Em formação

Qual é o nome desse bug?


Encontrei este bug no meu jardim na Índia esta manhã.


Este é um besouro tartaruga (família Chrysomelidae (besouro da folha), subfamília Cassidinae). É muito parecido com o Besouro Tartaruga Verde Indiano Chiridopsis bipunctata. https://indiabiodiversity.org/observation/show/338651 Tenho quase certeza de que é do gênero Chiridopsis.


Lista das 7 principais doenças de protozoários | Microbiologia

Aqui está uma lista das sete principais doenças por protozoários: 1. Toxoplasma Gondii 2. Plasmodium 3. Balantidium Coli 4. Trichomonas Vaginalis 5. Giardia Lamblia 6. Trypanosoma 7. Entamoeba Histolytica.

Doença de protozoário nº 1. Toxoplasma Gondii:

Toxoplasma gondii é um esporozoário parasita intracelular (Fig. 24.1). Causa uma doença conhecida como toxoplasmose quando transmitida do solo ou de outros animais (por exemplo, gatos domésticos). A natureza exata e o ciclo de vida do T. gondii não são conhecidos (Fig. 24.2).

Os oócitos do parasita liberados das fezes (de gatos, cavalos, ovelhas, cabras, suínos infectados) são inalados ou engolfados por humanos ou outros animais. Os esporozoítos surgem como trofozoítos que podem se reproduzir nos tecidos de um novo hospedeiro.

Após a infecção em adultos, os sintomas podem ou não se desenvolver. No entanto, os sintomas menores se assemelham aos da gripe viral ou da mononucleose. O sintoma mais notável se desenvolve em mulheres grávidas, onde o parasita atravessa a placenta dentro de três meses de gravidez e se estabelece dentro do feto, resultando em infecção do útero.

Finalmente, resulta em anomalia congênita ou natimorto de uma criança. No entanto, se as mulheres forem infectadas em fases posteriores da gravidez, os sintomas ocorrem. Durante a gravidez, cerca de 1% das mulheres são infectadas e cerca de 25% dos bebês após o nascimento apresentam sintomas. Portanto, nesta fase as mulheres grávidas devem ter cuidado com os gatos. Os oócitos em seu material fecal devem ser verificados.

Além disso, quando o patógeno está fora do feto, ele migra para macrófagos intracelulares, se estabelece como parasita intracelular, fica centrado no sistema nervoso central e causa encefalite.

O exame de tecidos e T. gondii é útil para o diagnóstico de toxoplasmose. Os anticorpos podem ser detectados por ELISA e testes de fluorescência direta. Para controlar a infecção, drogas anti-protozoárias, e. a pirimetamina deve ser administrada em combinação com sulfonamidas.

Doença de protozoário # 2. Plasmodium:

O plasmódio é um parasita esporozoário formador de esporos comum em humanos que causa a malária. Até 1935, a malária era uma doença comum em humanos, criando um problema sério e causando mortes em massa. Mas com o desenvolvimento de programas de conscientização e pesquisa, medicamentos antimaláricos foram formulados.

Ainda em países africanos e asiáticos, incluindo a Índia, a malária não foi totalmente erradicada, apesar dos esforços de organizações governamentais. De acordo com estimativas recentes, cerca de 300 milhões de pessoas sofrem de malária e cerca de 2 a 4 milhões morrem a cada ano. Quatro espécies patogênicas de Plasmodium viz., P. vivax, P. falciparum, P. malariae e P. ovale foram reconhecidas. P. falciparum é a espécie mais perigosa, seguida por P. vivax.

Doença do protozoário # 3. Balantidium Coli:

Balantidium coli causa balantidíase ou disenteria balantidial. É o único protozoário patogênico ciliado e maior do intestino humano (Fig. 24.4). B. coli entra no intestino quando seus cistos presentes em alimentos ou água contaminados são ingeridos por humanos. Após a ingestão, o parasita atinge o cólon, a parede dos cistos dissolvidos e os trofozoítos são liberados.

Os trofozoítos se alimentam de bactérias, detritos fecais e tecido do cólon. Quando as fezes ficam desidratadas e passam pelo cólon, o parasita fica encistado, liberado pelas fezes e contamina a água e os alimentos. No cólon, o parasita permanece em duas formas, ou seja, forma vegetativa (trofozoíta) e forma de cisto.

Vive no intestino grosso e raramente invade o revestimento epitelial e causa cólicas abdominais, vômitos e perda de peso. Devido à invasão do epitélio, desenvolve-se úlcera nos intestinos grosso e delgado com disenteria total. Os cistos podem ser observados na observação microscópica das fezes. O ciclo de vida de B. coli é mostrado na Fig. 24.5.

Doença do protozoário # 4. Trichomonas Vaginalis:

Trichomonas vaginalis é um habitante da vagina e da uretra (Fig. 24.6). Ela cresce e aumenta seu número em relação à comunidade microbiana normal, quando a acidez da vagina é alterada do pH normal (3 8-4 4). A mudança no pH do fluido vaginal pode ser devido à perda da flora bacteriana normal produtora de ácido ou ao uso de anticoncepcionais orais.

Em tal situação, causa tricomoníase ou & # 8216trich & # 8217 em mulheres e raramente em homens. O T. vaginalis também é transmitido por relações sexuais ou instrumentos de exame contaminados, toalhas, cateteres, etc. Após a infecção, causa uma inflamação leve da vagina, colo do útero e volva. Ele processa a dissolução dos tecidos da superfície infectados. Conseqüentemente, sai um lodo amarelo ou branco-creme de odor fétido.

Este tipo de doença também é causado por Candida albicans e Gardnerella vaginalis. Nos homens, a próstata, a vesícula seminal e a uretra podem estar infectadas e, consequentemente, escoar um líquido branco. T. vaginalis é observado ao microscópio, retirando as amostras do fluido eliminado.

O parasita também é encontrado no sêmen ou na urina dos machos. O tratamento eficaz é o uso de metronidazol (flagil) oral e outras drogas antiprotozoárias.

Doença do protozoário # 5. Giardia Lamblia:

Giardia lamblia é um protozoário flagelado (8 flagelos) parasita de intes e shitina humanos (Fig.24.7) que causa a diarreia prolongada em humanos chamada giardíase. É uma doença transmitida pela água que ocorre em todo o mundo. O parasita é encontrado nas fezes humanas. Os flagelos de G. lamblia ajudam a se fixar firmemente na parede intestinal humana.

Não infecta a parede intestinal, mas aumenta seu número no lúmen e interfere na absorção dos alimentos. Forma-se um grande número de cistos que são liberados com as fezes. Esta doença persiste por cerca de uma semana. É caracterizada por mal-estar, náuseas, fraqueza, perda de peso e cólicas internas com diarreia gordurosa crónica. A consistência gordurosa das fezes é a principal característica da giardíase.

Cerca de 7% da população total é portadora desta doença. Além disso, os mamíferos selvagens, especialmente os castores, também liberam os cistos nas fezes que, por sua vez, contaminam a água. O protozoário encistado é resistente ao cloro. Portanto, a filtração do abastecimento de água torna-se muito importante para a eliminação dos cistos da água. O agente quimioterápico eficaz para a giardíase é o uso de metronidazol ou cloridrato de quinacrina.

Doença do protozoário # 6. Trypanosoma:

O tripanossoma é conhecido como haemo-flagelado porque infecta o sangue. A doença causada pelo parasita é conhecida como tripanossomíase ou doença do sono. O T. gambiense e o T. rhodosiense causam a doença do sono africana, enquanto o T. cruzi é responsável por alterações na doença, por exemplo, a tripanossomíase americana. Animais selvagens como roedores, gambás e tatus são reservatórios do T. cruzi.

Os vetores dos artrópodes são o barbeiro e o percevejo (Cimex lectularis). T. gambiense e T. rhodosiense são transmitidos pela Glossina, a mosca tsé-tsé. O besouro pica a pessoa perto dos lábios. Os tripanossomos crescem dentro do intestino dos insetos. Quando os insetos defecam durante a alimentação, o humano mordido frequentemente esfrega as fezes na ferida de outras abrasões de pele ou olhos.

O parasita passa por vários estágios do ciclo de vida no local da inoculação. No local de inoculação, isto é, comumente perto dos olhos, desenvolve-se uma lesão inchada. O patógeno infecta a linfa e é transportado pelo sangue para outra parte dos órgãos do corpo, como baço, fígado e coração.

Em resposta ao parasita, quando ocorre inflamação, ele danifica os macrófagos e o sistema nervoso central. A perda de tecido progride que leva à fraqueza, perda de apetite e apatia. Os pacientes geralmente entram em coma e finalmente morrem. Nesta fase, o controle da doença de chaga é muito difícil. O diagnóstico laboratorial pode ser feito pela observação do parasita no sangue (Fig. 24.8).

Doença do protozoário # 7. Entamoeba Histolytica:

O próprio nome do patógeno define a doença (ent = dentro, ameba = forma variada, histo = tecido, ruptura de lítica). Causa disenteria amebiática, ou seja, amebíase em todo o mundo. O parasita se espalha através da água ou alimentos contaminados. O nível normal de cloro não mata a ameba.

Os cistos não são afetados pelo ácido do estômago, isto é, HCl. Apenas as células vegetativas são destruídas. Na célula epitelial da parede do intestino grosso, as células vegetativas se multiplicam. Isso resulta em disenteria severa, onde as fezes contêm muco e sangue. O ciclo de vida de E. histolytica é dado na Fig. 24.9.

O patógeno se alimenta de hemácias e danifica o tecido do trato gastrointestinal. Durante os casos graves, as amebas podem entrar nos tecidos de órgãos vitais e causar abcesso no fígado, pulmões, parede intestinal, etc.

A parede intestinal fica perfurada. Se o abscesso for formado, ele será tratado cirurgicamente. O patógeno é identificado pela observação das amebas nas fezes e hemácias nos trofozoítos. Drogas quimioterápicas eficazes são metronidazol mais iodo-quinol.


Qual é o nome desse bug? - Biologia

A cochonilha da papaia, Paracoccus marginatus Williams e Granara de Willink, é um pequeno hemíptero que ataca diversos gêneros de plantas hospedeiras, incluindo frutas tropicais e ornamentais de importância econômica. A cochonilha da papaia foi descoberta nos condados de Manatee e Palm Beach na Flórida em 1998 e subsequentemente se espalhou rapidamente para vários outros condados da Flórida. Ela potencialmente representa uma ameaça de vários milhões de dólares para vários produtos agrícolas na Flórida, bem como em outros estados, se não for controlada. O controle biológico foi identificado como um componente chave em uma estratégia de manejo para a cochonilha da papaia, e um programa clássico de controle biológico foi iniciado como um esforço conjunto entre o Departamento de Agricultura dos Estados Unidos, Departamento de Agricultura de Porto Rico e Ministério da Agricultura da República Dominicana em 1999.

Figura 1. Adultos e sacos de ovos de cochonilha da papaia, Paracoccus marginatus Williams e Granara de Willink. Fotografia de Dale Meyerdirk, Instituto Nacional de Controle Biológico.

Distribuição (voltar ao topo)

Acredita-se que a cochonilha do mamão seja nativa do México e / ou da América Central. Nunca ganhou o status de praga grave ali, provavelmente devido à presença de um complexo inimigo natural endêmico. Os primeiros espécimes foram coletados no México em 1955. A cochonilha do mamão foi descrita em 1992 na região Neotropical de Belize, Costa Rica, Guatemala e México (Williams e Granara de Willink 1992). Quando a cochonilha do mamão invadiu a região do Caribe, tornou-se uma praga lá desde 1994 e foi registrada nos seguintes 14 países caribenhos: St. Martin, Guadalupe, St. Barthelemy, Antigua, Bahamas, Ilhas Virgens Britânicas, Cuba, República Dominicana, Haiti, Porto Rico, Montserrat, Nevis, St. Kitts e as Ilhas Virgens dos EUA. Mais recentemente, espécimes apareceram nas regiões do Pacífico de Guam e na República de Palau.

A cochonilha da papaia foi descoberta em Bradenton, Flórida, em 1998, em hibiscos. Em janeiro de 2002, ele foi coletado 80 vezes em 18 espécies de plantas diferentes em 30 cidades nos condados de Alachua, Brevard, Broward, Collier, Dade, Hillsborough, Manatee, Martin, Monroe, Palm Beach, Pinellas, Polk, Sarasota e Volusia.

Espécimes também foram interceptados no Texas e na Califórnia, e espera-se que a cochonilha da papaia possa se estabelecer rapidamente em toda a Flórida e através dos estados do Golfo até a Califórnia. É possível que certas culturas de estufa possam estar em risco em áreas ao norte como Delaware, New Jersey e Maryland. Já foi identificado em plantas de mamão no Conservatório Garfield em Chicago, Illinois, no final de agosto de 2001. Um programa de controle biológico foi implementado em dezembro de 2001 com resultados muito bem-sucedidos.

Figura 2. Distribuição da cochonilha do mamão, Paracoccus marginatus Williams e Granara de Willink, em maio de 2003. Desenho de Dale Meyerdirk, National Biological Control Institute.

Descrição (voltar ao topo)

Infestações de cochonilhas em mamão são tipicamente observadas como aglomerados de massas semelhantes a algodão na parte aérea das plantas. A fêmea adulta é amarela e está coberta por uma capa cerosa branca. As fêmeas adultas têm aproximadamente 2,2 mm de comprimento (1/16 polegada) e 1,4 mm de largura. Uma série de filamentos caudais cerosos curtos com menos de 1/4 do comprimento do corpo existe em torno da margem.

Figura 3. Infestação de folhas de mamão pela cochonilha da papaia, Paracoccus marginatus Williams e Granara de Willink. Fotografia de Dale Meyerdirk, Instituto Nacional de Controle Biológico.

Figura 4. Cochonilha-da-papaia, fêmea adulta, Paracoccus marginatus Williams e Granara de Willink. Desenho de D. Miller e G. Miller, USDA.

Os ovos são amarelo-esverdeados e são colocados em uma bolsa de ovos que tem três a quatro vezes o comprimento do corpo e é totalmente coberta com cera branca. O ovisac é desenvolvido ventralmente na fêmea adulta.

Os machos adultos tendem a ser rosados, especialmente durante os estágios pré-pupal e pupal, mas aparecem amarelos no primeiro e no segundo instar. Os machos adultos têm aproximadamente 1,0 mm de comprimento, com um corpo oval alongado que é mais largo no tórax (0,3 mm). Os machos adultos têm antenas de dez segmentos, um edeago distinto, aglomerados de poros laterais, tórax e cabeça fortemente esclerotizados e asas bem desenvolvidas.

Figura 5. Cochonilha-da-papaia, macho adulto, Paracoccus marginatus Williams e Granara de Willink. Desenho de D. Miller e G. Miller, USDA.

Miller e Miller (2002) fornecem uma descrição completa de todos os ínstares de ambos os sexos da cochonilha do mamão, bem como uma descrição completa dos caracteres usados ​​para distinguir a cochonilha do mamão de outras espécies intimamente relacionadas. Duas características que são importantes para distinguir P. marginatus fêmeas adultas de todas as outras espécies de Paracoccus são: a presença de ductos tubulares orais, restritos dorsalmente às áreas marginais do corpo, e a ausência de poros nas tíbias posteriores. Os machos adultos podem ser distinguidos de outras espécies relacionadas pela presença de cerdas carnudas robustas nas antenas e a ausência de cerdas carnudas nas pernas.

A cochonilha da papaia pode ser facilmente distinguida da Maconellicoccus marginatus (Verde), a cochonilha-de-rosa do hibisco, porque as fêmeas da cochonilha-do-mamoeiro têm oito segmentos antenais, em contraste com nove na última espécie.

Figura 6. Vários encenados no ciclo de vida dos cochonilhas-de-rosa do hibisco, Maconellicoccus hirsutus (Verde). Fotografia de Dale Meyerdirk, Instituto Nacional de Controle Biológico.

Espécimes de cochonilhas de mamão tornam-se preto-azulados quando colocados em álcool, como é característico de outros membros deste gênero.

Biologia (voltar ao topo)

Faltam detalhes sobre a biologia e o ciclo de vida da cochonilha do mamão. Em geral, os cochonilhas têm aparelhos bucais perfurantes e se alimentam inserindo seus aparelhos bucais no tecido da planta e sugando a seiva. Mealybugs são mais ativos em climas quentes e secos. As fêmeas não têm asas e se movem rastejando por curtas distâncias ou sendo sopradas pelas correntes de ar. As fêmeas geralmente colocam de 100 a 600 ovos em um ovisac, embora algumas espécies de cochonilhas dêem à luz filhotes vivos. A postura geralmente ocorre durante o período de uma a duas semanas. A eclosão dos ovos ocorre em cerca de 10 dias, e as ninfas, ou rastejadores, começam a procurar ativamente por locais de alimentação. Rastreadores fêmeas têm quatro ínstares, com uma geração que leva aproximadamente um mês para se completar, dependendo da temperatura. Os machos têm cinco instares, o quarto dos quais é produzido em um casulo e conhecido como pupa. O quinto instar do macho é a única forma alada da espécie capaz de voar. As fêmeas adultas atraem os machos com feromônios sexuais. Em condições de estufa, a reprodução ocorre durante todo o ano e, em certas espécies, pode ocorrer sem fertilização.

Plantas hospedeiras (voltar ao topo)

A cochonilha da papaia é polífaga e foi registrada em plantas hospedeiras & gt55 em mais de 25 gêneros. Plantas hospedeiras economicamente importantes da cochonilha da papaia incluem mamão, hibisco, abacate, frutas cítricas, algodão, tomate, berinjela, pimentão, feijão e ervilha, batata doce, manga, cereja e romã.

Danos (voltar ao topo)

A cochonilha da papaia se alimenta da seiva das plantas inserindo seus estiletes na epiderme da folha, bem como na fruta e no caule. Ao fazer isso, ele injeta uma substância tóxica nas folhas. O resultado é clorose, retardo de crescimento das plantas, deformação das folhas, queda precoce de folhas e frutos, um forte acúmulo de melada e morte. Infestações pesadas são capazes de tornar as frutas não comestíveis devido ao acúmulo de cera branca espessa. A cochonilha da papaia só foi registrada se alimentando de áreas da planta hospedeira que estão acima do solo, a saber, folhas e frutos.

Figura 7. Infestação do mamão e danos causados ​​pela cochonilha da papaia, Paracoccus marginatus Williams e Granara de Willink. Fotografia de Dale Meyerdirk, Instituto Nacional de Controle Biológico.

Figura 8. Deformação da folha do mamão causada pela cochonilha do mamão, Paracoccus marginatus Williams e Granara de Willink. Fotografia de Dale Meyerdirk, Instituto Nacional de Controle Biológico.

Gestão (voltar ao topo)

Controle químico. Vários controles químicos estão disponíveis para controlar a cochonilha, embora nenhum esteja atualmente registrado especificamente para o controle da cochonilha. Os ingredientes ativos em formulações de pesticidas registradas incluem acefato, carbaril, clorpirifós, diazinon, dimetoato, malatião e óleos minerais brancos. Normalmente, o dobro da dose normal é aplicado no tratamento de cochonilhas, porque cochonilhas são protegidas por sacos cerosos e grossos de algodão, e muitas vezes estão escondidos dentro de folhas e botões danificados. Assim, os controles químicos são apenas parcialmente eficazes e requerem múltiplas aplicações. Além disso, problemas com resistência a inseticidas e efeitos indesejados sobre os inimigos naturais tornam o controle químico uma opção de controle menos desejável para combater a cochonilha do mamão.

Controle biológico. Inimigos naturais da cochonilha da papaia incluem o destruidor de cochonilhas comercialmente disponível (Cryptolaemus montrouzieri), joaninhas, crisopídeos e moscas flutuantes, todos predadores generalistas que têm um impacto potencial nas populações de cochonilhas. Além de predadores, vários parasitóides podem atacar a cochonilha da papaia.

Em 1999, o Serviço de Inspeção de Saúde Vegetal e Animal do USDA (APHIS) e o Serviço de Pesquisa Agrícola do USDA (ARS) iniciaram um programa clássico de controle biológico para a cochonilha do mamão. Quatro gêneros de vespas endoparasitóides encyrtid específicas para cochonilhas foram coletados no México por pesquisadores do USDA e ARS e cooperadores mexicanos como potenciais agentes de controle biológico: Acerophagus papayae (Noyes e Schauff), Anagyrus loecki (Noyes e Menezes), Anagyrus californicus Compere, e Pseudaphycus sp. (USDA 1999, 2000 Meyerdirk e Kauffman 2001). Uma quinta espécie coletada foi posteriormente criada e identificada como Pseudleptomastix mexicana (Noyes e Schauff 2003).

Todas as quatro espécies foram rastreadas nas instalações de quarentena do USDA / ARS em Newark, Delaware e as avaliações ambientais foram concluídas (USDA-APHIS 1999, 2000, 2002). Os espécimes foram então enviados para Porto Rico, onde foram cultivados e criados em massa para liberação experimental em Porto Rico e na República Dominicana. As primeiras liberações desses quatro parasitóides foram feitas na Flórida em outubro de 2000.

Até o momento, o APHIS descobriu que a liberação dos quatro gêneros de vespas parasitóides trouxe uma redução de 99,7% na densidade das populações de cochonilhas em locais de pesquisa na República Dominicana, e uma redução de 97% em locais de pesquisa em Porto Rico, com parasitismo níveis entre 35,5% e 58,3% (Kauffman et al. 2001, Meyerdirk e Kauffman 2001). Todas as quatro espécies de parasitóides foram observadas atacando segundo e terceiro instares de P. marginatus. Contudo, Acerófago sp. emergiu como a espécie parasitóide dominante em Porto Rico e na República Dominicana (Meyerdirk e Kauffman 2001). O resultado da liberação dos quatro parasitóides na Flórida ainda não foi determinado em março de 2003.

Referências selecionadas (voltar ao topo)

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Web Design: Don Wasik, Jane Medley
Número da publicação: EENY-302
Data de Publicação: agosto de 2003. Última revisão: setembro de 2006. Revisado: abril de 2018.


Nomes científicos e comuns

Mesmo que haja apenas um nome científico, pode haver muitos outros nomes para uma planta ou animal. Esses nomes comuns geralmente são usados ​​em uma parte específica do mundo ou em diferentes línguas. No caso da árvore paloverde amarela encontrada no sudoeste, ela tem vários nomes: paloverde de sopé, paloverde de folha pequena, paloverde de encosta e feijão-boi de folha pequena.

Cercidium microphyllum tem muitos nomes comuns.

Outras plantas podem ter até seis ou mais nomes comuns. Se você quiser saber se você e outra pessoa estão falando sobre a mesma árvore, você precisa usar o nome científico, Cercidium microphyllum. Quando você escreve o nome, você usa itálico letras para mostrar que você está usando o nome científico. “Cercidium”Vem de uma palavra grega que significa“ uma árvore da família do feijão ”e“microfilo, ”Também grego, significa que a árvore tem folhas minúsculas. Alguns nomes científicos usam palavras gregas, muitos outros usam palavras latinas.


Crustáceos comuns: percevejos e sowbugs

Muitas vezes, as descobertas mais surpreendentes podem ser feitas no próprio quintal. Tomemos, por exemplo, percevejos e sowbugs. Essas são as pequenas criaturas cinzentas “blindadas” que você normalmente encontra ao virar uma pedra, um pedaço de madeira podre ou uma pilha de folhas em decomposição, especialmente em áreas úmidas. Quando revelados, você pode tê-los visto se enrolando em uma pequena bola ou fugindo em vários pares de pernas. Embora vivam em terra e possam parecer insetos apenas com uma olhada superficial, esses animais são, na verdade, crustáceos e têm guelras!

Um bicho-papão (gênero Armadillidium), que é um pequeno crustáceo terrestre (com cerca de & frac34 polegadas de comprimento) que pode ser encontrado em praticamente qualquer lugar. (Crédito da imagem: Alvesgaspar)

Quando pensamos em crustáceos, os tipos aquáticos provavelmente vêm à mente primeiro - camarão, lagosta e caranguejo. Mas os percevejos e os percevejos também são crustáceos. Isso significa que eles estão mais intimamente relacionados com lagostas e camarões do que com abelhas e formigas. (Os crustáceos pertencem a um grupo maior de animais, os artrópodes, que também incluem insetos, aranhas e outros.) Os percevejos (que podem rolar como uma bola) e os percevejos (que não podem) tiveram vidas muito bem-sucedidas na terra, como existem agora cerca de 4.000 espécies dessas criaturas, vivendo em qualquer lugar, de praias a desertos.

O membro deste grupo que encontramos com mais frequência é o comprimido comum ou rechonchudo (Aramadillidium vulgare) Costumava viver apenas no sul da Europa, mas foi espalhado por toda a Europa e depois para a América do Norte pelas pessoas. Sem nenhuma espécie nativa na América do Norte, floresceu aqui! Aonde quer que vão, essas criaturinhas desempenham um papel grande e importante - comem material em decomposição, como plantas e até animais mortos, e por meio desse processo ajudam a reciclar os nutrientes do solo.

Então, se você está procurando por um animal de estimação de curta duração, você pode considerar um percevejo ou sowbug - eles ocupam pouco espaço, não comem comida cara e vivem até cerca de três anos! E, se olharmos de perto, é possível encontrar diferentes padrões de coloração nesses minúsculos crustáceos, tornando essa uma possível característica de distinção e interesse.


Percevejo

Nossos editores irão revisar o que você enviou e determinar se o artigo deve ser revisado.

Percevejo, qualquer um dos crustáceos terrestres das famílias Armadillididae e Armadillidae (ordem Isopoda). Quando perturbado, o percevejo se enrola em uma pequena bola. Como o bug da porca relacionado (q.v.), às vezes é chamado de piolho de madeira. Para moluscos também conhecidos como percevejos, Vejo quíton.

O bug comum da pílula Armadillidium vulgare (família Armadillididae) tem cerca de 17 milímetros (0,7 polegada) de comprimento. O corpo cinza, com seus segmentos em forma de placa, lembra um pouco um tatu em miniatura, um mamífero de armadura que também se enrola em uma bola quando é perturbado. A. vulgare ocorre em locais secos e ensolarados, em serapilheira e nas bordas de áreas arborizadas. Originalmente encontrado na Europa, agora ocorre em todo o mundo. A. nasatum, nativa do norte da Europa, foi introduzida na América do Norte. Armadillo officinalis (família Armadillidae), que atinge comprimentos de 19 milímetros (0,75 polegada), é nativa do sul da Europa.

Este artigo foi revisado e atualizado mais recentemente por Kara Rogers, Editora Sênior.


Biologia e manejo do percevejo verde

O percevejo verde é uma das espécies nativas de percevejo mais nocivas dos Estados Unidos. Percevejos que se alimentam de algodão, soja, tomate, pêssego e outras safras podem resultar em danos cosméticos, bem como em qualidade e rendimento reduzidos.

Um novo artigo no Jornal de manejo integrado de pragas, "Biologia e gerenciamento do inseto verde fedorento", oferece aos agricultores e produtores conselhos sobre como lidar com essa praga de inseto.

De acordo com os autores, os percevejos tornaram-se um grande desafio para os sistemas integrados de manejo de pragas porque as opções de controle são basicamente limitadas à aplicação de inseticidas de amplo espectro, como organofosforados, carbamatos e piretróides. No entanto, os neonicotinóides são geralmente eficazes para o controle desse percevejo e podem ser menos prejudiciais para seus inimigos naturais.

Outras opções para o manejo de percevejos que estão sendo exploradas incluem o uso de culturas armadilha e o aumento das populações de parasitóides benéficos. As opções culturais, incluindo cultivo com armadilhas e plantio de variedades resistentes, foram documentadas como diminuindo os danos à lavoura causados ​​por percevejos. Além disso, existem vários inimigos naturais que reduzem o número da população.

Os autores continuam a descrever o ciclo de vida do percevejo verde, biologia sazonal, plantas hospedeiras e opções de manejo, como captura de feromônios, controle químico, controle cultural e controle biológico.


Insetos e biologia

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Backyard Bug Bonanza

Os insetos são o grupo de seres vivos mais diverso do mundo, com mais de 950.000 espécies identificadas e contando. Você pode pensar que precisa viajar para a Amazônia para estudar insetos, mas eles podem ser encontrados em praticamente todos os lugares - inclusive onde você estiver.

Ferramentas e Materiais

  • Rede anti-insetos (disponível online e em lojas de artigos esportivos)
  • Papel e lápis (para coleta de dados)
  • Opcional: saco plástico grande e transparente

Conjunto

Para fazer e observar

Escolha dois locais diferentes em sua vizinhança onde você acha que pode encontrar insetos, como um campo de esportes, um jardim ou uma cerca viva. Ao passar pelo primeiro local, varra a rede 10 vezes. Then use your hands to close the top of the net to trap what you’ve caught. If a bee or wasp ends up in the net, set the net down and allow it to escape before continuing.

When you’re done, survey the insects you’ve caught by slowly opening the net, bit by bit, recording the different types as they’re revealed. You don’t need to identify them by species or name—a simple qualitative description that allows you to distinguish between varieties will suffice (for example, “tiny black fly”).

As you work, be sure to keep one hand around the opening of the net to prevent the rest of the insects from escaping. If you’re uncomfortable holding onto the net while collecting data, you might want to transfer its contents into a large, clear plastic bag for analysis. This is also helpful if you find that your local insect varieties tend to fly or jump out of the net quickly.

Once data collection is complete, invert the plastic bag to return the insects to their habitat. Empty plant debris from the net before heading to the second location, and repeat the same procedure there.

Which area resulted in a longer list of insect varieties? Por que você acha que é isso?

What's Going On?

Biodiversity—the variety of living things found on Earth—can be measured at different scales: within a species (genetic variation), between species (the focus of this Snack), and between ecosystems. Environments that contain many different species are said to have high biodiversity, while environments that contain few varieties of species are said to have low biodiversity. When one part of a habitat (such as an area’s plant life) is highly diverse, the rest of the organisms in the habitat (such as that area’s insects) will also show greater diversity.

Different insect species can occupy and fill different niches within the same area. A niche is the physical environment to which an organism is best adapted, or the role that organism plays within the location. For example, a species that depends on the leafy part of a plant for its best source of food occupies a different niche from a species that relies on the nectar from the plant’s flowers. That’s why you may see a greater diversity of insects in areas such as vegetable gardens and creek banks, where many different niches can be filled, each providing the specific resources preferred by a different insect species.

Areas with monocultures, on the other hand, such as lawns and cornfields, tend to have fewer varieties of insects because they offer so few niches. When one species inhabits a grassy lawn, for example, it can easily overtake the whole area, taking advantage of a sustained food supply that’s all in one place. The result is an area that’s high in biomass, but low in biodiversity. A more diverse area results in a more diverse community of insects.

Going Further

Try to vary aspects of your data collection. For example, how might the weather or the time of day affect your results? How about areas in the shade or in the sun?

Note that this Snack can also serve as a starting point for a discussion of the consequences of modern agricultural practices. Human-made monocultures, such as corn and wheat fields, make harvesting more efficient, but often require the use of insecticides to keep insect populations from damaging plants and reducing crop yields. This discussion could extend to the challenges of low genetic diversity, the overuse of pesticides, and the development of genetically modified organisms.

Teaching Tips

Before beginning this activity, students may need to be briefed on how insects are different from other arthropods, such as arachnids or worms. It may also be helpful to discuss the difference between biomass (the total mass of organisms in an area) and biodiversity (the variety of organisms found in an area). Finding hundreds of tiny black flies in one area, for instance, means you’ve found high biomass, but low biodiversity.

This Snack works better at certain times of the year and can be impacted by weather events, such as drought or storms. This could give students an opportunity to do a long-term study of how biodiversity changes over time. If a long-term project is beyond the scope of your class and you’ll only do this once, then springtime often gives the best results.

Recursos

Pollan, Michael. The Botany of Desire: A Plant’s-Eye View of the World. Random House, 2001, Chapter 4 (“The Potato”) contains good background information regarding monocultures and the consequences of trying to control nature.

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Critter Comparison

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Bean-Counter Evolution

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Referências

Apêndice

Pill Bug Magnetoreception Lab: Handout NAME___________________________

Additional materials and procedures can be found through the link below:

Magnetoreception: Potential Mechanisms and Uses of the Magnetic Sense

Numerous behavioral experiments have shown that a variety of organisms, from bacteria to mammals, can sense Earth's magnetic field. This ability, called magnetoreception, is similar to how humans use a compass to figure out the direction they are moving. In addition to identifying a direction, some animals like sea turtles, can actually sense changes in the magnetic field strength and angle relative to the Earth's surface to navigate to specific locations. This is like having a natural, built-in GPS sensor! So, how do these animals sense the magnetic field? Unfortunately, the mechanism is not well known, but scientists have come up with a few ideas that are supported by their data: (1) a magnetic particle-based mechanism and (2) a chemical mechanism.

The magnetic particle mechanism predicts that animals have tiny crystals of magnetite, a naturally occurring mineral, in contact with various cells. These magnetite crystals act like little compass needles, so when they attempt to turn or rotate in response to Earth's magnetic field, they mechanically stress sensory cells, like hair cells or stretch receptors, or open and close ion channels in neurons to initiate a signal. The chemical mechanism is a bit more complicated. Certain proteins, like the visual pigment cryptochrome, have a free pair of electrons, or radical pair, after exposure to light. Each electron in this pair is spinning in a particular direction, so taken together the two electrons can be spinning the same direction (parallel) or different directions (antiparallel) – with different chemical reactivity in each state. Because the amount of time spent spinning either parallel or antiparallel depends on the angle of the ambient magnetic field, different chemical reactions can occur as the magnetic field changes. These reactions are thought to occur in the eyes of many migrating bird species.

How do scientists study magnetoreception in animals? The most common method used is an orientation experiment. The goal of an orientation experiment is to identify the direction an individual wants to move. Hopefully, by controlling all the possible cues an animal can use to move and manipulating only the magnetic field, scientists can determine the role of the magnetic field. Scientists often compare the directions of control individuals with individuals exposed to some kind of magnetic field treatment. In today's laboratory, we are going to expose pill bugs (a terrestrial isopod crustacean) to a magnetic pulse to see if the pulse affects their movement. To date, it is unknown whether pill bugs can sense a magnetic field, so your experiments will provide some of the first data to answer this question! You can read more about pill bugs, the experimental procedure, and data analysis at the link above. The worksheet below should help guide your thinking along the way and includes space for recording your data. After completing the lab, please submit your answers to the questions below. Divirta-se!

Briefly describe each of the two proposed mechanisms of magnetoreception:

Describe two ways in which animals might use their magnetic sense:

Circular vs. Linear Statistics

Examine the orientation data displayed below, along with the angles of orientation:


Assista o vídeo: TESTANDO BUGS NO MARIO!! (Dezembro 2021).