureus

FLAMINGO, americano, Phoenicopterus ruber

FLICKER, Dourado, Colaptes chrysoides

Norte, Colaptes auratus

FLYCATCHER, Acadian, Empidonax virescens

De garganta cinza, Myiarchus cinerascens

Marrom asiático, Muscicapa dauurica

Brown-crested, Myiarchus tyrannulus

Buff-breasted, Empidonax fulvifrons

Cordilheira, Empidonax occidentalis

Slaty coroado, Empidonomus aurantioatrocristatus

Lado escuro, Muscicapa sibirica

Escuro, Empidonax oberholseri

Tampado escuro, Myiarchus tuberculifer

De cauda bifurcada, Tyrannus Savana

Riscado de cinza, Muscicapa griseisticta

Great Crested, Myiarchus crinitus

Hammond's, Empidonax hammondii

La Sagra's, Myiarchus Sagrae

Mugimaki, Ficedula Mugimaki

Narciso, Ficedula narcissina

Nutting's, Myiarchus nuttingi

Olive-sided, Contopus cooperi

Encosta do Pacífico, Empidonax difficilis

Pirata, Legatus leucophaius

Porto-riquenho, Myiarchus antillarum

Com cauda de tesoura, Tyrannus forficatus

Social, Myiozetetes similis

Identificado, Muscicapa striata

Com barriga de enxofre, Myiodynastes luteiventris

Tufado, Mitrephanes phaeocercus

Variegado, Empidonomus varius

Vermilion, Pyrocephalus rubinus

Salgueiro, Empidonax traillii

Barriga amarela, Empidonax flaviventris

FOREST-FALCON, Collared, Micrastur semitorquatus

FRIGATEBIRD, ótimo, Fregata menor

Magnífico, Fregata magnificens

POMBA DE FRUTA, coroa carmesim, Ptilinopus porphyraceus

Multicolorido, Ptilinopus perousii

Mariana, Ptilinopus roseicapilla

FULMAR, Norte, Fulmarus glacialis

GALLINULE, Azure, Porphyrio flavirostris

Roxa, Porphyrio martinicus

GANNET, Norte, Morus Bassanus

GARGANEY, Espátula querquédula

GNATCATCHER, capa preta, Polioptila nigriceps

De cauda negra, Polioptila melanura

Cinza azulado, Polioptila caerulea

Califórnia, Polioptila californica

GODWIT, com cauda de barra, Limosa lapponica

De cauda negra, Limosa limosa

Hudsonian, Limosa haemastica

Marmorizado, Limosa Fedoa Iniciar página impressa 61297

GOLDENEYE, Barrow's, Bucephala islandica

Comum, Bucephala clangula

GOLDEN-PLOVER, americano, Pluvialis dominica

Europeu, Pluvialis apricaria

GOLDFINCH, americano, Spinus tristis

Lawrence's, Spinus lawrencei

GOOSE, Barnacle, Branta leucopsis

Cacarejando, Branta hutchinsii

Maior de fronte branca, Anser Albifrons

Havaiano, Branta sandvicensis

Menor de fronte branca, Anser erythropus

De pés rosados, Anser brachyrhynchus

GOSHAWK, Norte, Accipiter gentilis

GRACKLE, cauda de barco, Quiscalus major

Comum, Quiscalus quiscula

Grande Antilha, Quiscalus niger

Cauda-grande, Quiscalus mexicanus

GRASSHOPPER-WARBLER, Middendorff's, Locustella ochotensis

GRASSQUIT, Face Negra, Tiaris bicolor

De rosto amarelo, Tiaris olivaceus

GREBE, Clark's, Aechmophorus clarkii

Orelhudo, Podiceps nigricollis

Ao menos, Tachybaptus dominicus

Pied-billed, Podilymbus podiceps

De pescoço vermelho, Podiceps grisegena

Ocidental, Aechmophorus occidentalis

GREENFINCH, oriental, Chloris sinica

GREENSHANK, comum, Tringa nebularia

Nordmann's, Tringa guttifer

GROSBEAK, cabeça preta, Pheucticus melanocephalus

De colarinho carmesim, Rhodothraupis Celaeno

Noite, Coccothraustes vespertinus

Rose-breasted, Pheucticus ludovicianus

Amarelo, Pheucticus chrysopeplus

GROUND-DOVE, comum, Columbina passerina

Ruddy, Columbina talpacoti

De garganta branca, Alopecoenas xanthonura

GUILLEMOT, preto, Cepphus grylle

GULL, Belcher, Larus belcheri

De cabeça negra, Chroicocephalus ridibundus

De cauda negra, Larus crassirostris

Bonaparte, Chroicocephalus philadelphia

Califórnia, Larus californicus

Franklin, Leucophaeus pipixcan

Glauco, Larus hyperboreus

Glaucous-wing, Larus glaucescens

Com capuz cinza, Chroicocephalus cirrocephalus

Grande Black-back, Larus marinus

Heermann's, Larus heermanni

Rindo, Leucophaeus atricilla

Menor de dorso negro, Larus fuscus

Pequeno, Hydrocoloeus minutus

Faturado, Larus delawarensis

Slaty-back, Larus schistisagus

Cauda de andorinha, Creagrus furcatus

Ocidental, Larus occidentalis

De pés amarelos, Larus livens

De pernas amarelas, Larus michahellis

GYRFALCON, Falco rusticolus

HARRIER, norte, Circo hudsonius

HAWFINCH, Coccothraustes coccothraustes

HAWK, de asa larga, Buteo platypterus

Preto Comum, Buteogallus anthracinus

Cooper's, Accipiter cooperii

Guindaste, Geranospiza caerulescens

Ferruginoso, Buteo regalis

Harris's, Parabuteo unicinctus

Havaiano, Buteo solitarius

De ombros vermelhos, Buteo lineatus

De cauda vermelha, Buteo jamaicensis

Roadside, Rupornis magnirostris

Pernas ásperas, Buteo lagopus

Sharp-shinned, Accipiter striatus

De cauda curta, Buteo brachyurus

Swainson's, Buteo swainsoni

De cauda branca, Geranoaetus albicaudatus

Com cauda de zona, Buteo albonotatus

HAWK-CUCKOO, Hodgson's, Hierococcyx nisicolor

Great Blue, Ardea herodias

Verde, Butorides virescens

Azulzinho, Egretta caerulea

Tricolor, Egretta tricolor

HOBBY, euro-asiático, Falco subbuteo

HONEYCREEPER, Laysan, Himatione fraithii

De pernas vermelhas, Cyanerpes cyaneus

HOOPOE, euro-asiático, Upupa Epops

CASA-MARTIN, Comum, Delichon urbicum

HUMMINGBIRD, Allen's, Selasphorus sasin

Ametista-garganta, Lampornis amethystinus

Antillean Crested, Orthorhyncus cristatus

Berylline, Amazilia beryllina

Queixo preto, Archilochus alexandri

De garganta azul, Lampornis clemenciae

Broadbilled, Cynanthus latirostris

De cauda larga, Selasphorus Platycercus

Barrigudo, Amazilia yucatanensis

Calliope, Selasphorus Calliope

Lúcifer, Lúcifer Calotórax

Ruby-throated, Archilochus colubris

Coroado de violeta, Amazilia violiceps

Orelhas brancas, Hylocharis leucotis

De Xantus, Hylocharis xantusii

IBIS, brilhante, Plegadis falcinellus

Com o rosto branco, Plegadis Chihi

IMPERIAL-PIGEON, Pacífico, Ducula pacifica

JACANA, Norte, Jacana Spinosa

JACKDAW, eurasian, Corvus monedula

JAEGER, cauda longa, Stercorarius longicaudus

Parasita, Stercorarius parasiticus

Pomarine, Stercorarius pomarinus

JAY, azul, Cyanocitta cristata

Canadá, Perisoreus canadensis

Mexicano, Aphelocoma wollweberi

Pinyon, Gymnorhinus cyanocephalus

Steller, Cyanocitta stelleri

JUNCO, olhos escuros, Junco hyemalis

Olhos amarelos, Junco phaeonotus

K & # 256K & # 256WAHIE, Paroreomyza flammea

K & # 256MA`O, Myadestes myadestinus

KESTREL, americano, Falco sparverius

Eurasiático, Falco tinnunculus

KILLDEER, Charadrius vociferus

KINGBIRD, Cassin's, Tyrannus vociferans

Oriental, Tyrannus tyrannus

Cinza, Tyrannus dominicensis

Loggerhead, Tyrannus caudifasciatus

Faturado, Tyrannus crassirostris

Tropical, Tyrannus melancholicus

Ocidental, Tyrannus verticalis

KINGFISHER, Amazon, Cloroceryle amazona

Verde, Chloroceryle americana

Guam, Todiramphus cinnamominus

Mariana, Todiramphus albicilla

Pacífico, Todiramphus sacer

Rodeado, Megaceryle torquata

KINGLET, coroa de ouro, Regulus satrapa

Rubi-coroado, Regulus calendula

KISKADEE, ótimo, Pitangus sulphuratus

KITE, preto, Milvus migrans

Dentes duplos, Harpagus bidentatus

Hook-Billed, Chondrohierax uncinatus

Mississippi, Ictinia mississippiensis

Caracol, Rostrhamus sociabilis

Cauda de andorinha, Elanoides forficatus

De cauda branca, Elanus leucurus

KITTIWAKE, perna preta, Rissa tridactyla

De pernas vermelhas, Rissa brevirostris

KNOT, ótimo, Calidris tenuirostris

KOEL, cauda longa, Urodynamis taitensis

LAPWING, Norte, Vanellus vanellus

LARK, com chifre, Eremophila alpestris

LIZARD-CUCKOO, porto-riquenho, Coccyzus vieilloti

LONGSPUR, coleira castanha, Calcarius ornatus

Lapônia, Calcarius lapponicus

McCown's, Rhynchophanes mccownii

LOON, Ártico, Gavia arctica

De garganta vermelha, Gavia stellata

Amarelo-faturado, Gavia adamsii

MAGPIE, Black-Billed, Pica hudsonia

Amarelo-faturado, Pica nuttalli

MALLARD, Anas platyrhynchos

MANGO, Antillean, Antracotórax dominicus

Verde, Antracotórax viridis

De peito verde, Antracotórax prevostii

MARSH-HARRIER, oriental, Circo spilonotus

MARTIN, peito castanho, Progne tapera

Caribe, Progne dominicensis

De peito cinza, Progne chalybea

MEADOWLARK, oriental, Sturnella magna

Ocidental, Sturnella neglecta Iniciar página impressa 61298

MERGANSER, comum, Mergus merganser

Encapuzado, Lophodytes cucullatus

De seios vermelhos, Mergus serrator

MILLERBIRD, Acrocephalus familiaris

MOCKINGBIRD, Bahama, Mimus gundlachii

Azul, Melanotis caerulescens

Norte, Poliglotos Mimus

MOORHEN, comum, Gallinula chloropus

MURRELET, antigo, Synthliboramphus antiquus

Craveri's, Synthliboramphus craveri

Guadalupe, Synthliboramphus hypoleucus

Kittlitz's, Brachyramphus brevirostris

Longa cobrança, Brachyramphus perdix

Marmorizado, Brachyramphus marmoratus

Scripps's, Synthliboramphus scrippsi

AGULHA, garganta branca, Hirundapus caudacutus

NIGHTHAWK, Antillean, Chordeiles gundlachii

Menor, Chordeiles acutipennis

GARÇA-NOITE, Coroa Negra, Nycticorax nycticorax

Japonês, Gorsachius goisagi

Malaio, Gorsachius melanolophus

Rufous, Nycticorax caledonicus

De coroa amarela, Nyctanassa violacea

NIGHTINGALE-THRUSH, Blackhead, Catharus mexicanus

Faturado de laranja, Catharus aurantiirostris

NIGHTJAR, coleira amarela, Antrostomus ridgwayi

Porto-riquenho, Antrostomus noctitherus

De cauda branca, Hydropsalis cayennensis

NODDY, preto, Anous minutus

NUKUPU`U, Kauai, Hemignathus hanapepe

NUTCRACKER, Clark's, Nucifraga columbiana

NUTHATCH, cabeça castanha, Sitta Pusilla

De seios vermelhos, Sitta canadensis

De peito branco, Sitta carolinensis

OLOMA`O, Myadestes lanaiensis

ORIOLE, Altamira, Icterus gularis

De Audubon, Icterus graduacauda

Baltimore, Icterus galbula

Black-vented, Icterus wagleri

Bullock's, Icterus bullockii

Encapuzado, Icterus cucullatus

Porto-riquenho, Icterus portoricensis

Streak-back, Icterus pustulatus

OVENBIRD, Seiurus aurocapilla

Cavando, Atena cunicularia

Flammulado, Psiloscops flammeolus

Great Grey, Strix nebulosa

Grande Chifre, Bubo virginianus

Northern Hawk, Sumia Ulula

Serra do norte, Aegolius acadicus

Identificado, Strix occidentalis

OYSTERCATCHER, americano, Haematopus palliatus

Preto, Haematopus bachmani

Eurasiático, Haematopus ostralegus

PALILA, Loxioides bailleui

PALM-SWIFT, Antillean, Tachornis phoenicobia

PARROTBILL, Maui, Xantofrias pseudonestadoras

PARULA, Norte, Setophaga americana

Tropical, Setophaga pitiayumi

PAURAQUE, comum, Nyctidromus albicollis

PELICANO, American White, Pelecanus erythrorhynchos

Marrom, Pelecanus occidentalis

PETREL, Bermuda, Pterodroma cahow

Preto-tampado, Pterodroma hasitata

De asas negras, Pterodroma nigripennis

Bonin, Pterodroma hipoleuca

Bulwer, Bulweria bulwerii

Gould's, Pterodroma leucoptera

De grande asa, Pterodroma macroptera

Havaiano, Pterodroma sandwichensis

Arauto, Pterodroma heraldica

Juan Fernandez, Pterodroma externa

Kermadec, Pterodroma neglecta

Manchado, Pterodroma inexpectata

Murphy, Pterodroma ultima

Mal de Parkinson, Procellaria parkinsoni

Providência, Pterodroma solandri

Stejneger, Pterodroma longirostris

Taiti, Pseudobulweria rostrata

Trindade, Pterodroma arminjoniana

De queixo branco, Procellaria aequinoctialis

De pescoço branco, Pterodroma cervicalis

PEWEE, cubano, Contopus caribaeus

Maior, Contopus pertinax

Hispaniolano, Contopus hispaniolensis

Menor Antilhano, Contopus latirostris

PHAINOPEPLA, Phainopepla nitens

PHALAROPE, vermelho, Phalaropus fulicarius

De pescoço vermelho, Phalaropus lobatus

Wilson's, Phalaropus tricolor

PHOEBE, preto, Sayornis nigricans

PIGEON, cauda-de-faixa, Patagioenas fasciata

Plano, Patagioenas inornata

Red-billed, Patagioenas flavirostris

Com pêlo escamoso, Patagioenas squamosa

De coroa branca, Patagioenas leucocephala

PINTAIL, Norte, Anas acuta

Bochechas brancas, Anas bahamensis

PIPIT, americano, Anthus rubescens

Olive-back, Anthus hodgsoni

De garganta vermelha, Anthus cervinus

Sprague's, Anthus spragueii

PLOVER, Barriga Negra, Pluvialis squatarola

Colarinho, Charadrius collaris

Anel comum, Charadrius hiaticula

Kentish, Charadrius alexandrinus

Little Ringed, Charadrius dubius

Montanha, Charadrius montanus

Tubulação, Charadrius melodus

Semipalmado, Charadrius semipalmatus

Wilson's, Charadrius wilsonia

POCHARD, Baer, Aythya Baeri

POND-HERON, chinês, Ardeola bacchus

POORWILL, comum, Phalaenoptilus nuttallii

PO`OULI, Melamprosops phaeosoma

PUAIOHI, Myadestes palmeri

PUFFIN, Atlantic, Fratercula arctica

Com chifre, Fratercula corniculata

Tufado, Fratercula cirrhata

PYGMY-OWL, Ferruginoso, Glaucidium brasilianum

Norte, Glaucidium gnoma

PYRRHULOXIA, Cardinalis sinuatus

QUAIL-DOVE, Freio, Geotrygon mystacea

Key West, Geotrygon chrysia

QUETZAL, orelhudo, Euptilotis neoxenus

RAIL, preto, Laterallus jamaicensis

Buff-banded, Gallirallus philippensis

Ridgway's, Rallus obsoletus

Identificado, Pardirallus maculatus

Amarelo, Coturnicops noveboracensis

RAVEN, Chihuahuan, Corvus cryptoleucus

REDPOLL, comum, Acanthis flammea

Hoary, Acanthis hornemanni

REDSHANK, comum, Tringa totanus

Identificado, Tringa erythropus

REDSTART, americano, Setophaga ruticilla

Comum, Phoenicurus phoenicurus

Ardósia de garganta, Myioborus miniatus

REEF-HERON, Pacífico, Egretta sacra

ROADRUNNER, Maior, Geococcyx californianus

ROBIN, americano, Turdus migratorius

Rufous-back, Turdus rufopalliatus

De cauda ruiva, Larvivora sibilans

Siberian Blue, Larvivora cyane

ROCK-THRUSH, Blue, Monticola solitarius

ROSEFINCH, comum, Carpodacus erythrinus

ROSY-FINCH, Asiático, Leucosticte arctoa

Com tampa marrom, Leucosticte australis

Coroado de cinza, Leucosticte tephrocotis

RUBYTHROAT, siberiano, Calliope Calliope

SANDPIPER, Baird's, Calidris bairdii

Broadbilled, Calidris falcinellus

Buff-breasted, Calidris subruficollis

Comum, Actite hipoleuco

Maçarico, Calidris ferruginea

Peitoral, Calidris melanotos

Rocha, Calidris ptilocnemis

Semipalmado, Calidris Pusilla

De cauda afiada, Calidris acuminata Iniciar página impressa 61299

Solitário, Tringa solitaria

Colher de bico, Calidris pygmea

Identificado, Actitis macularius

Palafitas, Calidris himantopus

Upland, Bartramia longicauda

White-rumped, Calidris fuscicollis

SAND-PLOVER, Maior, Charadrius leschenaultii

Menor, Charadrius mongolus

SAPSUCKER, de peito vermelho, Sphyrapicus ruber

Com nuca vermelha, Sphyrapicus nuchalis

Williamson's, Sphyrapicus thyroideus

Barriga amarela, Sphyrapicus varius

SCAUP, maior, Aythya marila

SCOPS-OWL, oriental, Otus sunia

SCOTER, preto, Melanitta americana

Surf, Melanitta perspicillata

De asas brancas, Melanitta fusca

SCREECH-OWL, oriental, Megascops asio

Porto-riquenho, Megascops nudipes

Ocidental, Megascops kennicottii

Com bigode, Megascops trichopsis

SCRUB-JAY, Califórnia, Aphelocoma californica

Flórida, Aphelocoma coerulescens

Ilha, Aphelocoma insularis

Woodhouse's, Aphelocoma woodhouseii

SEA-EAGLE, Steller, Haliaeetus pelagicus

SEEDEATER, Morelet's, Sporophila morelleti

SHEARWATER, Audubon's, Puffinus lherminieri

Black-vented, Puffinus opisthomelas

Cabo Verde, Calonectris edwardsii

Natal, Puffinus nativitatis

Cory's, Calonectris diomedea

De pés carnudos, Ardenna carneipes

De pés rosados, Ardenna creatopus

De cauda curta, Ardenna tenuirostris

Riscado, Calonectris leucomelas

De cauda em cunha, Ardenna Pacifica

SHOVELER, norte, Spatula clypeata

SHRIKE, marrom, Lanius cristatus

Loggerhead, Lanius ludovicianus

SILKY-FLYCATCHER, Gray, Ptiliogonys cinereus

SISKIN, euro-asiático, Spinus spinus

SKIMMER, preto, Rynchops niger

SKUA, ótimo, Stercorarius skua

Polar Sul, Stercorarius maccormicki

SKYLARK, Eurasian, Alauda arvensis

SNIPE, comum, Gallinago gallinago

Jack, Lymnocryptes minimus

De cauda fina, Gallinago stenura

Solitário, Gallinago solitaria

Swinhoe's, Gallinago megala

Wilson's, Gallinago delicata

SOLITAIRE, dorso marrom, Myadestes occidentalis

Townsend's, Myadestes citiesendi

SPARROW, American Tree, Spizelloides arborea

Bachman's, Peucaea aestivalis

Bell's, Artemisiospiza belli

Queixo preto, Spizella atrogularis

Garganta negra, Amphispiza bilineata

Botteri's, Peucaea botterii

Lascando, Spizella passerina

Cor de argila, Spizella pallida

Cinco listras, Amphispiza quinquestriata

De coroa dourada, Zonotrichia atricapilla

Gafanhoto, Ammodramus savannarum

Harris's, Zonotrichia querula

Henslow's, Centronyx henslowii

Cotovia, Chondestes grammacus

LeConte's, Ammospiza leconteii

Lincoln's, Melospiza lincolnii

Nelson's, Ammospiza nelsoni

Oliva, Arremonops rufivirgatus

Rufous-coroado, Aimophila ruficeps

Rufous-wing, Peucaea carpalis

Artemísia, Artemisiospiza nevadensis

Saltmarsh, Ammospiza caudacuta

Savana, Passerculus sandwichensis

Beira-mar, Ammospiza maritima

Pântano, Melospiza georgiana

Vesper, Pooecetes gramineus

De coroa branca, Zonotrichia leucophrys

De garganta branca, Zonotrichia albicollis

Worthen's, Spizella wortheni

SPARROWHAWK, chinês, Accipiter soloensis

Japonês, Accipiter gularis

SPINDALIS, porto-riquenho, Spindalis portoricensis

SPOONBILL, Roseate, Platalea ajaja

STARLING, bochecha castanha, Agropsar philippensis

Bochechas brancas, Spodiopsar cineraceus

STARTHROAT, com tampa lisa, Heliomaster constantii

STILT, pescoço preto, Himantopus mexicanus

De asas negras, Himantopus himantopus

STINT, Little, Calidris minuta

Dedo comprido, Calidris subminuta

De pescoço vermelho, Calidris ruficollis

Temminck's, Calidris temminckii

STONECHAT, Saxicola torquatus

STORK, Wood, Mycteria americana

STORM-PETREL, Ashy, Oceanodroma homochroa

Band-rumped, Oceanodroma castro

Preto, Oceanodroma melania

Barriga negra, Fregetta tropica

De cauda bifurcada, Oceanodroma furcata

Leach's, Oceanodroma leucorhoa

Ao menos, Oceanodroma microsoma

De Matsudaira, Oceanodroma matsudairae

Polinésio, Nesofregetta fuliginosa

Rodeado, Oceanodroma hornbyi

Swinhoe's, Oceanodroma monorhis

Townsend's, Oceanodroma socorroensis

Tristram's, Oceanodroma tristrami

Cunha-rumped, Oceanodroma tethys

Barriga branca, Fregetta grallaria

Com o rosto branco, Pelagodroma marina

Wilson's, Oceanites oceanicus

SURFBIRD, Calidris virgata

SWALLOW, Bahama, Tachycineta cyaneoviridis

Penhasco, Petrochelidon pyrrhonota

Mangue, Tachycineta albilinea

Asas ásperas do norte, Stelgidopteryx serripennis

Verde-violeta, Tachycineta thalassina

SWAMPHEN, roxo, Porfírio porfírio

SWAN, Trompetista, Cygnus buccinator

Tundra, Cygnus columbianus

Chaminé, Chaetura pelagica

De cauda bifurcada, Apus pacificus

De cauda curta, Chaetura brachyura

Colarinho branco, Streptoprocne zonaris

De garganta branca, Aeronautes saxatalis

SWIFTLET, Mariana, Aerodramus bartschi

White-rumped, Aerodramus spodiopygius

TANAGER, cor de chama, Piranga bidentata

Porto-riquenho, Nesospingus speculiferus

Ocidental, Piranga ludoviciana

TATTLER, cauda cinza, Tringa brevipes

TEAL, Baikal, Sibirionetta formosa

De asa azul, Discores de espátula

Canela, Espátula cianóptero

TERN, Aleutian, Onychoprion Aleuticus

Black-naped, Sterna Sumatrana

Freado, Onicoprion anaethetus

Cáspio, Hydroprogne caspia

Elegante, Thalasseus elegans

De dorso cinza, Onychoprion lunatus

Great Crested, Thalasseus bergii

Gull-billed, Gelochelidon nilotica

Faturamento grande, Phaetusa simplex

Ao menos, Esternula Antillarum

Pequeno, Esternula Albifrons

Sanduíche, Thalasseus sandvicensis

Fuliginoso, Onicoprion fuscatus

Com bigode, Chlidonias Hybrida

De asas brancas, Chlidonias leucopterus

THRASHER, Bendire's, Toxostoma bendirei

Califórnia, Toxostoma redivivum

Crissal, Toxostoma crissale

Curva-faturada, Toxostoma curvirostre

LeConte's, Toxostoma lecontei

Longa cobrança, Toxostoma longirostre

Olhos perolados, Margarops fuscatus

Sábio, Oreoscoptes montanus

THRUSH, asteca, Ridgwayia pinicola

Bicknell's, Catharus bicknelli

Sobrancelha Turdus obscurus

Bochecha grisalha, Catharus minimus

Eremita, Catharus guttatus Iniciar página impressa 61300

De pernas vermelhas, Turdus plumbeus

Swainson's, Catharus ustulatus

De garganta branca, Turdus assimilis

Madeira, Hylocichla mustelina

TIGER-HERON, Bare-throated, Tigrisoma mexicanum

TITMOUSE, Black-crested, Baeolophus atricristatus

Freado, Baeolophus wollweberi

Zimbro, Baeolophus ridgwayi

Tufado, Baeolophus bicolor

TITYRA, Mascarado, Tityra semifasciata

TOWHEE, Abert's, Melozone aberti

Califórnia, Melozone crissalis

Oriental, Pipilo eritroftalmo

De cauda verde, Pipilo chlorurus

TROGON, elegante, Trogon elegans

TROPICBIRD, Red-billed, Phaethon aethereus

De cauda vermelha, Phaethon rubricauda

De cauda branca, Phaethon lepturus

TURNSTONE, preto, Arenaria melanocephala

TURTLE-DOVE, europeu, Streptopelia turtur

Oriental, Streptopelia orientalis

VEERY, Catharus fuscescens

VERDIN, Auriparus flaviceps

VIOLETEAR, mexicano, Colibri thalassinus

Preto-tampado, Vireo atricapilla

De bigode preto, Vireo altiloquus

De cabeça azul, Vireo solitarius

Filadélfia, Vireo philadelphicus

Porto-riquenho, Vireo latimeri

Faturado, Vireo crassirostris

Amarelo verde, Vireo flavoviridis

De garganta amarela, Vireo flavifrons

VULTURE, preto, Coragyps atratus

WAGTAIL, Citrino, Motacilla citreola

Amarelo oriental, Motacilla tschutschensis

WARBLER, Adelaide's, Setophaga adelaidae

Aguiguan Reed, Acrocephalus nijoi

Ártico, Phylloscopus borealis

Bachman's, Vermivora bachmanii

Peito-louro, Setophaga castanea

Preto e branco, Mniotilta varia

Blackburnian, Setophaga fusca

Blackpoll, Setophaga striata

Azul com garganta negra, Setophaga caerulescens

Cinza de garganta negra, Setophaga nigrescens

Verde de garganta negra, Setophaga virens

De asa azul, Vermivora cyanoptera

Blyth's Reed, Acrocephalus dumetorum

Canadá, Cardellina canadensis

Cape May, Setophaga tigrina

Cerúleo, Setophaga cerulea

Chestnut-sided, Setophaga pensylvanica

Colima, Oreothlypis crissalis

Connecticut, Oporornis agilis

Crescente de peito, Oreothlypis superciliosa

Escuro, Phylloscopus fuscatus

Madeiras Élficas, Setophaga angelae

Com cauda em leque, Basileuterus lachrymosus

De bochecha dourada, Setophaga chrysoparia

De coroa dourada, Basileuterus culicivorus

De asas douradas, Vermivora chrysoptera

Eremita, Setophaga occidentalis

Folha Kamchatka, Phylloscopus examinandus

Kentucky, Geothlypis formosa

Kirtland's, Setophaga kirtlandii

Lanceolado, Locustella lanceolata

MacGillivray's, Geothlypis Tolmiei

Magnólia, Magnólia Setophaga

Luto, Geothlypis philadelphia

Nashville, Oreothlypis ruficapilla

Nightingale Reed, Acrocephalus luscinius

Oliva, Peucedramus taeniatus

Coroada de laranja, Oreothlypis celata

Reed Pagan, Acrocephalus yamashinae

Folha de Pallas, Phylloscopus proregulus

Pradaria, Setophaga discolor

Protonotário, Protonotaria citrea

Com o rosto vermelho, Rubrifrons cardellina

Rufous-capped, Basileuterus rufifrons

Saipan Reed, Acrocephalus hiwae

Sedge, Acrocephalus schoenobaenus

Swainson's, Limnothlypis swainsonii

Tennessee, Oreothlypis peregrina

Townsend's, Setophaga citiesendi

Da Virgínia, Oreothlypis virginiae

Salgueiro, Phylloscopus trochilus

Wilson's, Cardellina Pusilla

Madeira, Phylloscopus sibilatrix

Comedor de vermes, Helmitheros vermivorum

Amarelo, Petéquia Setophaga

De sobrancelha amarela, Phylloscopus inornatus

Amarelo-rumped, Setophaga coronata

De garganta amarela, Setophaga dominica

WATERTHRUSH, Louisiana, Parkesia motacilla

Norte, Parkesia noveboracensis

WAXWING, boêmio, Bombycilla garrulus

Cedro, Bombycilla cedrorum

WHEATEAR, norte, Oenanthe oenanthe

WHIMBREL, Numenius phaeopus

WHIP-POOR-WILL, oriental, Antrostomus vociferus

Mexicano, Antrostomus arizonae

PATO ASSASSINADO, Barriga Negra, Dendrocygna autumnalis

Fulvous, Dendrocygna bicolor

Índico Ocidental, Dendrocygna arborea

WHITETHROAT, Lesser, Sylvia Curruca

WIGEON, americano, Mareca americana

WILLET, Tringa semipalmata

WOODCOCK, americano, Escolopax menor

Eurasiático, Scolopax rusticola

WOODPECKER, bolota, Melanerpes formicivorus

Americano de três dedos, Picoides dorsalis

Arizona, Dryobates arizonae

Black-back, Picoides arcticus

Downy, Dryobates pubescens

Gila, Melanerpes uropygialis

Frente de ouro, Aurifrons melanerpes

Great Spotted, Dendrocopos major

Faturado em marfim, Campephilus principalis

Apoiado em escada, Dryobates scalaris

Nuttall's, Dryobates nuttallii

Pileated, Dryocopus pileatus

Porto-riquenho, Melanerpes portoricensis

Barriga vermelha, Melanerpes carolinus

Red-cockaded, Dryobates borealis

Ruivo, Melanerpes erythrocephalus

De cabeça branca, Dryobates albolarvatus

WOOD-PEWEE, oriental, Contopus virens

Ocidental, Contopus sordidulus

WOOD-RAIL, pescoço ruivo, Aramides axillaris

WOODSTAR, Bahama, Calliphlox evelynae

WREN, Bewick's, Thryomanes bewickii

Cacto, Campylorhynchus brunneicapillus

Canyon, Catherpes mexicanus

Carolina, Thryothorus ludovicianus

Pântano, Cistothorus palustris

Pacífico, Troglodytes pacificus

Rocha, Salpinctes obsoletus

Sedge, Cistothorus platensis

Sinaloa, Thryophilus sinaloa

Inverno, Troglodytes hiemalis

WRYNECK, euro-asiático, Jynx torquilla

YELLOWLEGS, maior, Tringa melanoleuca

AMARELO, comum, Geothlypis trichas

Coroado de cinza, Geothlypis poliocephala

(2) Listagem taxonômica. As espécies são listadas em seqüência filogenética por nome científico, com o nome comum (inglês) após o nome científico. Para ajudar a esclarecer as relações entre as espécies, também listamos as categorias taxonômicas de nível superior de Ordem, Família e Subfamília.

Dendrocygna autumnalis, Pato-assobio-de-barriga-preta

Dendrocygna arborea, Pato-Assobio das Índias Ocidentais

Dendrocygna bicolor, Fulvous Whistling-Duck

Anser canagicus, Imperador ganso

Anser caerulescens, Ganso da neve

Anser Albifrons, Grande Ganso-de-testa-branca

Anser erythropus, Ganso-pequeno-de-testa-branca

Anser fabalis, Taiga Feijão-Ganso

Anser serrirostris, Tundra Feijão-Ganso

Anser brachyrhynchus, Ganso de pés rosados

Branta leucopsis, Barnacle Goose

Branta hutchinsii, Ganso cacarejante

Branta canadensis, Ganso canadense

Branta sandvicensis, Ganso havaiano

Cygnus buccinator, Cisne de trompetista

Cygnus columbianus, Tundra Swan

Cygnus cygnus, Whooper Swan

Cairina moschata, Pato almiscarado

Sibirionetta formosa, Baikal Teal

Spatula querquedula, Garganey

Discores de espátula, Azul-marinho-de-asa-azul

Espátula cianóptero, Cinnamon Teal Start Impresso Página 61301

Spatula clypeata, Pegadeira do Norte

Mareca falcata, Pato falcado

Penélope Mareca, Eurasian Wigeon

Mareca americana, American Wigeon

Anas laysanensis, Pato Laysan

Anas wyvilliana, Pato Havaiano

Anas zonorhyncha, Pato oriental

Anas platyrhynchos, Mallard

Anas rubripes, Pato preto americano

Anas fulvigula, Pato Mosqueado

Anas superciliosa, Pato Preto do Pacífico

Anas bahamensis, Arrabio de bochechas brancas

Anas acuta, Arrabio do Norte

Anas crecca, Verde-azulado

Aythya valisineria, Canvasback

Aythya ferina, Pochard Comum

Aythya baeri, Baer Pochard

Aythya collaris, Pato-de-pescoço-redondo

Aythya fuligula, Pato Tufado

Aythya marila, Grande Scaup

Aythya affinis, Scaup Menor

Polysticta stelleri, Steller Eider

Somateria fischeri, Eider de óculos

Somateria spectabilis, Rei Eider

Somateria mollissima, Eider Comum

Histrionicus histrionicus, Pato arlequim

Melanitta perspicillata, Surf Scoter

Melanitta fusca, Scoter de asa branca

Melanitta nigra, Scoter Comum

Melanitta americana, Black Scoter

Clangula hyemalis, Pato-de-cauda-comprida

Bucephala albeola, Bufflehead

Bucephala clangula, Goldeneye comum

Bucephala islandica, Goldeneye Barrow

Lophodytes cucullatus, Pato-mergulhão

Mergus merganser, Pato-mergulhão

Serrator Mergus, Pato-mergulhão

Nomonyx dominicus, Pato mascarado

Oxyura jamaicensis, Pato Ruddy

Phoenicopterus ruber, Flamingo Americano

Tachybaptus dominicus, Mergulhão Menor

Podilymbus podiceps, Mergulhão-de-bico-vermelho

Podiceps auritus, Mergulhão com chifres

Podiceps grisegena, Mergulhão de pescoço vermelho

Podiceps nigricollis, Mergulhão orelhudo

Aechmophorus occidentalis, Mergulhão Ocidental

Aechmophorus clarkii, Mergulhão de Clark

Patagioenas squamosa, Pombo-escamoso

Patagioenas leucocephala, Pombo-de-coroa-branca

Patagioenas flavirostris, Pombo-de-bico-vermelho

Patagioenas inornata, Plain Pigeon

Patagioenas fasciata, Pombo Band-tailed

Streptopelia orientalis, Pomba-Tartaruga Oriental

Alopecoenas xanthonura, Pomba-de-garganta-branca

Escada de Alopecoenas, Pomba-tímida

Streptopelia turtur, Tartaruga-Pomba Europeia

Columbina passerina, Pomba-Terra Comum

Columbina talpacoti, Ruddy Ground-Dove

Geotrygon montana, Ruddy Quail-Dove

Geotrygon crisia, Key West Quail-Dove

Geotrygon mystacea, Quail-Dove freiada

Leptotila verreauxi, Pomba de ponta branca

Zenaida asiatica, Pomba de asa branca

Zenaida aurita, Zenaida Dove

Zenaida macroura, Pomba de luto

Ptilinopus perousii, Fruit-Dove multicolorido

Ptilinopus porphyraceus, Pomba-da-fruta com coroa carmesim

Ptilinopus roseicapilla, Mariana Fruta-Pomba

Ducula pacifica, Pacífico Imperial-Pombo

Urodynamis taitensis, Koel de cauda longa

Hierococcyx nisicolor, Hodgson's Hawk-Cuckoo

Cuculus canorus, Cuco comum

Cuculus optatus, Cuco oriental

Coccyzus americanus, Cuco de bico amarelo

Coccyzus minor, Mangrove Cuckoo

Coccyzus erythropthalmus, Cuco-de-bico-preto

Coccyzus vieilloti, Lagarto-cuco porto-riquenho

Geococcyx californianus, Greater Roadrunner

Crotophaga ani, Ani de bico liso

Crotophaga sulcirostris, Groove-billed Ani

Chordeiles acutipennis, Falcão Noturno Menor

Chordeiles menores, Nighthawk comum

Chordeiles gundlachii, Antillean Nighthawk

Nyctidromus albicollis, Pauraque Comum

Phalaenoptilus nuttallii, Poorwill comum

Antrostomus carolinensis, Viúva de chuck-will

Antrostomus ridgwayi, Nightjar de colarinho amarelo

Antrostomus vociferus, Chicote oriental-pobre-vontade

Antrostomus arizonae, Chicote mexicano

Antrostomus noctitherus, Puerto Rican Nightjar

Hydropsalis cayennensis, Nightjar de cauda branca

Caprimulgus jotaka, Nightjar cinza

Cypseloides niger, Black Swift

Streptoprocne zonaris, Swift de colarinho branco

Chaetura pelagica, Chimney Swift

Chaetura vauxi, Vaux's Swift

Chaetura brachyura, Swift de cauda curta

Hirundapus caudacutus, Needletail de garganta branca

Aerodramus spodiopygius, Swiftlet branco-rumped

Aerodramus bartschi, Mariana Swiftlet

Apus pacificus, Swift de cauda bifurcada

Aeronautes saxatalis, Swift de garganta branca

Tachornis phoenicobia, Antillean Palm-Swift

Colibri thalassinus, Violeta Mexicana

Anthracothorax prevostii, Manga de peito verde

Anthracothorax dominicus, Manga antilhano

Antracotórax viridis, Manga verde

Eulampis jugularis, Carib de garganta roxa

Eulampis holosericeus, Carib de garganta verde

Eugenes fulgens, Beija-flor de rivoli

Heliomaster constantii, Starthroat liso

Lampornis amethystinus, Beija-flor-de-garganta-ametista

Lampornis clemenciae, Beija-flor-de-garganta-azul

Calliphlox evelynae, Bahama Woodstar

Lúcifer Calotórax, Lúcifer Beija-flor

Archilochus colubris, Beija-flor-de-garganta-rubi

Archilochus alexandri, Beija-flor-queixo-preto

Mellisuga minima, Vervain Beija-flor

Calypte anna, Beija-flor da anna

Calypte costae, Beija-flor da costa

Nesta heloisa, Bumblebee Beija-flor

Selasphorus platycercus, Beija-flor-de-cauda-larga

Selasphorus rufus, Colibri ruivo

Selasphorus sasin, Beija-flor de Allen

Selasphorus calliope, Beija-flor Calliope

Clorostilbon maugaeus, Esmeralda porto-riquenha

Cynanthus latirostris, Beija-flor de bico largo

Orthorhyncus cristatus, Beija-flor com crista das Antilhas

Amazilia beryllina, Beija-flor Berylline

Amazilia yucatanensis, Beija-flor-de-barriga-amarela

Amazilia rutila, Canela Beija-flor

Amazilia violiceps, Beija-flor-de-coroa-violeta

Hylocharis leucotis, Beija-flor-de-orelha-branca

Hylocharis xantusii, Beija-flor de Xantus

Coturnicops noveboracensis, Yellow Rail

Laterallus jamaicensis, Black Rail

Gallirallus philippensis, Rail-banded

Gallirallus owstoni, Guam Rail

Rallus obsoletus, Ridgway's Rail

Rallus crepitans, Clapper Rail

Rallus limicola, Virginia Rail

Aramides axillaris, Wood-Rail de pescoço ruivo

Porzana tabuensis, Crake Impecável

Hapalocrex flaviventer, Crake de peito amarelo

Neocrex erythrops, Crake com bico de tinta

Pardirallus maculatus, Spotted Rail

Porphyrio martinicus, Gallinule Roxo

Porphyrio flavirostris, Azure Gallinule

Porphyrio porphyrio, Swamphen roxo

Gallinula galeata, Gallinule comum início impresso página 61302

Gallinula chloropus, Moorhen comum

Fulica atra, Eurasian Coot

Fulica alai, Hawaiian Coot

Fulica americana, American Coot

Antigone canadensis, Sandhill Crane

Grus americana, Guindaste gigante

Himantopus himantopus, Pernilongo

Himantopus mexicanus, Perna-longa-de-pescoço-preto

Recurvirostra americana, American Avocet

Haematopus ostralegus, Eurasian Oystercatcher

Haematopus palliatus, American Oystercatcher

Haematopus bachmani, Black Oystercatcher

Vanellus vanellus, Abibe do norte

Pluvialis squatarola, Tarambola-de-barriga-preta

Pluvialis apricaria, Tarambola-dourada europeia

Pluvialis dominica, Tarambola-dourada americana

Pluvialis fulva, Tarambola-dourada do Pacífico

Charadrius mongolus, Tarambola-de-areia-pequena

Charadrius leschenaultii, Grande tarambola

Charadrius collaris, Tarambola-coleira

Charadrius alexandrinus, Tarambola de Kent

Charadrius nivosus, Tarambola-das-neves

Charadrius wilsonia, Tarambola de Wilson

Charadrius hiaticula, Tarambola-anelada-comum

Charadrius semipalmatus, Tarambola Semipalmada

Charadrius melodus, Tarambola

Charadrius dubius, Tarambola-anelada

Charadrius vociferus, Assassino

Charadrius montanus, Tarambola-da-montanha

Charadrius morinellus, Eurasian Dotterel

Jacana spinosa, Jacanã do Norte

Bartramia longicauda, Upland Sandpiper

Numenius tahitiensis, Maçarico-coxa eriçado

Numenius phaeopus, Whimbrel

Numenius minutus, Maçarico pequeno

Numenius borealis, Maçarico esquimó

Numenius americanus, Maçarico-real-de-bico-comprido

Numenius madagascariensis, Maçarico do extremo oriente

Numenius arquata, Maçarico-real

Limosa lapponica, Godwit rabo de barra

Limosa limosa, Godwit-de-cauda-negra

Limosa haemastica, Hudsonian Godwit

Limosa fedoa, Marmoreado

Arenaria interpres, Ruddy Turnstone

Arenaria melanocephala, Black Turnstone

Calidris tenuirostris, Grande nó

Calidris canutus, Nó Vermelho

Calidris virgata, Surfbird

Calidris falcinellus, Sandpiper de bico largo

Calidris acuminata, Sandpiper de cauda afiada

Calidris himantopus, Stilt Sandpiper

Calidris ferruginea, Maçarico-real

Calidris temminckii, Stint de Temminck

Calidris subminuta, Long-toed Stint

Calidris pygmea, Sandpiper de bico-colher

Calidris ruficollis, Stint de pescoço vermelho

Calidris ptilocnemis, Rock Sandpiper

Calidris maritima, Sandpiper Roxo

Calidris bairdii, Baird's Sandpiper

Calidris minuta, Little Stint

Calidris minutilla, Least Sandpiper

Calidris fuscicollis, Sandpiper White-rumped

Calidris subruficollis, Sandpiper de peito amarelo

Calidris melanotos, Maçarico peitoral

Calidris pusilla, Sandpiper Semipalmado

Calidris mauri, Sandpiper Ocidental

Limnodromus griseus, Dowitcher de bico curto

Limnodromus scolopaceus, Dowitcher de bico longo

Lymnocryptes minimus, Jack Snipe

Scolopax rusticola, Galinhola euro-asiática

Escolopax menor, Galinhola americana

Gallinago solitaria, Solitary Snipe

Gallinago stenura, Snipe de cauda curta

Gallinago megala, Snipe de Swinhoe

Gallinago gallinago, Snipe comum

Gallinago delicata, Wilson's Snipe

Xenus cinereus, Terek Sandpiper

Actitis hipoleucos, Sandpiper Comum

Actitis macularius, Sandpiper Manchado

Tringa ochropus, Sandpiper Verde

Tringa solitaria, Solitary Sandpiper

Tringa brevipes, Tattler de cauda cinza

Tringa incana, Wandering Tattler

Tringa flavipes, Pernas Amarelas Menores

Tringa semipalmata, Willet

Tringa erythropus, Redshank manchado

Tringa nebularia, Greenshank comum

Tringa guttifer, Greenshank de Nordmann

Tringa melanoleuca, Grande Pernas Amarelas

Tringa totanus, Redshank comum

Tringa glareola, Wood Sandpiper

Tringa stagnatilis, Marsh Sandpiper

Phalaropus tricolor, Falaropo de Wilson

Phalaropus lobatus, Falaropo de pescoço vermelho

Phalaropus fulicarius, Falaropo Vermelho

Stercorarius skua, Grande Skua

Stercorarius maccormicki, South Polar Skua

Stercorarius pomarinus, Pomarine Jaeger

Stercorarius parasiticus, Jaeger parasita

Stercorarius longicaudus, Jaeger de cauda longa

Uria lomvia, Murre de bico grosso

Cepphus grylle, Guillemot Preto

Cepphus columba, Pigeon Guillemot

Brachyramphus perdix, Murrelet de bico longo

Brachyramphus marmoratus, Murrelet Marmoreado

Brachyramphus brevirostris, Murrelet de Kittlitz

Synthliboramphus scrippsi, Murrelet de Scripps

Synthliboramphus hypoleucus, Guadalupe Murrelet

Synthliboramphus craveri, Murrelet de Craveri

Synthliboramphus antiquus, Murrelet Milenar

Ptychoramphus aleuticus, Cassin's Auklet

Aethia psittacula, Periquito Auklet

Aethia pusilla, Menos Auklet

Aethia pygmaea, Whiskered Auklet

Aethia cristatella, Auklet com crista

Cerorhinca monocerata, Rhinoceros Auklet

Fratercula arctica, Atlantic Puffin

Fratercula corniculata, Papagaio-do-mar chifrudo

Fratercula cirrhata, Papagaio-do-mar adornado

Creagrus furcatus, Gaivota-de-cauda-andorinha

Rissa tridactyla, Kittiwake de pernas pretas

Rissa brevirostris, Kittiwake de pernas vermelhas

Pagophila eburnea, Ivory Gull

Chroicocephalus philadelphia, Gaivota de Bonaparte

Chroicocephalus cirrocephalus, Gaivota de Capuz Cinzento

Chroicocephalus ridibundus, Gaivota de cabeça preta

Hydrocoloeus minutus, Gaivota

Rhodostethia rosea, Gaivota de Ross

Leucophaeus atricilla, Gaivota Rindo

Leucophaeus pipixcan, Gaivota de franklin

Larus belcheri, Gaivota de Belcher

Larus crassirostris, Gaivota-de-cauda-negra

Larus heermanni, Gaivota de Heermann

Larus delawarensis, Gaivota de bico redondo

Larus occidentalis, Gaivota ocidental

Larus livens, Gaivota-de-pés-amarelos

Larus californicus, Gaivota californiana

Larus argentatus, Gaivota Herring

Larus michahellis, Gaivota de patas amarelas

Larus glaucoides, Gaivota islandesa

Larus fuscus, Gaivota-de-dorso-preto-pequeno

Larus schistisagus, Gaivota-de-dorso

Larus glaucescens, Gaivota de asas Glaucous

Larus hyperboreus, Glaucous Gull

Larus marinus, Grande gaivota de dorso negro

Larus dominicanus, Gaivota Kelp

Anous stolidus, Brown Noddy

Anous minutus, Black Noddy

Anous ceruleus, Noddy cinza-azulado

Onicoprion fuscatus, Sooty Tern

Onychoprion lunatus, Andorinha-do-mar-cinza

Onicoprion anaethetus, Andorinha-do-mato

Onychoprion aleuticus, Aleutian Tern

Sternula Albifrons, Andorinha-do-mar

Esternula antillarum, Menor Andorinha

Phaetusa simplex, Andorinha-do-mar-de-bico-grande

Gelochelidon nilotica, Andorinha-do-mar

Hydroprogne caspia, Andorinha-do-mar Cáspio

Chlidonias niger, Andorinha-do-mar

Chlidonias leucopterus, Andorinha-do-mar-de-asa-branca

Chlidonias hybrida, Andorinha-do-mato

Sterna dougallii, Roseate Tern

Sterna sumatrana, Andorinha-do-mato

Sterna hirundo, Andorinha-do-mar

Sterna paradisaea, Andorinha do mar ártica

Sterna forsteri, Tern Start de Forster Impresso Página 61303

Thalasseus maximus, Royal Tern

Thalasseus bergii, Andorinha-do-mar-de-crista

Thalasseus sandvicensis, Andorinha-do-mar

Thalasseus elegans, Andorinha-do-mar elegante

Rynchops niger, Black Skimmer

Phaethon lepturus, Tropicbird de cauda branca

Phaethon aethereus, Tropicbird-de-bico-vermelho

Phaethon rubricauda, Tropicbird-de-cauda-vermelha

Gavia stellata, Loon de garganta vermelha

Gavia arctica, Arctic Loon

Gavia pacifica, Pacific Loon

Gavia adamsii, Loon-de-bico-amarelo

Thalassarche chlororhynchos, Albatroz-de-nariz-amarelo

Thalassarche cauta, Albatroz-de-bico-branco

Thalassarche eremita, Chatham Albatross

Thalassarche salvini, Albatroz de Salvin

Thalassarche melanophris, Albatroz-de-sobrancelha negra

Phoebetria palpebrata, Albatroz-de-manto-claro

Diomedea exulans, Albatroz errante

Phoebastria immutabilis, Laysan Albatross

Phoebastria nigripes, Albatroz-de-pés-negros

Phoebastria albatrus, Albatroz-de-cauda-curta

Oceanites oceanicus, Storm-Petrel de Wilson

Pelagodroma marina, Tempestade-de-cara-branca

Fregetta tropica, Tempestade de barriga preta

Fregetta grallaria, Tempestade de barriga branca

Nesofregetta fuliginosa, Tempestade-Petrel da Polinésia

Oceanodroma furcata, Tempestade de cauda bifurcada

Oceanodroma hornbyi, Storm-Petrel anelado

Oceanodroma monorhis, Storm-Petrel de Swinhoe

Oceanodroma leucorhoa, Storm-Petrel de Leach

Oceanodroma socorroensis, Storm-Petrel de Townsend

Oceanodroma homochroa, Petrel de Tempestade Cinzento

Oceanodroma castro, Storm-Petrel de band-rumped

Oceanodroma tethys, Storm-Petrel de cunha

Oceanodroma matsudairae, Storm-Petrel de Matsudaira

Oceanodroma melania, Black Storm-Petrel

Oceanodroma tristrami, Tempestade de Petrel de Tristram

Oceanodroma microsoma, Menos tempestade-petrel

Fulmarus glacialis, Fulmar do Norte

Pterodroma macroptera, Petrel de asa grande

Pterodroma solandri, Providence Petrel

Pterodroma neglecta, Kermadec Petrel

Pterodroma arminjoniana, Trindade Petrel

Pterodroma heraldica, Herald Petrel

Pterodroma ultima, Petrel de Murphy's

Pterodroma inexpectata, Petrel Mosqueado

Pterodroma cahow, Bermuda Petrel

Pterodroma hasitata, Petrel de capa preta

Pterodroma externa, Juan Fernandez Petrel

Pterodroma sandwichensis, Petrel havaiano

Pterodroma cervicalis, Petrel de pescoço branco

Pterodroma hypoleuca, Bonin Petrel

Pterodroma nigripennis, Petrel de asa negra

Pterodroma feae, Petrel de Fea

Pterodroma madeira, Petrel de Zino

Pterodroma cookii, Cook's Petrel

Pterodroma longirostris, Petrel de Stejneger

Pterodroma alba, Phoenix Petrel

Pterodroma leucoptera, Petrel de Gould

Pseudobulweria rostrata, Tahiti Petrel

Bulweria bulwerii, Bulwer's Petrel

Bulweria fallax, Petrel de Jouanin

Procellaria aequinoctialis, Petrel de queixo branco

Procellaria parkinsoni, Petrel de Parkinson

Calonectris leucomelas, Cagarra listrada

Calonectris diomedea, Cagarra

Calonectris edwardsii, Cagarra de Cabo Verde

Ardenna pacifica, Cagarra de cauda em cunha

Ardenna bulleri, Buller's Shearwater

Ardenna tenuirostris, Cagarra-de-cauda-curta

Ardenna grisea, Sooty Shearwater

Ardenna gravis, Great Shearwater

Ardenna creatopus, Cagarra-de-pés-rosa

Ardenna carneipes, Cagarra

Puffinus nativitatis, Cagarra de Natal

Puffinus puffinus, Manx Shearwater

Puffinus newelli, Newell's Shearwater

Puffinus bryani, Bryan's Shearwater

Puffinus opisthomelas, Pardela-preta

Puffinus lherminieri, Cagarra de Audubon

Puffinus baroli, Barolo Shearwater

Mycteria americana, Cegonha de madeira

Fregata magnificens, Fragata Magnífica

Fregata menor, Grande Fragata

Fregata ariel, Fragata Menor

Sula dactylatra, Booby Mascarado

Sula nebouxii, Patola-de-pés-azuis

Sula leucogaster, Brown Booby

Sula sula, Patola-de-pés-vermelhos

Papasula abbotti, Abbott's Booby

Morus bassanus, Gannet do Norte

Phalacrocorax melanoleucos, Corvo-marinho pequeno

Phalacrocorax penicillatus, Cormorant de Brandt

Phalacrocorax brasilianus, Corvo-marinho neotrópico

Phalacrocorax auritus, Corvo-marinho-de-crista dupla

Phalacrocorax carbo, Grande Cormorant

Phalacrocorax urile, Corvo-marinho-de-cara-vermelha

Phalacrocorax pelagicus, Pelagic Cormorant

Pelecanus erythrorhynchos, Pelicano branco americano

Pelecanus occidentalis, Pelicano Castanho

Botaurus lentiginosus, American Bittern

Ixobrychus sinensis, Bittern amarelo

Ixobrychus exilis, Mínimo Bittern

Ixobrychus eurhythmus, Bittern de Schrenck

Ixobrychus flavicollis, Black Bittern

Tigrisoma mexicanum, Garça-tigre nua

Ardea herodias, Garça-real

Ardea intermedia, Egret intermediário

Egretta eulophotes, Garça-branca

Egretta garzetta, Garça-branca

Egretta sacra, Pacific Reef-Heron

Egretta gularis, Western Reef-Heron

Egretta thula, Garça-branca

Egretta caerulea, Garça-real

Egretta tricolor, Garça Tricolor

Egretta rufescens, Garça avermelhada

Bubulcus ibis, Garça-vaqueira

Ardeola bacchus, Garça-real-lagoa chinesa

Butorides virescens, Garça-real

Nycticorax nycticorax, Garça-da-noite-de-coroa-negra

Nycticorax caledonicus, Garça-da-noite ruiva

Nyctanassa violacea, Garça-da-noite-de-coroa-amarela

Gorsachius goisagi, Garça Noturna Japonesa

Gorsachius melanolophus, Malayan Night-Heron

Eudocimus albus, Íbis brancos

Eudocimus ruber, Íbis Escarlate

Plegadis falcinellus, Íbis brilhantes

Plegadis chihi, Íbis de rosto branco

Platalea ajaja, Colhereiro

Coragyps atratus, Abutre preto

Cathartes aura, Urubu

Gymnogyps californianus, Condor californiano

Elanus leucurus, Kite-de-cauda-branca

Chondrohierax uncinatus, Kite de bico de gancho

Elanoides forficatus, Papagaio de andorinha

Aquila chrysaetos, Águia dourada

Harpagus bidentatus, Papagaio de dente duplo

Circo spilonotus, Eastern Marsh-Harrier

Circus hudsonius, Harrier do Norte

Accipiter soloensis, Gavião Chinês

Accipiter gularis, Gavião Japonês

Accipiter striatus, Hawk de shinned afiado Iniciar Impresso Página 61304

Accipiter cooperii, Cooper's Hawk

Accipiter gentilis, Açor do Norte

Milvus migrans, Milhafre

Haliaeetus leucocephalus, Águia careca

Haliaeetus albicilla, Águia de cauda branca

Haliaeetus pelagicus, Águia-marinha de Steller

Ictinia mississippiensis, Mississippi Kite

Butastur indicus, Urubu de rosto acinzentado

Geranospiza caerulescens, Crane Hawk

Rostrhamus sociabilis, Caracol Kite

Buteogallus anthracinus, Black Hawk comum

Rupornis magnirostris, Roadside Hawk

Parabuteo unicinctus, Harris's Hawk

Geranoaetus albicaudatus, Falcão-de-cauda-branca

Buteo plagiatus, Grey Hawk

Buteo lineatus, Falcão de ombros vermelhos

Buteo platypterus, Falcão-de-asa-larga

Buteo solitarius, Hawaiian Hawk

Buteo brachyurus, Gavião-de-cauda-curta

Buteo swainsoni, Swainson's Hawk

Buteo albonotatus, Gavião-de-cauda-zona

Buteo jamaicensis, Falcão de cauda vermelha

Buteo lagopus, Falcão de pernas ásperas

Buteo regalis, Falcão Ferruginoso

Otus sunia, Coruja-Scops oriental

Psiloscops flammeolus, Coruja Flammulada

Megascops kennicottii, Coruja-guincho ocidental

Megascops asio, Coruja-guincho oriental

Megascops trichopsis, Whiskered Screech-Owl

Megascops nudipes, Coruja-guincho de Porto Rico

Bubo virginianus, Grande coruja Horned

Bubo scandiacus, Snowy Owl

Sumia ulula, Northern Hawk Owl

Glaucidium gnoma, Coruja-pigmeu do norte

Glaucidium brasilianum, Coruja-pigmeu ferruginosa

Micrathene Whitneyi, Elf Owl

Atena cunicularia, Coruja-buraqueira

Ciccaba virgata, Coruja Mosqueada

Strix occidentalis, Coruja manchada

Strix nebulosa, Grande Coruja Cinzenta

Asio flammeus, Coruja Orelhuda Curta

Aegolius funereus, Boreal Owl

Aegolius acadicus, Coruja afiada do norte

Ninox japonica, Boobook do norte

Trogon elegans, Trogon elegante

Euptilotis neoxenus, Quetzal Orelhudo

Upupa epops, Eurasian Hoopoe

Alcedo atthis, Kingfisher comum

Todiramphus sacer, Pacific Kingfisher

Todiramphus cinnamominus, Guam Kingfisher

Todiramphus albicilla, Mariana mariana-pescadora

Megaceryle torquata, Martim-pescador anelado

Megaceryle alcyon, Martim-pescador com cinto

Cloroceryle amazona, Amazon Kingfisher

Chloroceryle americana, Martim-pescador verde

Jynx torquilla, Eurasian Wryneck

Melanerpes lewis, Pica-pau de Lewis

Melanerpes portoricensis, Pica-pau porto-riquenho

Melanerpes erythrocephalus, Pica-pau ruivo

Melanerpes formicivorus, Pica-pau-bolota

Melanerpes uropygialis, Pica-pau-gila

Aurifrons Melanerpes, Pica-pau-dourado

Melanerpes carolinus, Pica-pau-de-barriga-vermelha

Sphyrapicus thyroideus, Sapsucker de Williamson

Sphyrapicus varius, Chupador de barriga amarela

Sphyrapicus nuchalis, Sapsucker de pêlo vermelho

Sphyrapicus ruber, Chupador de peito vermelho

Picoides dorsalis, Pica-pau de três dedos americano

Picoides arcticus, Pica-pau-preto

Dendrocopos major, Pica-pau-malhado

Dryobates pubescens, Pica-pau felpudo

Dryobates nuttallii, Pica-pau de Nuttall

Dryobates scalaris, Pica-pau com dorso de escada

Dryobates borealis, Pica-pau ruivo

Dryobates villosus, Pica-pau peludo

Dryobates albolarvatus, Pica-pau-cabeça-branca

Dryobates arizonae, Arizona Woodpecker

Colaptes auratus, Northern Flicker

Colaptes chrysoides, Cintilação Dourada

Dryocopus pileatus, Pica-pau pileatado

Campephilus principalis, Pica-pau bico de marfim

Micrastur semitorquatus, Falcão-da-floresta de colarinho

Caracara cheriway, Crested Caracara

Falco tinnunculus, Eurasian Kestrel

Falco sparverius, Peneireiro-americano

Falco vespertinus, Falcão-de-pés-vermelhos

Falco amurensis, Amur Falcon

Falco subbuteo, Eurasian Hobby

Falco femoralis, Aplomado Falcon

Falco rusticolus, Gyrfalcon

Falco peregrinus, Falcão peregrino

Falco mexicanus, Prairie Falcon

Tityra semifasciata, Tityra Mascarado

Pachyramphus major, Becard de colarinho cinza

Pachyramphus aglaiae, Becard rosa-garganta

Camptostoma imberbe, Tiranuleto-sem-barba do norte

Myiopagis viridicata, Elaenia esverdeada

Elaenia martinica, Elaenia caribenha

Elaenia albiceps, Elaenia de crista branca

Mitrephanes phaeocercus, Tufted Flycatcher

Contopus cooperi, Olive-Sided Flycatcher

Contopus pertinax, Greater Pewee

Contopus sordidulus, Western Wood-Pewee

Contopus virens, Wood-Pewee oriental

Contopus caribaeus, Cuban Pewee

Contopus hispaniolensis, Hispaniolan Pewee

Contopus latirostris, Menor Pewee das Antilhas

Empidonax flaviventris, Flycatcher de barriga amarela

Empidonax virescens, Acadian Flycatcher

Empidonax alnorum, Alder Flycatcher

Empidonax traillii, Willow Flycatcher

Empidonax minimus, Least Flycatcher

Empidonax hammondii, Papa-moscas de Hammond

Empidonax wrightii, Grey Flycatcher

Empidonax oberholseri, Dusky Flycatcher

Empidonax affinis, Pine Flycatcher

Empidonax difficilis, Flycatcher na encosta do Pacífico

Empidonax occidentalis, Cordilleran Flycatcher

Empidonax fulvifrons, Flycatcher de peito amarelo

Sayornis nigricans, Phoebe negra

Sayornis phoebe, Phoebe oriental

Sayornis saya, Phoebe de Say

Pyrocephalus rubinus, Vermilion Flycatcher

Myiarchus tuberculifer, Flycatcher com tampo escuro

Myiarchus cinerascens, Flycatcher de garganta cinza

Myiarchus nuttingi, Flycatcher de Nutting

Myiarchus crinitus, Great Crested Flycatcher

Myiarchus tyrannulus, Flycatcher de crista marrom

Myiarchus sagrae, Flycatcher de La Sagra

Myiarchus antillarum, Puerto Rican Flycatcher

Pitangus sulphuratus, Grande Kiskadee

Myiozetetes similis, Social Flycatcher

Myiodynastes luteiventris, Flycatcher de barriga de enxofre

Legatus leucophaius, Piratic Flycatcher

Empidonomus varius, Variegated Flycatcher

Empidonomus aurantioatrocristatus, Flycatcher Slaty Coroado

Tyrannus melancholicus, Kingbird tropical

Tyrannus couchii, Kingbird do sofá

Tyrannus vociferans, Kingbird de Cassin

Tyrannus crassirostris, Kingbird de bico grosso

Tyrannus verticalis, Kingbird ocidental

Tyrannus tyrannus, Kingbird oriental

Tyrannus dominicensis, Kingbird cinza

Tyrannus caudifasciatus, Kingbird cabeçudo

Tyrannus forficatus, Flycatcher com cauda em tesoura

Tyrannus savana, Flycatcher de cauda bifurcada

Lanius cristatus, Brown Shrike Start Impresso Página 61305

Lanius ludovicianus, Picanço-cabeçuda

Lanius borealis, Picanço-do-norte

Vireo atricapilla, Vireo com tampa preta

Vireo griseus, Vireo de olhos brancos

Vireo crassirostris, Vireo de bico grosso

Vireo latimeri, Puerto Rican Vireo

Vireo gundlachii, Vireo cubano

Vireo vicinior, Gray Vireo

Vireo huttoni, Vireo de Hutton

Vireo flavifrons, Vireo-de-garganta-amarela

Vireo cassinii, Cassin's Vireo

Vireo solitarius, Vireo de cabeça azul

Vireo plumbeus, Plumbeous Vireo

Vireo philadelphicus, Philadelphia Vireo

Vireo gilvus, Warbling Vireo

Vireo olivaceus, Vireo de olhos vermelhos

Vireo flavoviridis, Vireo verde-amarelo

Vireo altiloquus, Vireo de bigode preto

Vireo magister, Yucatan Vireo

Perisoreus canadensis, Canadá Jay

Psilorhinus morio, Brown Jay

Cyanocorax yncas, Jay Verde

Gymnorhinus cyanocephalus, Pinyon Jay

Cyanocitta stelleri, Jay de Steller

Cyanocitta cristata, Jay Azul

Aphelocoma coerulescens, Florida Scrub-Jay

Aphelocoma insularis, Island Scrub-Jay

Aphelocoma californica, California Scrub-Jay

Aphelocoma woodhouseii, Woodhouse's Scrub-Jay

Aphelocoma wollweberi, Jay mexicano

Nucifraga columbiana, Quebra-nozes de Clark

Pica hudsonia, Pega-rabuda

Pica nuttalli, Pega-de-bico-amarelo

Corvus monedula, Gralha euro-asiática

Corvus kubaryi, Mariana Crow

Corvus brachyrhynchos, Corvo Americano

Corvus caurinus, Corvo do Noroeste

Corvus leucognaphalus, Corvo-de-pescoço-branco

Corvus imparatus, Corvo de Tamaulipas

Corvus ossifragus, Peixe Corvo

Corvus hawaiiensis, Corvo havaiano

Corvus cryptoleucus, Chihuahuan Raven

Corvus corax, Corvo Comum

Alauda arvensis, Eurasian Skylark

Eremophila alpestris, Cotovia com chifres

Progne subis, Martin Roxo

Progne cryptoleuca, Martin cubano

Progne dominicensis, Martin Caribenho

Progne chalybea, Martin de peito cinza

Progne elegans, Martin do Sul

Progne tapera, Martin de peito castanho

Tachycineta bicolor, Andorinha

Tachycineta albilinea, Andorinha de mangue

Tachycineta thalassina, Andorinha Verde-Violeta

Tachycineta cyaneoviridis, Andorinha de Bahama

Stelgidopteryx serripennis, Andorinha de asa áspera do norte

Riparia riparia, Andorinha

Petrochelidon pyrrhonota, Andorinha do penhasco

Petrochelidon fulva, Andorinha da Caverna

Hirundo rustica, Andorinha de celeiro

Delichon urbicum, Casa-Martin Comum

Poecile carolinensis, Carolina Chickadee

Poecile atricapillus, Chickadee de chapéu preto

Poecile gambeli, Mountain Chickadee

Poecile sclateri, Chickadee mexicana

Poecile rufescens, Chickadee de dorso de castanha

Poecile hudsonicus, Boreal Chickadee

Poecile cinctus, Chickadee Grisalho

Baeolophus wollweberi, Titmouse Bridled

Baeolophus inornatus, Oak Titmouse

Baeolophus ridgwayi, Juniper Titmouse

Baeolophus bicolor, Titmouse Tufted

Baeolophus atricristatus, Chapim-de-crista-preta

Auriparus flaviceps, Verdin

Psaltriparus minimus, Bushtit

Sitta canadensis, Pica-pau-cinzento

Sitta carolinensis, Pica-pau-cinzento

Sitta pygmaea, Pygmy Nuthatch

Sitta pusilla, Pica-pau-cinzento

Certhia americana, Trepadeira marrom

Salpinctes obsoletus, Rock Wren

Catherpes mexicanus, Canyon Wren

Troglodytes aedon, Carriça doméstica

Troglodytes pacificus, Pacific Wren

Troglodytes hiemalis, Winter Wren

Cistothorus platensis, Sedge Wren

Cistothorus palustris, Marsh Wren

Thryothorus ludovicianus, Carolina Wren

Thryomanes bewickii, Wren de Bewick

Campylorhynchus brunneicapillus, Cactus Wren

Thryophilus sinaloa, Carriça de Sinaloa

Polioptila caerulea, Gnatcatcher azul-cinza

Polioptila californica, Apanhador de mosquitos californianos

Polioptila melanura, Gnatcatcher de cauda negra

Polioptila nigriceps, Apanhador de mosquito de bico preto

Cinclus mexicanus, American Dipper

Regulus satrapa, Reizinho de coroa dourada

Regulus calendula, Kinglet com coroa de rubi

Phylloscopus trochilus, Willow Warbler

Phylloscopus collybita, Chiffchaff comum

Phylloscopus sibilatrix, Toutinegra

Phylloscopus fuscatus, Dusky Warbler

Phylloscopus proregulus, Folha Toutinegra de Pallas

Phylloscopus inornatus, Toutinegra de sobrancelha amarela

Phylloscopus borealis, Toutinegra ártica

Phylloscopus examinandus, Toutinegra Kamchatka

Sylvia curruca, Menor Garganta Branca

Acrocephalus luscinius, Toutinegra Nightingale Reed

Acrocephalus hiwae, Toutinegra Saipan Reed

Acrocephalus nijoi, Aguiguan Reed Warbler

Acrocephalus yamashinae, Toutinegra Pagan Reed

Acrocephalus familiaris, Millerbird

Acrocephalus schoenobaenus, Sedge Warbler

Acrocephalus dumetorum, Toutinegra de Blyth

Locustella ochotensis, Gafanhoto-toutinegra de Middendorff

Locustella lanceolata, Toutinegra Lanceolada

Muscicapa griseisticta, Flycatcher estriado de cinza

Muscicapa dauurica, Flycatcher marrom asiático

Muscicapa striata, Spotted Flycatcher

Muscicapa sibirica, Flycatcher de lado escuro

Larvivora cyane, Siberian Blue Robin

Larvivora sibilans, Robin de cauda ruiva

Cyanecula svecica, Bluethroat

Calliope Calliope, Rubythroat siberiano

Tarsiger cyanurus, Blue-flanked Bluetail

Ficedula narcissina, Narcissus Flycatcher

Ficedula mugimaki, Mugimaki Flycatcher

Ficedula albicilla, Taiga Flycatcher

Phoenicurus phoenicurus, Redstart comum

Saxicola torquatus, Stonechat

Oenanthe oenanthe, Wheatear do norte

Monticola solitarius, Blue Rock-Thrush

Sialia sialis, Bluebird oriental

Sialia mexicana, Bluebird ocidental

Sialia currucoides, Pássaro azul da montanha

Myadestes citiesendi, Paciência de Townsend

Myadestes occidentalis, Paciência com costas castanhas

Myadestes myadestinus, K & ccedilma`o

Myadestes lanaiensis, Oloma`o

Myadestes palmeri, Puaiohi

Catharus aurantiirostris, Rouxinol-de-bico-laranja

Catharus mexicanus, Rouxinol-de-cabeça-preta

Catharus fuscescens, Veery

Catharus minimus, Tordo de bochechas grisalhas

Catharus bicknelli, Tordo de Bicknell

Catharus ustulatus, Tordo de Swainson

Catharus guttatus, Tordo eremita

Hylocichla mustelina, Tordo

Turdus obscurus, Tordo de sobrancelha

Turdus naumanni, Tordo escuro

Turdus grayi, Tordo cor de barro

Turdus assimilis, Tordo-de-garganta-branca

Turdus rufopalliatus, Robin de dorso ruivo

Turdus migratorius, American Robin

Turdus plumbeus, Tordo de Pernas Vermelhas

Ixoreus naevius, Thrush variado

Ridgwayia pinicola, Tordo Asteca

Melanotis caerulescens, Mockingbird azul

Melanoptila glabrirostris, Black Catbird

Dumetella carolinensis, Catbird Cinzento

Margarops fuscatus, Thrasher de olhos perolados

Toxostoma curvirostre, Thrasher de bico curvo

Toxostoma rufum, Brown Thrasher

Toxostoma longirostre, Thrasher de bico longo

Toxostoma bendirei, Bendire's Thrasher

Toxostoma redivivum, Califórnia Thrasher

Toxostoma lecontei, Thrasher de LeConte

Toxostoma crissale, Crissal Thrasher Start Impresso Página 61306

Oreoscoptes montanus, Sage Thrasher

Mimus gundlachii, Bahama Mockingbird

Poliglotos Mimus, Mockingbird do Norte

Agropsar philippensis, Starling de bochecha castanha

Spodiopsar cineraceus, Starling de bochechas brancas

Bombycilla garrulus, Waxwing da Boêmia

Bombycilla cedrorum, Cedar Waxwing

Ptiliogonys cinereus, Cinza-sedoso-flycatcher

Phainopepla nitens, Phainopepla

Peucedramus taeniatus, Olive Warbler

Prunella montanella, Siberian Accentor

Motacilla tschutschensis, Alvéola Amarela Oriental

Motacilla citreola, Citrine Wagtail

Motacilla cinerea, Alvéola Cinzenta

Motacilla alba, Alvéola Branca

Anthus trivialis, Tree Pipit

Anthus hodgsoni, Pipit de dorso de oliva

Anthus gustavi, Pechora Pipit

Anthus cervinus, Pipit de garganta vermelha

Anthus rubescens, Pipit americano

Anthus spragueii, Pipit de Sprague

Fringilla coelebs, Tentilhão comum

Fringilla montifringilla, Brambling

Euphonia musica, Eufonia das Antilhas

Coccothraustes vespertinus, Noite Grosbeak

Coccothraustes coccothraustes, Hawfinch

Carpodacus erythrinus, Rosefinch-comum

Melamprosops phaeosoma, Po`ouli

Oreomystis bairdi, `Akikiki

Paroreomyza maculata, O`ahu `Alauahio

Paroreomyza montana, Maui `Alauahio

Loxioides bailleui, Palila

Cantans Telespiza, Laysan Finch

Telespiza ultima, Nihoa Finch

Himatione fraithii, Laysan Honeycreeper

Himatione sanguinea, `Apapane

Xantofrias pseudonestadoras, Maui Parrotbill

Hemignathus hanapepe, Kauai Nukupu`u

Hemignathus lucidus, O`ahu Nukupu`u

Hemignathus affinis, Maui Nukupu`u

Hemignathus wilsoni, `Akiapola`au

Akialoa stejnegeri, Kauai `Akialoa

Akialoa ellisiana, O`ahu `Akialoa

Akialoa lanaiensis, Maui Nui `Akialoa

Chlorodrepanis virens, Hawaii `Amakihi

Chlorodrepanis flava, O`ahu `Amakihi

Chlorodrepanis stejnegeri, Kauai `Amakihi

Loxops mana, Havaí Creeper

Loxops caeruleirostris, `Akeke`e

Loxops wolstenholmei, O`ahu `Akepa

Loxops ochraceus, Maui `Akepa

Loxops coccineus, Hawaii `Akepa

Pinicola enucleator, Pine Grosbeak

Pyrrhula pyrrhula, Dom-fafe eurasiático

Leucosticte arctoa, Rosy-Finch asiático

Leucosticte tephrocotis, Rosy-Finch de coroa cinza

Leucosticte atrata, Finch Rosado Preto

Leucosticte australis, Rosy-Finch castanho

Haemorhous mexicanus, Finch doméstico

Haemorhous purpureus, Passarinho roxo

Haemorhous cassinii, Cassin's Finch

Chloris sinica, Verdilhão oriental

Acanthis flammea, Redpoll comum

Acanthis hornemanni, Hoary Redpoll

Loxia curvirostra, Red Crossbill

Loxia sinesciuris, Cassia Crossbill

Loxia leucoptera, Crossbill de asa branca

Spinus spinus, Eurasian Siskin

Spinus psaltria, Pintassilgo

Spinus lawrencei, Pintassilgo de Lawrence

Spinus tristis, Pintassilgo americano

Calcarius lapponicus, Lapland Longspur

Calcarius ornatus, Longspur de coleira castanha

Calcarius pictus, Longspur de Smith

Rhynchophanes mccownii, Longspur de McCown

Plectrophenax nivalis, Snow Bunting

Plectrophenax hyperboreus, McKay's Bunting

Emberiza leucocephalos, Pine Bunting

Emberiza crisófilas, Bunting de sobrancelha amarela

Emberiza pusilla, Pequeno Bunting

Emberiza rustica, Bunting Rústico

Emberiza elegans, Bunting de garganta amarela

Emberiza aureola, Bunting de peito amarelo

Emberiza variabilis, Bunting Cinzento

Emberiza pallasi, Pallas's Bunting

Emberiza schoeniclus, Reed Bunting

Arremonops rufivirgatus, Olive Sparrow

Pipilo chlorurus, Towhee de cauda verde

Pipilo maculatus, Towhee manchado

Pipilo erythrophthalmus, Towhee oriental

Aimophila ruficeps, Pardal-de-coroa-ruiva

Melozone fusca, Canyon Towhee

Melozone crissalis, Califórnia Towhee

Melozone aberti, Abert's Towhee

Peucaea carpalis, Pardal-voador-ruivo

Peucaea botterii, Pardal de botteri

Peucaea cassinii, Pardal de cassin

Peucaea aestivalis, Pardal de Bachman

Spizelloides arborea, American Tree Sparrow

Spizella passerina, Chipping Sparrow

Spizella pallida, Pardal cor de argila

Spizella breweri, Pardal de cerveja

Spizella pusilla, Pardalzinho

Spizella wortheni, Pardal de Worthen

Spizella atrogularis, Pardal de queixo preto

Pooecetes gramineus, Vesper Sparrow

Chondestes grammacus, Lark Sparrow

Amphispiza quinquestriata, Pardal de cinco listras

Amphispiza bilineata, Pardal-de-garganta-negra

Artemisiospiza nevadensis, Sagebrush Sparrow

Artemisiospiza belli, Pardal de sino

Calamospiza melanocorys, Lark Bunting

Passerculus sandwichensis, Savannah Sparrow

Ammodramus savannarum, Pardal gafanhoto

Centronyx bairdii, Pardal de baird

Centronyx henslowii, Pardal de Henslow

Ammospiza leconteii, Pardal LeConte

Ammospiza maritima, Pardal à beira-mar

Ammospiza nelsoni, Sparrow de Nelson

Ammospiza caudacuta, Pardal do Pântano Salgado

Passerella iliaca, Fox Sparrow

Melospiza melodia, Pardal da Canção

Melospiza lincolnii, Lincoln's Sparrow

Melospiza georgiana, Pardal do Pântano

Zonotrichia albicollis, Pardal-de-garganta-branca

Zonotrichia querula, Harris's Sparrow

Zonotrichia leucophrys, Pardal-de-coroa-branca

Zonotrichia atricapilla, Pardal-de-coroa-dourada

Junco hyemalis, Junco de olhos escuros

Junco phaeonotus, Junco de olhos amarelos

Nesospingus speculiferus, Tanager de Porto Rico

Spindalis zena, Spindalis Ocidental

Spindalis portoricensis, Spindalis porto-riquenho

Icteria virens, Chat de peito amarelo

Xanthocephalus xanthocephalus, Melro-de-cabeça-amarela

Dolichonyx oryzivorus, Bobolink

Sturnella magna, Meadowlark Oriental

Sturnella neglecta, Meadowlark Ocidental

Icterus portoricensis, Oriole porto-riquenho

Icterus wagleri, Oriole com ventania negra

Icterus spurius, Orchard Oriole

Icterus cucullatus, Oriole encapuzado

Icterus pustulatus, Oriole estriado

Icterus bullockii, Bullock's Oriole

Icterus gularis, Altamira Oriole

Icterus graduacauda, Oriole de Audubon

Icterus galbula, Baltimore Oriole

Icterus parisorum, Scott's Oriole

Agelaius phoeniceus, Melro-de-asa-vermelha

Agelaius tricolor, Melro tricolor

Agelaius humeralis, Melro de ombros castanhos

Agelaius xanthomus, Melro de ombros amarelos

Molothrus bonariensis, Shiny Cowbird

Molothrus aeneus, Cowbird bronzeado

Molothrus ater, Cowbird-de-cabeça-vermelha

Euphagus carolinus, Rusty Blackbird

Euphagus cyanocephalus, Melro de Cerveja

Quiscalus quiscula, Grackle Comum

Quiscalus major, Grackle com cauda de barco

Quiscalus mexicanus, Grackle de cauda grande

Quiscalus niger, Grande Grackle das Antilhas

Seiurus aurocapilla, Ovenbird

Helmitheros vermivorum, Toutinegra comedor de vermes

Parkesia motacilla, Louisiana Waterthrush

Parkesia noveboracensis, Waterthrush do norte

Vermivora bachmanii, Toutinegra de Bachman

Vermivora chrysoptera, Golden-winged Warbler Iniciar Impresso Página 61307

Vermivora cyanoptera, Toutinegra de asa azul

Mniotilta varia, Toutinegra preto e branco

Protonotaria citrea, Toutinegra protonotária

Limnothlypis swainsonii, Swainson's Warbler

Oreothlypis superciliosa, Toutinegra de peito crescente

Oreothlypis peregrina, Tennessee Warbler

Oreothlypis celata, Toutinegra de coroa laranja

Oreothlypis crissalis, Colima Warbler

Oreothlypis luciae, Lucy's Warbler

Oreothlypis ruficapilla, Toutinegra de Nashville

Oreothlypis virginiae, Toutinegra da Virgínia

Oporornis agilis, Toutinegra de Connecticut

Geothlypis poliocephala, Yellowthroat de coroa-cinzenta

Geothlypis tolmiei, Toutinegra de MacGillivray

Geothlypis philadelphia, Toutinegra de Luto

Geothlypis formosa, Kentucky Warbler

Geothlypis trichas, Yellowthroat comum

Setophaga angelae, Toutinegra das madeiras élficas

Setophaga citrina, Toutinegra Capuz

Setophaga ruticilla, Redstart americano

Setophaga kirtlandii, Toutinegra de Kirtland

Setophaga tigrina, Cape May Warbler

Setophaga cerulea, Toutinegra Cerulean

Setophaga americana, Parula do Norte

Setophaga pitiayumi, Parula Tropical

Magnólia Setophaga, Magnolia Warbler

Setophaga castanea, Toutinegra-peito-louro

Setophaga fusca, Blackburnian Warbler

Petéquias Setophaga, Toutinegra amarela

Setophaga pensylvanica, Toutinegra-do-lado-de-castanha

Setophaga striata, Blackpoll Warbler

Setophaga caerulescens, Toutinegra-de-garganta-negra

Setophaga palmarum, Palm Warbler

Setophaga pinus, Toutinegra de pinheiro

Setophaga coronata, Toutinegra amarela

Setophaga dominica, Toutinegra de garganta amarela

Setophaga discolor, Toutinegra da pradaria

Setophaga adelaidae, Toutinegra de Adelaide

Setophaga graciae, Toutinegra da graça

Setophaga nigrescens, Toutinegra cinza de garganta negra

Setophaga citiesendi, Toutinegra de Townsend

Setophaga occidentalis, Eremita Toutinegra

Setophaga chrysoparia, Toutinegra de bochecha dourada

Setophaga virens, Toutinegra Verde de garganta negra

Basileuterus lachrymosus, Toutinegra de cauda em leque

Basileuterus rufifrons, Toutinegra ruiva

Basileuterus culicivorus, Toutinegra de coroa dourada

Cardellina canadensis, Toutinegra canadense

Cardellina pusilla, Toutinegra de wilson

Rubrifrons Cardellina, Toutinegra vermelha

Myioborus pictus, Redstart Pintado

Myioborus miniatus, Redstart com garganta em ardósia

Piranga flava, Hepatic Tanager

Piranga rubra, Tanager de verão

Piranga olivacea, Scarlet Tanager

Piranga ludoviciana, Tanager Ocidental

Piranga bidentata, Tanager cor de fogo

Rhodothraupis celaeno, Grosbeak de coleira carmesim

Cardinalis cardinalis, Cardeal do Norte

Cardinalis sinuatus, Pirruloxia

Pheucticus chrysopeplus, Grosbeak amarelo

Pheucticus ludovicianus, Grosbeak de peito rosa

Pheucticus melanocephalus, Grosbeak de cabeça preta

Cyanocompsa parellina, Blue Bunting

Passerina caerulea, Grosbeak Azul

Passerina amoena, Lazuli Bunting

Passerina cyanea, Indigo Bunting

Passerina versicolor, Bunting variado

Passerina ciris, Bunting Pintado

Spiza americana, Dickcissel

Cyanerpes cyaneus, Honeycreeper de perna vermelha

Coereba flaveola, Bananaquit

Tiaris olivaceus, Grassquit de cara amarela

Tiaris bicolor, Grassquit de cara negra

Loxigilla portoricensis, Dom-fafe porto-riquenho

Sporophila morelleti, Comedor de sementes de Morelet

Vice-secretário adjunto principal & mdashWater and Science, exercendo a autoridade do secretário adjunto para Peixes e Vida Selvagem e Parques.


Assista o vídeo: Migração dos Gansos Canadenses (Janeiro 2022).