Em formação

Identifique esta mariposa de Bangladesh


Desculpe pela má resolução da imagem. Esta foto foi tirada do campus da JU, Savar.


Acho que encontrei a identificação. É uma lagartixa da família ricaniidae. Provavelmente Ricanula stigmatica.

Fonte da imagem: https://en.m.wikipedia.org/wiki/Ricanula_stigmatica


15 principais lagartas venenosas do mundo

Lagartas venenosas: Como a primavera chega às florestas e clareiras, e tudo é pintado de verde, podemos aguardar ansiosamente a estação de floração. O agradável aroma de flores traz borboletas de cores vivas aos prados e jardins. No entanto, há uma desvantagem nisso: as borboletas não podem aparecer sem passar do estágio de lagarta.

Essas criaturas semelhantes a vermes são, de certa forma, & # 8220crianças borboletas& # 8220. Eles existem para se alimentar das folhas, crescer, fazer casulos e fornecer o suficiente energia para uma futura borboleta. As lagartas são geralmente não muito querido.

Afinal, eles comem folhas & # 8211 e, portanto, destroem plantas. No entanto, algumas lagartas não são apenas um incômodo. Eles podem ser bonitos perigoso para quem tenta tocá-los ou comê-los.

Jardineiros podem odiar lagartas porque destroem árvores frutíferas e arbustos, mas muitos animais adoro comê-los. As lagartas devem ser cautelosas com vários predadores. Eles empregam várias estratégias de proteção para evitar serem comidos!

Por exemplo, sua coloração pode permitir que se escondam à vista de todos através da camuflagem. Diferentes espécies formam colônias. No entanto, discutiremos agora uma terceira estratégia de sobrevivência, muito mais ousada.

Várias lagartas desenvolvem guerra química & # 8211 elas se tornam venenoso. Além disso, alguns desenvolveram venenos que podem literalmente matar um ser humano.


Identifique esta mariposa de Bangladesh - Biologia

A mariposa cacto, Cactoblastis cactorum Berg (Lepidoptera: Pyralidae) chegou em 1989 nas Florida Keys, e esta espécie invasora tornou-se uma séria ameaça à diversidade e abundância de Opuntia cacto na América do Norte (Zimmermann et al. 2001, Stiling 2002). A propagação desta mariposa levanta as seguintes preocupações principais: 1) dano potencial a espécies raras de opuntioides (pera espinhosa e membros de cactos relacionados da subfamília Opuntioideae: Cactaceae), 2) o perigo de opuntioides selvagens no sudoeste dos Estados Unidos e México e consequentes efeitos em ecossistemas desérticos inteiros (Perez-Sandi 2001, Soberon et al. 2001, Vigueras e Portillo 2001, Zimmermann et al. 2001), e 3) dificuldades econômicas para as comunidades no México que cultivam e vendem Opuntia (Soberon et al. 2001, Vigueras e Portillo 2001).

Figura 1. Mariposa cacto adulta, Cactoblastis cactorum (Berg). Fotografia de D. Habeck e F. Bennett, Universidade da Flórida.

Distribuição (voltar ao topo)

Um nativo da América do Sul, Cactoblastis cactorum foi introduzido da Argentina para a Austrália em 1925 para controlar várias espécies da América do Norte e do Sul Opuntia. O esforço foi muito bem-sucedido. Mais tarde, a mariposa do cacto foi introduzida no Havaí, na Índia, na África do Sul e em algumas ilhas do Caribe com o mesmo propósito. No início de 2009, a mariposa cacto foi encontrada e rapidamente erradicada em Mujeres, México, a cerca de 10 milhas da costa de Cancún (LSU 2009).

Cactoblastis cactorus foi introduzido várias vezes na Flórida (Marisco et al. 2011). Com base em análises genéticas, as populações existentes provavelmente foram fundadas a partir das populações introduzidas de mariposas do Caribe (Marisco et al. 2011).

O alcance da mariposa continua a se expandir ao longo das costas do Atlântico e do Golfo dos EUA. Ele agora é encontrado no extremo norte, em Charleston, na Carolina do Sul, e no extremo oeste, na Louisiana (LSU, 2009). Cactoblastis cactorum espalha-se mais rapidamente ao longo da costa, mas a expansão para o interior está ocorrendo. A mariposa foi encontrada em Loxahatchee, Palm County, Flórida, em junho de 1992, pelo Departamento de Agricultura e Serviços ao Consumidor da Flórida, a 24 km do Oceano Atlântico. Em 2011, Cactoblastis cactorum foi encontrado na Estação Biológica Ordway-Swisher em Putnam County, Flórida (C.W. Miller).

Por favor ajude! Gostaríamos de ouvir de você se souber de infestações em sua área ou se souber a localização de Opuntia cactos que poderíamos verificar, principalmente se os locais estão no interior ou na frente da borda de ataque. Entre em contato com: Dr. Stephen Hight, telefone: 850-656-9870 x 18.

Descrição (voltar ao topo)

A envergadura dos adultos varia de 22 mm a 35 mm. As asas anteriores são marrom-acinzentadas, mas mais brancas em direção à margem costal. Linhas antimediais e subterminais pretas distintas estão presentes. As asas posteriores são brancas com algum cinza terminal. Os adultos da subfamília Phycitinae freqüentemente parecem muito semelhantes uns aos outros e não são identificados facilmente porque as escamas das amostras geralmente são removidas, no entanto, a genitália pode fornecer uma identificação positiva (Heinrich 1956). As larvas de Cactoblastis cactorum são vermelho-alaranjado brilhantes com grandes manchas escuras formando faixas transversais. As larvas maduras têm 25 mm a 30 mm de comprimento.

Figura 2. Larvas da mariposa cacto, Cactoblastis cactorum (Berg). Fotografia: Christine Miller, University of Florida.

Chave para larvas de ficitina da Flórida associadas com Opuntia spp .: (Voltar ao topo)

1. Larvas gregárias, avermelhadas ou roxo-azuladas, alimentando-se em cladódios (almofadas). . . . . 2
1'. Larvas solitárias, não avermelhadas ou roxas-azuladas, alimentando-se nos cladódios. . . . . 3

2. Larvas vermelho-alaranjado com manchas escuras conspícuas formando faixas transversais. . . . .Cactoblastis cactorum (Berg)
2'. Larvas de cor branca suja a roxa azulada com manchas escuras menores que não formam bandas transversais. . . . . Melitara prodenialis (Andador)

3. Larvas de cor branca suja, sem manchas. . . . . Rumatha glaucatella (Hulst)
3'. Larvas escuras. . . . . 4

4. As larvas alimentam-se sozinhas em botões ou frutos. . . . . Ozamia lucidalis (Andador)
4'. As larvas alimentam-se isoladamente de tecido morto, mas na maioria das vezes alimentam-se de cóccidos. . . . . Laetilia coccidivora (J.H. Comstock)

Biologia (voltar ao topo)

A fêmea Cactoblastis cactorum põe seus ovos na forma de uma corrente, o primeiro ovo é preso ao final de uma espinha ou espícula e os ovos seguintes (em média 75 e até 140 ou mais) são empilhados como uma moeda para formar uma vara de ovo. Na eclosão, as larvas rastejam da haste do ovo para o cladódio ou almofada e se enterram nele, geralmente a alguns centímetros do local da oviposição. As larvas alimentam-se gregariamente, movendo-se de um cladódio para outro à medida que o suprimento de comida se esgota. Durante a alimentação, o excremento é empurrado para fora da almofada e forma uma pilha perceptível. Larvas totalmente desenvolvidas geralmente deixam a planta e giram casulos brancos na serapilheira, em fendas na casca de árvores próximas ou em nichos protegidos semelhantes. A pupação ocorre ocasionalmente no cladódio. A mariposa surge e o ciclo se repete. A duração do ciclo de vida na Flórida é desconhecida, mas provavelmente mais curta do que em Queensland, Austrália, onde há duas gerações por ano (Dodd 1940).

Figura 3. Pau de ovo da mariposa cacto, Cactoblastis cactorum (Berg), no cacto. Fotografia de D. Habeck e F. Bennett, Universidade da Flórida.

As fêmeas mostram preferências claras de postura, selecionando Opuntia engelmannii variedades linguiforme e Engelmannii sobre outros opuntiods (Jezorek et al. 2010). Curiosamente, as preferências de postura das fêmeas não são um bom indicador dos hospedeiros onde as larvas têm melhor desempenho. Jezorek et al. (2010) testaram as preferências de postura de ovos de fêmeas e o desempenho da prole em 14 opuntioides. Eles descobriram que Opuntia engelmannii vars. linguiforme e Engelmannii classificou-se em sétimo e quarto lugar, respectivamente, em porcentagem de emergência e teve o segundo e terceiro tempos de desenvolvimento mais longos. Um dos melhores hospedeiros para a sobrevivência e desenvolvimento da prole, Opuntia streptacantha, foi um dos menos preferidos pelas mulheres. Muitos fatores podem levar a uma incompatibilidade entre as preferências de postura de ovos das fêmeas e o desempenho da prole, no entanto, neste caso, a nova associação de Cactoblastis cactorum com a América do Norte Opunia as plantas são provavelmente uma causa. Cactoblastis e seus novos hospedeiros tiveram apenas uma curta história evolutiva, e a mariposa provavelmente não teve a chance de se adaptar às novas plantas hospedeiras.


Figura 4. A almofada de cacto dissecada para mostrar as larvas da mariposa do cacto, Cactoblastis cactorum (Berg), alimentando-se por dentro. Ilha Sapelo, GA 2011. Fotografia: Christine Miller, University of Florida.

As larvas não funcionam bem em Opuntia cladódios com pele resistente, como Opuntia engelmannii variedade Lindheimeri e Opuntia macrocentra. As larvas parecem ter dificuldade em penetrar na dura camada epidérmica e ficar presas na mucilagem secretada (Jezorek et al. 2010).

Figura 5. Danos de Cactoblastis cactorum. Da esquerda para a direita: danos recentes a antigos. O excremento da mariposa é visível à esquerda (excremento fresco e mucilagem escorrendo dos orifícios do cladódio) e fotos do meio (excremento seco). Fotografia: Christine Miller, University of Florida.

Importância econômica (voltar ao topo)

Cactoblastis cactorum, nativa da América do Sul, foi introduzida da Argentina na Austrália em 1925 para controlar várias espécies da América do Norte e da América do Sul Opuntia. Em Queensland, 16 milhões de acres de terra gravemente infestada foram recuperados para a agricultura pela ação desse inseto. Na verdade, a cidade de Dalby em Queensland, Austrália, ergueu um monumento em 1965 dedicado a Cactoblastis cactorum por salvar o povo de Queensland do flagelo do invasor cacto espinhoso. Esta mariposa tem sido um agente de controle eficaz de Opuntia spp. em outras áreas, incluindo Havaí, Índia e África do Sul. Em 1957, foi introduzido no Caribe, em Nevis, onde o controle de Opuntia curassavica e outro Opuntia spp. foi rápido e espetacular (Simmonds e Bennett 1966). Ovos e larvas, ou cladódios infestados, foram enviados de Nevis para Montserrat e Antigua em 1962 e para Grand Cayman em 1970 (Bennett et al. 1985). Em 1963, a mariposa do cacto invadiu as Pequenas Antilhas para Porto Rico (Garcia-Tuduri et al. 1971) e agora está presente no Haiti, na República Dominicana e nas Bahamas (Starmer et al. 1987).

Como mencionado acima, a chegada de Cactoblastis cactorum na América do Norte continental é uma grande preocupação. Tem alto potencial para destruir os nativos Opuntia spp. Em Florida Keys, Opuntia spinosissima (Martyn) Mill., E Opuntia tricantha (Willdenow) Doces são raros e estão na lista de & quotameaçados & quot. Outras espécies nativas, como Opuntia cubensis Britton & amp Rose, Opuntia stricta Haw., Opuntia humifusa (Raf.) Os rafineses, assim como as espécies exóticas, naturalizadas ou cultivadas como ornamentais, também estão em risco na Flórida. Outra preocupação é a probabilidade de que Cactoblastis cactorum vai se espalhar para o oeste até o Texas e no México. Nessas regiões desérticas, selvagens Opuntia e Cilindropuntia (Engelmann) As espécies Kreuzinger fornecem alimento e locais de nidificação para uma variedade de animais selvagens e contribuem para a estabilidade do solo (Chavez-Ramirez et al. 1997). Opuntia também é importante economicamente. Essas plantas são colhidas em mais de três milhões de hectares no México, onde crescem naturalmente (Soberon et al. 2001, Vigueras e Portillo 2001). Além disso, 250.000 hectares de Opuntia e Nopalea as espécies são cultivadas para alimentação humana e pecuária, para combustível e para manufatura. Essas plantas são avaliadas no México em mais de 80 milhões de dólares anuais (Soberon et al. 2001). O efeito devastador de Cactoblastis cactorum sobre o crescimento do cacto é bem conhecido.

Gestão (voltar ao topo)

Nenhum método satisfatório de controle químico de Cactoblastis cactorum é conhecido. O uso generalizado de pesticidas não é recomendado devido à ocorrência de fauna rara e ameaçada de extinção, como rabo de andorinha Schaus, asa de folha da Flórida e borboletas hairstreak de Bartram. Da mesma forma, liberações inundativas de parasitas de ovos, como Trichogramma pode ter um efeito adverso em outros lepidópteros desejáveis.

Os esforços para controlar essa espécie invasora têm se concentrado na contenção da disseminação via quarentena, bem como no desenvolvimento de agentes de controle biológico de fungos, bactérias, parasitóides e nematóides. A técnica de insetos estéreis também é uma ferramenta de manejo possível (Hight et al. 2005). Em seu habitat nativo na América do Sul, vários inimigos naturais são conhecidos, incluindo Apanteles alexanderi Brethes (Braconidae), Phyticiplex doddi (Cushman) e Phyticiplex eremnus (Porter) (Ichneumonidae), Brachymeria cactoblastidis Blanchard (Chalcididae), e Epicoronimyia mundelli (Blanchard) (Tachinidae). A gama de hospedeiros desses inimigos naturais teria que ser determinada antes da liberação de qualquer um deles para o controle de Cactoblastis cactorum poderia ser aprovado.

Pesquisas entre julho de 2008 e dezembro de 2009 revelaram que palitos de ovo de Cactoblastis cactorum no norte da Flórida são atacados por parasitóides de ovos do gênero Trichogramma: Trichogramma pretiosum Riley, Trichogramma fuentesi Torre, e um outro não identificado Trichogramma espécies pertencentes ao Trichogramma pretiosum grupo. Infelizmente, Paraiso et al. (2011) descobriram que apenas 0,2% dos ovos são destruídos naturalmente por esses parasitóides. No entanto, com criação de laboratório e liberações inundativas, Trichogramma as vespas poderiam ser integradas ao sistema atual de manejo de pragas.


Drenar moscas ou moscas mariposas

Drain Flies, também conhecido como Moth Flies

As moscas de drenagem, ou moscas-da-traça, são mosquitos pequenos, de asas escuras e que não picam. Suas asas são cobertas por escamas, então eles desaparecem em uma nuvem de poeira fina quando golpeados ou esmagados. Esses mosquitos incômodos podem ser encontrados descansando em paredes ou tetos e, se incomodados, fazem voos curtos e saltitantes.

As moscas de drenagem costumam ser um problema temporário. Eles se desenvolvem em águas paradas, então são mais comumente vistos depois de voltar para casa de férias ou de um período de viagem prolongada. Geralmente, eles desaparecem logo depois que as atividades normais da casa são retomadas e a água começa a circular novamente pelos vasos sanitários e ralos. Os poucos adultos resultantes dessas pequenas infestações podem ser mortos facilmente com um mata-mata ou spray de insetos voadores. No entanto, encontrar muitas moscas durante várias semanas geralmente significa um criadouro relativamente permanente que deve ser encontrado e eliminado. Acabar com uma infestação crônica pode ser um desafio.

Fontes de drenagem de moscas

Como acontece com a maioria dos mosquitos, as moscas drenadoras de larvas precisam de umidade. Eles podem viver em qualquer lugar onde a água se acumule por uma semana ou mais. Locais internos comuns incluem a fina camada de limo que se desenvolve ao longo da superfície da água em vasos sanitários e tanques raramente usados, em ralos de pia ou piso em porões ou garagens, ou drenos sob refrigeradores. Às vezes, as larvas cinzentas e se contorcendo podem ser vistas nadando na água. Essas áreas precisam ser limpas cuidadosamente com atenção à remoção de filmes superficiais.

Pode ser difícil reconhecer locais de reprodução porque as larvas são pequenas e fáceis de ignorar. O surgimento de moscas pode ser detectado pelo uso de uma armadilha simples. Copos de plástico transparente com uma camada muito leve de óleo vegetal ou vaselina podem ser invertidos sobre os ralos por vários dias para pegar adultos emergentes e identificar locais de reprodução. Se eles não forem produtivos, expanda a pesquisa.

As moscas de drenagem podem se reproduzir ao ar livre durante o verão, com os adultos entrando nas casas por portas ou janelas abertas. Áreas baixas e úmidas, onde drenam unidades de ar condicionado, ou calhas entupidas são locais excelentes para o desenvolvimento desses insetos. Isso deve ser resolvido se os adultos não parecerem estar saindo de dentro de casa.

Ao controle

O controle das moscas drenadas deve ter como objetivo a eliminação dos criadouros. O método de controle mais eficaz é limpar completamente os canos e as armadilhas para remover o lodo acumulado. Derramar água quente pelo ralo pode fornecer controle de curto prazo. As larvas de moscas de drenagem são difíceis de afogar porque são capazes de reter bolhas de ar e permanecer submersas por um dia ou mais. Não despeje inseticidas em ralos para matar moscas de drenagem. O ciclo de vida da mosca drenada leva cerca de 10 a 15 dias a cerca de 21 ° C. Grupos de ovos são colocados em filmes gelatinosos de matéria orgânica. As larvas podem se desenvolver em água ou em filmes superficiais finos. O tempo real varia com a temperatura, o desenvolvimento é mais lento em temperaturas mais baixas, mas pode continuar ao longo do ano em ambientes fechados.

CUIDADO! As recomendações de pesticidas nesta publicação são registradas para uso em Kentucky, EUA SOMENTE! O uso de alguns produtos pode não ser legal em seu estado ou país. Verifique com seu agente local ou oficial regulatório antes de usar qualquer pesticida mencionado nesta publicação.

Claro, SEMPRE LEIA E SIGA AS INSTRUÇÕES DOS RÓTULOS PARA O USO SEGURO DE QUALQUER PESTICIDA!


Descrição:

As lagartas da mariposa do inverno são muito pequenas quando recém-eclodidas, têm menos do que o tamanho de um cílio e são de cor preta nessa época. À medida que se alimentam e aumentam de tamanho, tornam-se verdes claros com uma faixa longitudinal esbranquiçada que desce em ambos os lados do corpo. Eles são "loopers" ou "inchworms" e têm apenas dois pares de prolegs. As lagartas da mariposa do inverno são frequentemente encontradas em associação com os cankerworms do outono e da primavera, bem como com a spanworm Bruce (Operophtera bruceata), que são muito semelhantes em aparência e têm padrões de alimentação semelhantes aos da lagarta da mariposa do inverno. As lagartas da lagarta do outono têm “2 e ½” pares de prolegs: dois pares de prolegs são mais longos do que o terceiro par muito mais curto, que é contado como o número 3 ao iniciar a contagem a partir da extremidade posterior da lagarta. Bruce Spanworm é nativo do Nordeste e raramente é um problema. No entanto, os machos desta espécie são atraídos pelo feromônio usado em armadilhas de mariposas de inverno e, portanto, criam um desafio para os pesquisadores discernirem a diferença entre os machos capturados nessas armadilhas, dada sua aparência notavelmente semelhante.


Identifique esta mariposa de Bangladesh - Biologia

A lagarta do cartucho é nativa das regiões tropicais do hemisfério ocidental, dos Estados Unidos à Argentina. Normalmente sobrevive com sucesso nos Estados Unidos apenas no sul da Flórida e no sul do Texas. A lagarta do cartucho é um forte voador e se espalha por longas distâncias anualmente durante os meses de verão. É registrado em praticamente todos os estados a leste das Montanhas Rochosas, no entanto, como uma praga regular e grave, sua distribuição tende a ser principalmente os estados do sudeste. Em 2016, foi relatado pela primeira vez na África Ocidental e Central, portanto, agora ameaça a África e a Europa.

Figura 1. Ovos da lagarta-do-cartucho, Spodoptera frugiperda (J.E. Smith), incubação. Fotografia de James Castner, Universidade da Flórida.

Descrição e ciclo de vida (voltar ao topo)

O ciclo de vida se completa em cerca de 30 dias no verão, mas em 60 dias na primavera e no outono e de 80 a 90 dias no inverno. O número de gerações ocorrendo em uma área varia com a aparência dos adultos dispersos. A capacidade de diapausa não está presente nesta espécie. Em Minnesota e Nova York, onde as mariposas da lagarta-do-cartucho não aparecem até agosto, pode haver apenas uma geração. O número de gerações é relatado como um a dois no Kansas, três na Carolina do Sul e quatro na Louisiana. Nas áreas costeiras do norte da Flórida, as mariposas são abundantes de abril a dezembro, mas algumas são encontradas mesmo durante os meses de inverno.

Ovo: O ovo tem a forma de cúpula, a base é achatada e as curvas do ovo para cima até um ponto amplamente arredondado no ápice. O ovo mede cerca de 0,4 mm de diâmetro e 0,3 mm de altura. O número de ovos por massa varia consideravelmente, mas costuma ser de 100 a 200, e a produção total de ovos por fêmea é em média de 1.500 com um máximo de 2.000. Os ovos às vezes são depositados em camadas, mas a maioria dos ovos é espalhada em uma única camada anexada a folhagem. A fêmea também deposita uma camada de escamas acinzentadas entre os ovos e sobre a massa de ovos, conferindo uma aparência peluda ou mofada. A duração da fase de ovo é de apenas dois a três dias durante os meses de verão.

Figura 2. Massa de ovo da lagarta-do-cartucho, Spodoptera frugiperda (J.E. Smith). Fotografia de James Castner, Universidade da Flórida.

Larvas: Geralmente há seis instares na lagarta-do-cartucho. As larguras da cápsula cefálica são de cerca de 0,35, 0,45, 0,75, 1,3, 2,0 e 2,6 mm, respectivamente, para instares de 1 a 6. As larvas atingem comprimentos de cerca de 1,7, 3,5, 6,4, 10,0, 17,2 e 34,2 mm, respectivamente, durante estes instars. As larvas jovens são esverdeadas com a cabeça preta, a cabeça tornando-se alaranjada no segundo ínstar. No segundo, mas particularmente no terceiro ínstar, a superfície dorsal do corpo torna-se acastanhada e as linhas brancas laterais começam a se formar. Do quarto ao sexto estádio, a cabeça é marrom-avermelhada, mosqueada de branco, e o corpo acastanhado apresenta linhas subdorsais e laterais brancas. Manchas elevadas ocorrem dorsalmente no corpo, são geralmente de cor escura e espinhos de urso. A face da larva madura também é marcada com um & quotY & quot invertido branco e a epiderme da larva é áspera ou granulada em textura quando examinada de perto. No entanto, esta larva não é áspera ao toque, como a lagarta da orelha do milho, Helicoverpa zea (Boddie), porque não tem os microespinhos encontrados na lagarta da orelha do milho de aparência semelhante. Além da forma acastanhada típica da larva da lagarta-do-cartucho, a larva pode ser principalmente verde dorsalmente. Na forma verde, os pontos elevados dorsais são mais claros do que escuros. As larvas tendem a se esconder durante a hora mais clara do dia. A duração da fase larval tende a ser de cerca de 14 dias durante o verão e 30 dias durante o tempo frio. O tempo médio de desenvolvimento foi determinado como 3,3, 1,7, 1,5, 1,5, 2,0 e 3,7 dias para os instares 1 a 6, respectivamente, quando as larvas foram criadas a 25 ° C (Pitre e Hogg 1983).

Figura 3. Larva recém-eclodida da lagarta-do-cartucho, Spodoptera frugiperda (J.E. Smith). Fotografia de Lyle J. Buss, Universidade da Flórida.

Figura 4. Larva madura da lagarta-do-cartucho, Spodoptera frugiperda (J.E. Smith). Fotografia de James Castner.

Figura 5. Cápsula da cabeça da lagarta-do-cartucho, Spodoptera frugiperda (J.E. Smith) mostrando & quotY & quot invertido de cor clara na frente da cabeça. Fotografia de Lyle J. Buss, Universidade da Flórida.

Pupa: A pupação ocorre normalmente no solo, a uma profundidade de 2 a 8 cm. A larva constrói um casulo solto, de formato oval e de 20 a 30 mm de comprimento, amarrando partículas de solo com seda. Se o solo for muito duro, as larvas podem se unir a restos de folhas e outros materiais para formar um casulo na superfície do solo. A pupa é de cor marrom avermelhada e mede 14 a 18 mm de comprimento e cerca de 4,5 mm de largura. A duração do estágio de pupa é de cerca de oito a nove dias durante o verão, mas chega a 20 a 30 dias durante o inverno na Flórida. O estágio de pupa da lagarta-do-cartucho não pode resistir a longos períodos de frio. Por exemplo, Pitre e Hogg (1983) estudaram a sobrevivência no inverno do estágio de pupa na Flórida e encontraram 51% de sobrevivência no sul da Flórida, mas apenas 27,5% de sobrevivência no centro da Flórida e 11,6% de sobrevivência no norte da Flórida.

Adulto: As mariposas têm envergadura de 32 a 40 mm. Na mariposa macho, a asa anterior é geralmente sombreada em cinza e marrom, com manchas brancas triangulares na ponta e perto do centro da asa. As asas anteriores das fêmeas são menos marcadas, variando de um marrom acinzentado uniforme a uma mancha fina de cinza e marrom. A asa posterior é branco-prateada iridescente com uma borda escura estreita em ambos os sexos. Os adultos são noturnos e mais ativos durante as noites quentes e úmidas. Após um período de pré-oviposição de três a quatro dias, a fêmea normalmente deposita a maioria de seus ovos durante os primeiros quatro a cinco dias de vida, mas ocorre alguma oviposição por até três semanas. A duração da vida adulta é estimada em cerca de 10 dias, com uma variação de cerca de sete a 21 dias.

Figura 6. Lagarta-do-cartucho típica masculina adulta, Spodoptera frugiperda (J.E. Smith). Fotografia de Lyle J. Buss, Universidade da Flórida.

Figura 7. Lagarta-do-cartucho típica feminina adulta, Spodoptera frugiperda (J.E. Smith). Fotografia de Lyle J. Buss, Universidade da Flórida.

Um relato abrangente da biologia da lagarta do cartucho foi publicado por Luginbill (1928), e uma sinopse informativa por Sparks (1979). Ashley et al. (1989) apresentou uma bibliografia comentada. Um feromônio sexual foi descrito (Sekul e Sparks 1976).

Plantas hospedeiras (voltar ao topo)

Esta espécie aparentemente exibe uma gama de hospedeiros muito ampla, com mais de 80 plantas registradas, mas claramente prefere gramíneas. As plantas mais frequentemente consumidas são o milho do campo e o milho doce, sorgo, bermudagrass e ervas daninhas, como capim-colchão, Digitaria spp. Quando as larvas são muito numerosas, elas desfolham as plantas preferidas, adquirem o hábito de & quotarmyworm & quot e se dispersam em grande número, consumindo quase toda a vegetação em seu caminho. Muitos registros de hospedeiros refletem esses períodos de abundância e não são realmente indicativos de oviposição e comportamento alimentar em condições normais. As plantações são frequentemente danificadas, incluindo alfafa, cevada, grama bermuda, trigo sarraceno, algodão, trevo, milho, aveia, painço, amendoim, arroz, azevém, sorgo, beterraba sacarina, capim-sudão, soja, cana-de-açúcar, timóteo, tabaco e trigo. Entre as hortaliças, apenas o milho doce é regularmente danificado, mas outros são atacados ocasionalmente. Outras culturas às vezes prejudicadas são maçã, uva, laranja, mamão, pêssego, morango e várias flores. Ervas daninhas conhecidas por servirem como hospedeiras incluem bentgrass, Agrostis sp. capim-colchão, Digitaria spp. Grama Johnson, Sorghum halepense Glória da manhã, Ipomoea spp. noz, Cyperus spp. pigweed, Amaranthus spp. e sandspur, Cenchrus tribuloides.

Há algumas evidências de que existem cepas de lagarta-do-cartucho, principalmente com base em sua preferência de planta hospedeira. Uma cepa se alimenta principalmente de milho, mas também de sorgo, algodão e alguns outros hospedeiros se forem encontrados crescendo perto dos hospedeiros principais. A outra cepa se alimenta principalmente de arroz, grama bermuda e grama Johnson.

Danos (voltar ao topo)

As larvas causam danos ao consumir folhagens. As larvas jovens consomem inicialmente o tecido foliar de um lado, deixando a camada epidérmica oposta intacta. Por volta do segundo ou terceiro ínstar, as larvas começam a fazer buracos nas folhas e se alimentam da borda das folhas para dentro. Alimentar-se com o verticilo do milho geralmente produz uma fileira característica de perfurações nas folhas. As densidades larvais são geralmente reduzidas para uma a duas por planta quando as larvas se alimentam muito próximas umas das outras, devido ao comportamento canibal. As larvas mais velhas causam desfolhamento extenso, muitas vezes deixando apenas as costelas e caules das plantas de milho, ou uma aparência irregular e rasgada. Marenco et al. (1992) estudaram os efeitos da lesão da lagarta-do-cartucho no início do crescimento vegetativo do milho doce na Flórida. Eles relataram que o estágio inicial do verticilo era menos sensível a lesões, o estágio intermediário do meio e o estágio final do verticilo era mais sensível a lesões. Além disso, eles notaram que as densidades médias de 0,2 a 0,8 larvas por planta durante o estágio final de verticilo podem reduzir a produção em 5 a 20 por cento.

Figura 8. Danos nas folhas do milho causados ​​pela lagarta-do-cartucho, Spodoptera frugiperda (J.E. Smith). Fotografia de Paul Choate, Universidade da Flórida.

As larvas também penetram no ponto de crescimento (botão, verticilo, etc.), destruindo o potencial de crescimento das plantas ou cortando as folhas. No milho, às vezes eles se enterram na espiga, alimentando-se de grãos da mesma maneira que a lagarta da espiga, Helicoverpa zea. Ao contrário da lagarta da espiga do milho, que tende a se alimentar pela seda antes de atacar os grãos na ponta da espiga, a lagarta do cartucho se alimenta cavando através da casca na lateral da espiga.

Pannuti et al. (2015) estudaram o comportamento de alimentação das larvas e relataram que, embora o tecido da folha jovem (estágio vegetativo) seja adequado para o crescimento e a sobrevivência, em plantas mais maduras o tecido da folha é inadequado e as larvas tendem a se estabelecer e se alimentar na zona da orelha, e particularmente nos tecidos de seda. No entanto, a seda não é muito adequada para o crescimento. As larvas que atingem os grãos de milho apresentam a taxa de desenvolvimento mais rápida. Além disso, embora a borla fechada fosse adequada no que diz respeito à sobrevivência, resultou em um crescimento pobre. Assim, o tecido da borla pode ser adequado para a alimentação inicial, talvez até que as larvas localizem a seda e as orelhas, mas a alimentação apenas com o tecido da borla não é ideal.

Inimigos naturais (voltar ao topo)

As fontes frescas e úmidas seguidas por um clima quente e úmido nas áreas de inverno favorecem a sobrevivência e a reprodução da lagarta-do-cartucho, permitindo-lhe escapar da supressão por inimigos naturais. Uma vez que a dispersão para o norte começa, os inimigos naturais são deixados para trás. Portanto, embora a lagarta-do-cartucho tenha muitos inimigos naturais, poucos agem com eficácia suficiente para prevenir danos às plantações.

Numerosas espécies de parasitóides afetam a lagarta-do-cartucho. Os parasitóides de vespas mais frequentemente criados a partir de larvas nos Estados Unidos são Cotesia marginiventris (Cresson) e Chelonus texanus (Cresson) (ambos Hymenoptera: Braconidae), espécies que também estão associadas a outras espécies de noctuídeos. Entre os parasitóides de moscas, o mais abundante é geralmente Archytas marmoratus (Townsend) (Diptera: Tachinidae). No entanto, o parasitóide dominante geralmente varia de um lugar para outro e de ano para ano. Luginbill (1928) e Vickery (1929) descrevem e retratam muitos dos parasitóides da lagarta-do-cartucho.

Os predadores da lagarta do cartucho são predadores gerais que atacam muitas outras lagartas. Entre os predadores considerados importantes estão vários besouros terrestres (Coleoptera: Carabidae), a tesourinha listrada, Labidura riparia (Pallas) (Dermaptera: Labiduridae) o inseto soldado espinhoso, Podisus maculiventris (Diga) (Hemiptera: Pentatomidae) e o insidioso inseto das flores, Orius insidiosus (Diga) (Hemiptera: Anthocoridae). Vertebrados como pássaros, gambás e roedores também consomem larvas e pupas prontamente. A predação pode ser muito importante, pois Pair e Gross (1984) demonstraram 60 a 90 por cento da perda de pupas para predadores na Geórgia.

Numerosos patógenos, incluindo vírus, fungos, protozoários, nematóides e uma bactéria foram associados à lagarta do cartucho (Gardner et al. 1984), mas apenas alguns causam epizootias. Entre os mais importantes estão os Spodoptera Frugiperda vírus da poliedrose nuclear (NPV), e os fungos Entomophaga aulicae, Nomuraea rileyi, e Erynia radicans. Apesar de causar altos níveis de mortalidade em algumas populações, a doença geralmente aparece tarde demais para aliviar os altos níveis de desfolha.

Gestão (voltar ao topo)

Amostragem: Populações de mariposas podem ser amostradas com armadilhas de luz negra e armadilhas de feromônio, as últimas são mais eficientes. As armadilhas de feromônios devem ser suspensas na altura do dossel, de preferência no milho durante o estágio de verticilo. As capturas não são necessariamente bons indicadores de densidade, mas indicam a presença de mariposas em uma área. Assim que as mariposas forem detectadas, é aconselhável procurar ovos e larvas. Uma busca de 20 plantas em cinco locais, ou 10 plantas em 10 locais, é geralmente considerada adequada para avaliar a proporção de plantas infestadas. A amostragem para determinar a densidade larval geralmente requer grandes tamanhos de amostra, especialmente quando as densidades larvais são baixas ou as larvas são jovens, por isso não é usado com frequência.

Inseticidas: Os inseticidas são geralmente aplicados ao milho doce nos estados do sudeste para proteger contra os danos causados ​​pela lagarta-do-cartucho, às vezes tão freqüentemente quanto diariamente durante a fase de silagem. Na Flórida, a lagarta-do-cartucho é a praga mais importante do milho. Freqüentemente, é necessário proteger os primeiros estágios vegetativos e reprodutivos do milho. Como as larvas se alimentam profundamente no verticilo das mudas de milho, um alto volume de inseticida líquido pode ser necessário para obter a penetração adequada. Os inseticidas podem ser aplicados na água de irrigação se for aplicado por aspersores suspensos. Inseticidas granulares também são aplicados sobre as plantas jovens porque as partículas caem profundamente no verticilo. Alguma resistência a inseticidas foi observada, com resistência variando regionalmente. Foster (1989) relatou que manter as plantas livres de larvas durante o período vegetativo reduziu o número de pulverizações necessárias durante o período de silagem. A prática do produtor de concentrar as pulverizações no início do período de sedimentação, em vez de espaçá-las uniformemente, proporcionou poucos benefícios.

Técnicas culturais: A prática cultural mais importante, amplamente empregada nos estados do sul, é o plantio precoce e / ou variedades de maturação precoce. A colheita precoce permite que muitas espigas de milho escapem das densidades mais altas de lagarta-do-cartucho que se desenvolvem no final da temporada (Mitchell, 1978). Reduced tillage seems to have little effect on fall armyworm populations (All 1988), although delayed invasion by moths of fields with extensive crop residue has been observed, thus delaying and reducing the need for chemical suppression (Roberts and All 1993).

Host plant resistance: Partial resistance is present in some sweet corn varieties, but is inadequate for complete protection.

Biological control: Although several pathogens have been shown experimentally to reduce the abundance of fall armyworm larvae in corn, only Bacillus thuringiensis presently is feasible, and success depends on having the product on the foliage when the larvae first appear. Natural strains of Bacillus thuringiensis tend not to be very potent, and genetically modified strains improve performance (All et al. 1996).

Referências selecionadas (voltar ao topo)

  • All JN. 1988. Fall armyworm (Lepidoptera: Noctuidae) infestations in no-tillage cropping systems. Florida Entomologist 71: 268-272.
  • All JN , Stancil JD, Johnson TB, Gouger R. 1996. Controlling fall armyworm infestations in whorl stage corn with genetically modified Bacillus thuringiensis formulations. Florida Entomologist 79: 311-317.
  • Ashley TR, Wiseman BR, Davis FM, Andrews KL. 1989. The fall armyworm: a bibliography. Florida Entomologist 72: 152-202.
  • Capinera JL. 2001. Handbook of Vegetable Pests. Academic Press, San Diego. 729 pp.
  • Foster RE. 1989. Strategies for protecting sweet corn ears from damage by fall armyworms (Lepidoptera: Noctuidae) in southern Florida. Florida Entomologist 72: 146-151.
  • Goergen G, Kumar PL, Sankung SB, Togola A, Tamo M. 2016. First report of outbreaks of the fall armyworm Spodoptera frugiperda (JE Smith) (Lepidoptera, Noctuidae), a new alien invasive pest in west and central Africa. PLoS ONE, DOI: 10.137/journal.pone.0165632
  • Johnson SJ. 1987. Migration and the life history strategy of the fall armyworm, Spodoptera frugiperda in the western hemisphere. Insect Science and its Applications 8: 543-549.
  • Luginbill P. 1928. The Fall Armyworm. USDA Technical Bulletin 34. 91 pp.
  • Marenco RJ, Foster RE, Sanchez CA. 1992. Sweet corn response to fall armyworm (Lepidoptera: Noctuidae) damage during vegetative growth. Journal of Economic Entomology 85 :1285-1292.
  • Mitchell ER. 1978. Relationship of planting date to damage by earworms in commercial sweet corn in north central Florida. Florida Entomologist 61: 251-255.
  • Pannuti LER, Baldin ELL, Hunt TE, Paula-Moraes SV. 2015. On-plant larval movement and feeding behavior of fall armyworm (Lepidoptera: Noctuidae) on reproductive corn stages. Environ. Entomol. 45: 192-200
  • Pair SD, Gross Jr HR 1984. Field mortality of pupae of the fall armyworm, Spodoptera frugiperda (J.E. Smith), by predators and a newly discovered parasitoid, Diapetimorpha introita. Journal of the Georgia Entomological Society 19: 22-26.
  • Pitre HN, Hogg DB. 1983. Development of the fall armyworm on cotton, soybean and corn. Journal of the Georgia Entomological Society 18: 187-194.
  • Roberts PM All JN. 1993. Hazard for fall armyworm (Lepidoptera: Noctuidae) infestation of maize in double-cropping systems using sustainable agricultural practices. Florida Entomologist 76: 276-283.
  • Sparks AN. 1979. A review of the biology of the fall armyworm. Florida Entomologist 62: 82-87.
  • Tumlinson JH, Mitchell ER, Teal PEA, Heath RR, Mengelkoch LJ. 1986. Sex pheromone of fall armyworm, Spodoptera frugiperda (J.E. Smith). Journal of Chemical Ecology 12: 1909-1926.
  • Vickery RA. 1929. Studies of the fall armyworm in the Gulf coast region of Texas. USDA Technical Bulletin 138. 63 pp.

Author: John L. Capinera, University of Florida
Photographs: John L. Capinera, University of Florida, and USDA
Web Design: Don Wasik, Jane Medley
Publication Number: EENY-98
Publication Date: July 1999. Latest revision: May 2017. Reviewed: June 2020.


PowerPoint Presentations/Webinars

January 17th, 2019: Idaho Hort Expo (Boise)

February 5th, 2019: Boulder County Beekeeping Class (Longmont)

February 5th, 2019: Seminar, Department of Agricultural Biology (Fort Collins)

February 7th, 2019: The ProGreen Expo (Denver)

February 12-13th, 2019: Western Colorado Pest Management Conference (Grand Junction)

February 21st, 2019: Hemp Insect Discussion (Rocky Ford)

March 6th 2019: Colorado Arborists and Lawn Care Professionals (CALCP) Annual Conference (Aurora)

March 9th 2019: SymROSEium, Denver Rose Society (Denver)

April 3rd 2019: Pacific Branch Meeting, Entomological Society of America (San Diego)

May 19, 2019 Northeastern IPM Center (Webinar)

July 17, 2019: Sentinel Plant Network Workshop, Cheyenne Botanic Gardens (Cheyenne)

August 29, 2019: Department Seminar, Purdue University (West Lafayette)

September 12, 2019: GCA Shirley Meneice Annual Conference, Denver Botanic Gardens (Denver)

September 19, 2019 ISA-RMC Annual Meeting (Westminster)

November 1, 2019: Master Gardener Webinar, Emerald Ash Borer (Fort Collins)

November 6, 2019: CSU Front Range Pest Management Workshop (Loveland)

November 7, 2019: Hemp Growers Workshop (Fort Collins)

November 21, 2019: ISA-RMC Annual Pesticides Workshop (Denver)

December 6, 2019: Poudre School District Nurses (Fort Collins)

December 11, 2019: Rocky Mountain Regional Turfgrass Conference and Trade Show (Aurora)

December 12, 2019: College of Agricultural Sciences Distinguish Lecture Series (Fort Collins)

January 23-24, Association of Montana Turf, Ornamental and Pest Professionals (Montana)

February 1, 2020: Garfield County AgExpo (Rifle)

February 6-7, 2020: ProGreen Expo (Denver, CO)

February 11-12, 2020: Western Colorado Pest Management Conference (Fruita, CO)

February 20, 2020: Rocky Mountain Green Industry Conference and Trade Show (Casper, Wyoming)

February 24, 2020: Colorado Fruit and Vegetable Growers Association, Annual Meeting (Denver, CO)

March 4, 2020 Colorado Arborists and Lawn Care Professionals, Annual Meeting (Fort Collins)

March 7, 2020 High Plains Landscape Workshop (Fort Collins)


Pacific Northwest

Acronicta americana has been most commonly found in and near the Snake River Plain in southern Idaho, extending to the Blue Mountains of Oregon in our area. It has not been found in British Columbia or Washington.

Global

The distribution of this species is centered on eastern North America where it occurs from the island of Newfoundland and southern Ontario to Florida and Texas. It is found in the Canadian Prairie Provinces, Colorado, and Arizona further West but does not occur in California.


Conteúdo

The adult moths are 32 to 40 millimetres ( 1 + 1 ⁄ 4 to 1 + 1 ⁄ 2 in) wing tip to wing tip, with a brown or gray forewing, and a white hindwing. There is slight sexual dimorphism, with males having more patterns and a distinct white spot on each of their forewings. The first larval instar is light colored with a larger dark head. As they develop through instars, they become browner with white lengthwise lines. They also develop dark spots with spines. [6]

Native range Edit

The fall armyworm is widely distributed in eastern and central North America and in South America. It cannot overwinter in below freezing temperatures, [7] [8] so it only survives the winter in the most southern regions of the United States, namely Texas and Florida. Because of this, the fall armyworm is a more prominent pest in southeastern states. However, seasonally it will spread across the eastern United States and up to southern Canada, inhabiting areas with suitable food supplies. [6]

Introduced range Edit

The potential global distribution of S. frugiperda [9] has been modelled using CLIMEX. [10] [11] The modelled global potential distribution reflects the marked seasonal range dynamics experienced in North America, with much of the potential range in Europe, South Africa, China and Australia consisting of habitat that is only climatically suitable during the warmer months. [ citação necessária ]

S. frugiperda was first found on the African continent in 2013 in Sao Tome, [12] then spread through Nigeria, Benin, Togo, and was found in Ghana in February 2017. [12] (Also see below §Africa.) In December 2020 S. frugiperda was first found in Syria in Daraa on the Jordanian border and is believed to have arrived from there without human assistance, having just been found in that country also. [13] [14]

It was first reported in Africa in 2016, where it is causing significant damage to maize crops and has great potential for further spread and economic damage. [15] It has since spread to 28 countries in Africa. [16] In December 2018, [17] it began to spread widely in India. [18] In January 2019, a heavy infestation of fall armyworm was recorded in corn plantations in Sri Lanka. [19]

The pest was first detected in China in the southwest province of Yunnan in January 2019 [20] (or June 2019). [17] Through 2019, the pest infested a total of 26 provinces. The armyworm is expected in 2020 to hit China's Northeast wheat belt. A report issued by the Ministry of Agriculture and Rural Affairs rates the situation as "very grave". [21] Also in June 2019 it was detected in Southeast Asia. [17]

In January 2020 S. frugiperda was detected on the Torres Strait Islands, [22] in February in North Queensland, [23] [22] and then continued into the rest of Queensland, [22] [17] [24] and the Northern Territory, [22] [17] Western Australia, [22] [17] and then in September was found in New South Wales [17] between Moree [22] [17] and Boggabilla [17] (and later in Narrabri, [22] Wee Waa, [22] Dubbo, [22] Breeza, [22] and Maitland). [22] S. frugiperda is expected to severely impact Queensland's wool industry because it feeds on all major grazing plants. [24] It was observed in traps baited with a male pheromone lure, firstly on Darnley Island and Saibai islands in the Torres Strait, and subsequently on the mainland near Croydon. Within a week it was officially declared ineradicable. In April 2020, it was detected in Papua New Guinea, spreading across the Torres Strait. [25]

Bangladesh Edit

S. frugiperda was first detected in Bangladesh in late 2018. [26] [27] [28] As of 23 January 2020 [update] it has reached 37 districts. [26] As a result of the introduction of S. frugiperda and Lumpy Skin Disease within a few months of each other, the FAO, the World Food Programme, Bangladesh Government officials, and others agreed to begin improving Bangladesh's agricultural emergency response capabilities. [26] The use of two biopesticides - Spodoptera frugiperda nuclear polyhedrosis virus/SfNPV (the SNPV/single nuclear polyhedrosis virus specific to S. frugiperda) e Habrobracon hebetor - is recommended. [29]

Caterpillars Edit

The armyworm's diet consists mainly of grasses and grain crops such as corn, but the species has been noted to consume over 80 different plants (50 non-economic and 30 economic plants). [30] Armyworms earned their common name by eating all plant matter they encounter in their wide dispersals, like a large army. A few sweet corn varieties have partial, but not complete, resistance to armyworms. [6] The resistance comes from a unique 33-kD proteinase that the corn produces when it is being fed on by fall armyworms or other larvae. This protein was found to significantly decrease fall armyworm larva growth. [31]

Cannibalism Edit

When possible, larvae will cannibalize the larvae of smaller instars. A 1999 study showed that cannibalism only benefits the caterpillar when other food is scarce. Despite this, the caterpillars will cannibalize others whenever they can, even though it was found to decrease their own fitness in many cases. One known reason why cannibalism is detrimental to the fall armyworm is because of disease transmission to the cannibal. In nature, the negative effects of cannibalism may be balanced by the fact that cannibalism removes competitors, thereby making more resources accessible and indirectly increasing fall armyworms' fitness. [4]

Edição de Adultos

Adult moths sip nectar from flowers such as that of witch hazel (Hamamelis virginiana). [32]

The fall armyworm's life cycle is completed within 30 days during summer, and 60 days during the spring and autumn seasons during the winter, these caterpillars' life cycle lasts about 80 to 90 days. [3] The number of generations a moth will have in a year varies based on climate, but in her life span a female will typically lay about 1,500 eggs. [6] Because larvae cannot enter into diapause they cannot survive cold temperatures. [32]

Egg Edit

Larva Edit

Pupa Edit

The larvae then pupate underground for 7 to 37 days in a cocoon they form of soil and silk. Duration and survival of the pupal stage depend on the temperature of the environment. [33]

Edição de Adultos

Once emerged, the adults live for about 10 days, and sometimes up to 21 days, with the female laying most of her eggs early in life. [6] Adults are nocturnal and fare best during warm and humid nights. [6]

Adults are capable of flying long distances, so even though they are unable to overwinter north of the southern region of the United States, the moths can migrate as far north as southern Canada in warm months. [33] [6] Their migration rate is remarkably fast, estimated at 300 miles per generation. [33] [ failed verification ] [ página necessária ] Some scientists speculate that this fast migration is aided by the movement of air in weather fronts. [33]

Predators Edit

Fall armyworm caterpillars are directly preyed upon by many invertebrates and vertebrates. Common predators include birds, rodents, beetles, earwigs, and other insects. It has been shown that direct predation can cause significant losses to caterpillar populations. [6] The larva's main defense against enemies is their ability to reach large numbers and migrate before seasonal conditions are suitable for predators. [33]

Parasitoids Edit

Fly and wasp parasitoids target the fall armyworm, most commonly Archytas marmoratus, Cotesia marginiventris, e Chelonus texanus. The armyworm is also vulnerable to additional parasitoids, varying with location. [6] In 2018, egg parasitoid wasps of the genera Telenomus and Trichogramma were discovered to attack army worm eggs in East Africa. [34] Cotesia icipe is another African braconid wasp suitable for the biological control of this lepidoptera. [35]

Parasites and disease Edit

Fifty-three different parasite species have been discovered in fall armyworm larvae, spanning ten different families. [30] Often larvae can survive through much of their crop consumption despite outbreaks of disease, because of the larva's fast life cycle. [6] Despite this, parasites of the fall armyworm are being studied extensively as a means of fighting armyworm attacks on crops. One suggested approach would be to introduce parasites from South America to North American fall armyworms, and vice versa. [30]

Fungi Edit

In February 2021, it was reported that an Australian agronomist had found that the fungus Nomuraea rileyi to be effective in killing and consuming fall armyworms. [36] Samples of this were sent to an insect pathologist at the Queensland Department of Agriculture for further analysis. [36] Australian entomologists have said the finding is reassuring and that laboratory tests have been promising. [37] This is substantiated by various studies including a 2018 journal article which looked into the effectiveness of Nomurea rileyi had on infestations of armyworms in Indian maize crops. [38] The study concluded Nomurea rileyi could potentially be a cost-effective tool in combating the pest, compatible with eco-friendly management practices, although further studies were required. [38] Farmers in Australia have struggled to control the pest which has been destroying crops, prompting concerns about potential food shortages which could cause an increase in food prices for consumers. [37] O Nomuraea rileyi research have given them hope that this can be avoided. [37]

The fall armyworm may be presently undergoing a divergence into two separate species. These two strains have major genetic differences that are connected to the plants they feed on, even though both still exist in the same area (sympatric speciation). These two strains can be loosely categorized into a rice strain and a corn strain. This separation is occurring because of differences in habitat (preferred host plant), and differences in reproductive behavior. The reproductive differences can be divided into two categories: difference in the timing of mating at night, and difference in female sex pheromones. [2]

Mate searching behavior and male–male conflict Edit

A female attracts males by perching atop the host plant feeding area and releasing a sex pheromone as the signal that she wishes to mate. The pheromone has been studied and found to contain the components Z7-12 and Z9-14. [39] Each female only mates once per night this creates a physical conflict between the multiple males that will fly towards a ready female. There is an order to which the females call and mate: virgin females do first, females who have mated once next, and females who have already mated multiple times call and mate last during the night. [33]

Pest of crop plants Edit

Because of their food preferences, fall armyworm larvae can wreak havoc on a wide range of crops. The first historical account of the fall armyworm's destruction was in 1797 in Georgia. Destruction can happen almost over night, because the first stages of a caterpillar's life require very little food, and the later stages require about 50 times more. Because of this rapid change in food consumption, the presence of larvae will not be noticed until they have destroyed almost everything in as little as a night. [33] Some examples of targeted crops include cotton, tobacco, sweet corn, rice, peanuts, and even fruits such as apples, oranges, and many more. The list of possible food sources for the worms is extensive, so crop damage is wide-ranging. [6] It is estimated that almost 40 percent of those species that armyworms target are economically important. [30] Because the larvae eat so much of the plant, they are very detrimental to crop survival and yield. In corn, larvae will even burrow into the corn ear to eat the kernels. [6]

Invasive presence in Africa Edit

The fall armyworm was identified in Africa in 2016. In early 2017, armyworms infested large swathes of corn crops across southern Africa, devastating the livelihoods of many farmers. It is thought they arrived as an invasive species from the Americas as eggs in imported produce. [40] This is causing immense concern among agricultural experts, due to the potentially huge amount of damage this invasive species will do to African food crops if allowed to spread. [41] [42] Many African countries have agreed to take urgent actions against armyworms. [43]

Management of the pest Edit

The CABI-led programme, Plantwise and partners have several recommendations for managing fall armyworm, these include: planting early, avoiding staggered planting, and intercropping with crops that aren't susceptible to fall armyworm such as cassava or yam. They also recommend conserving shelters and flowering plants on the edges for beneficial insects such as ground beetles and parasitoids. [44] [45] [46] [47] [48]

Intercropping with the 'push-pull' technique with crops such as Desmodium and Napier grass can be used to control fall armyworm. [45]

For some crops including wheat, sorghum, millet and rice it is recommend by Plantwise partners to plant short maturing and varieties that are less preferred by S. frugiperda. [45] [46] [47] [48]

Because of the fall armyworms' great destructive power, farmers must go to great lengths to deter the larvae. Insecticide is a widely used form of protection in southern regions, farmers may have to apply insecticide to corn every day. Another strategy is to plant crops earlier to avoid the increase in armyworm numbers as the summer progresses. [6] In South Africa, farmers are using pheromone lures with a combination of Dichlorvos blocks to trap and eliminate male armyworms with the intention of disrupting mating cycles. [49] CIMMYT and its partners are using forward genetics to breed for better S. frugiperda resistance in maize. [50]

Research use Edit

S. frugiperda cells (Sf9 and Sf21 cell lines) are commonly used in biomedical research for the purpose of recombinant protein expression using insect-specific viruses called baculoviruses. [51]

Invasion of Sri Lanka Edit

After being first reported in India in May 2018 in Tamil Nadu, then the Sri Lankan Ministry of Agriculture issued a warning notice to farmers in the northwestern and north central provinces about possible fall armyworm invasion. At the time of warning, crop destruction had already been reported from the Ampara, Anuradhapura, and Polonnaruwa areas. [52] The larvae are known among the local people as Sena dalambuwa (armyworm caterpillar). [53] Not only corn, but also sugarcane plantations were attacked by the caterpillars in Anuradhapura, Ampara, and Monaragala districts. [54]

In December 2018, heavy infestations in corn cultivation were identified. [55] The spread of the moth leads to attack corn all around the country within weeks. [55] [ failed verification ] On 6 January 2019, caterpillars spread to the Monaragala district and devastated corn crops. [56] [57] At the end of January 2019, the armyworm was present in all districts of Sri Lanka except Nuwara Eliya and Jaffna. [58]

The Sri Lankan Department of Agriculture recommended 12 pesticides under three categories, to be used alternatively every seven days. [59] Organic farming expert, Thilak Kandegama said that the threat can be overcome by sprinkling rice husk ashes as a repellent. [60] [ dubious – discuss ] Agricultural Ministry also decided to use drone technology for the spraying of insecticides to control the spreading of caterpillars. [61] [62] On 29 December 2018, armyworms were recorded from paddy cultivations in the Sinhapura area of Polonnaruwa. In January 2019, caterpillars were also recorded from paddy cultivations of the Nochchiyagama area in the Anuradhapura district. [63]

Agricultural drones Edit

XAG has developed an agricultural drone designed to combat crop infestation by the fall armyworm moth. At present, this technology has been extended from China to Vietnam, Zambia and other regions. [64]


Importância

Many hundreds of Lepidoptera injure plants useful to humans, including some of the most important sources of food, fabrics, fodder, and timber. The great majority of the injurious species are moths, and the detrimental life stage is always the larva. However, unlike members of other insect orders, lepidopterans do not act as carriers of plant diseases, nor are any of them parasites of or injurious to humans. However, some species feed on open wounds or bodily secretions of wild or domestic animals.

The list of valuable plants subject to damage by lepidopterans is a long one, including many grains, sugar beets and sugarcane, cotton, tobacco, some root crops and leaf crops, many fruits, and timber and shade trees. The damage may involve the leaves, stems, roots, or fruit. Woolens, furs, silk, and even feathers are eaten by fungus moths (Vejo tineid moths) of several genera (clothes moths). The greater wax moth (Galleria mellonella) causes considerable damage in beehives.

A few Lepidoptera are directly beneficial to humans. Nearly all silk is obtained from the domesticated silkworm (Bombyx mori), which is originally from China. Other silks such as shantung and tussah are the products of various Asiatic giant silkworm moths (family Saturniidae). The larvae and sometimes the adults of a few species are used for food. The larvae of one skipper (Rhopalocampta libeon, ou Caeliades libeon) are collected in large quantities in the Congo, and the 10-cm (4-inch) caterpillars of giant skippers (family Megathymidae), known in Mexico as gusanos de magüey, are both consumed domestically and canned and exported for consumption as hors d’oeuvres. The South American cactus moth (Cactoblastis cactorum) has been highly beneficial in weed control, clearing more than 150 million ha (60 million acres) in Australia of alien prickly pear cactus. Doubtless, humans also benefit from much unrecognized weed eating by caterpillars and flower pollination by adults.

Many lepidopterans are valuable in biological research, including work in ecology, biogeography, systematics, genetics, and physiology. Much of the present knowledge of endocrine controls of insect development has come from studies of the silkworm moth and its relatives. The study of the British peppered moth (Biston betularia) has profoundly influenced ideas about rates of evolutionary change. An increase in the proportion of dark moths, a change thought to be brought on by airborne soot produced during the Industrial Revolution, has been called industrial melanism.


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