Em formação

Os tricópteros e os lepidópteros podem ser distinguidos a olho nu?


Há algum sinal revelador que alguém possa usar para distinguir tricópteros adultos de lepidópteros? Para mim, os tricópteros se parecem com mariposas:

Um método provavelmente seria tocar suas asas e ver se as escamas se soltam, mas e se presumirmos que não queremos pegá-las?


A etimologia dos nomes o ajudará nisso: trichoptera significa "asas cabeludas", enquanto lepidoptera significa "asas escamosas".

Se você conseguir fazer um close (talvez com uma lente tele poderosa) de qualquer tricóptero ou lepidóptero possível, verá que ele tem cabelos ou escamas nas asas, sem ter que tocá-las.

Exemplos: Observe o cabelo visível acima das asas. Retirado de https://www.inaturalist.org/observations/18660283

Agora, existem espécies de lepidópteros que também parecem ter asas cabeludas, como a mariposa touceira: Observe o cabelo também. No entanto, a forma das antenas seria uma revelação absoluta: até onde eu sei, tricópteros não deveria têm antenas parecidas com penas. Além disso, as asas ainda tem escamas perceptíveis, além do cabelo. Retirado de https://www.inaturalist.org/observations/18652111

Outras espécies de lepidópteros também podem parecer carecer de escamas, como o imaon Syntomoides: Partes das asas do imaon Syntomoides são transparentes. No entanto, em qualquer lugar que tenha escalas deve exibem algum tipo de iridescência. Você pode usar a lanterna do seu telefone e tentar iluminar o inseto de diferentes ângulos, e você deve notar alguma iridescência. As asas dos tricópteros, ao contrário, devem apenas refletir a luz de maneira plana, devido à falta de escamas. Retirado de https://www.inaturalist.org/observations/18652111

Além disso, (a maioria) borboletas e mariposas têm uma tromba (a "palha" que pode enrolar, usada para sugar o néctar). Isso geralmente é fácil de detectar se você olhar a cabeça de lado. Caddisflies não tem isso. Em vez disso, caddisflies têm mandíbulas (usadas para mastigar a caixa pupal à medida que emergem como adultos).

Eu mencionei o uso de lentes tele no início desta resposta. Claro, isso não é "a olho nu", como você pediu. A questão é que você começa usando uma lente tele. À medida que você vê mais caddisflies vs mariposas / borboletas, você desenvolverá uma noção das pistas para olhar. E em algum ponto você poderá distingui-los a olho nu (dependendo de quão perto você pode chegar seu rosto do inseto e quão boa é sua visão).


IDENTIDADE

O gênero Helicoverpa (Lepidoptera: Noctuidae) contém várias mariposas polífagas que causam graves impactos negativos nas culturas agrícolas em todo o mundo durante o seu desenvolvimento larval. H. armigera (A lagarta do algodão do Velho Mundo) é a mais amplamente distribuída dessas pragas e causa os danos econômicos mais graves. H. armigera está intimamente relacionado com H. zea (Lagarta da orelha do milho do Novo Mundo), compartilhando morfologia externa, uso de nicho bioclimático sobreposto e gama de hospedeiros e não podem ser distinguidos a olho nu (Mitchell & amp Gopurenko, 2016). A fenologia da espécie é mal compreendida. Hardwick (1965) referiu 17 espécies (incluindo 11 novas espécies) para o Helicoverpa complexo de espécies com base nas diferenças na genitália masculina e feminina. H. armigera é considerada uma praga global com uma distribuição em constante expansão, possuindo excelentes habilidades de dispersão e uma ampla faixa de alimentação. H. armigera é uma das espécies mais polífagas da subfamília Heliothinae (Rajapakse & amp Walter 2007). Dada a dificuldade de distinguir Helicoverpa/Heliothis espécies na subfamília Heliothinae (com 381 espécies descritas), com base em caracteres morfológicos (a dissecção da genitália é necessária para a identificação), os marcadores moleculares são a melhor opção para a detecção precisa de espécies no Helicoverpa gênero. Além disso, H. armigera e H. zea pode hibridizar e produzir descendentes férteis (Nagoshi et al., 2016, Cordeiro et al., 2020), portanto, H. armigera x H. zea híbridos podem existir no campo, com características biológicas desconhecidas (por exemplo, genes de resistência) e / ou impactos em safras relevantes. É possível que H. armigera x H. zea os híbridos podem se espalhar cripticamente e evitar a detecção.

HOSTS 2020-10-21

H. armigera é uma espécie altamente polífaga, alimentando-se principalmente de plantas e flores ornamentais. Asteraceae (N = 50 gêneros), Fabaceae (N = 42 gêneros) e Poaceae (N = 14 gêneros) são classificados como a preferência principal (Cunningham & amp Zalucki, 2014). Tem preferência por partes de frutificação de colheitas valiosas, ricas em nitrogênio. Entre os numerosos hospedeiros economicamente importantes estão: algodão, tabaco, tomate, batata, milho, linho, soja, sorgo, luzerna, Phaseolus, grão de bico, outras leguminosas e uma série de frutas (Prunus, Citrino) e árvores florestais.

Lista de hosts: Abelmoschus esculentus, Aeschynomene indica, Allium cepa, Amaranthus sp., Antirrhinum majus, Arachis hypogaea, Asparagus officinalis, Avena sativa, Beta vulgaris, Brassica oleracea, Cajanus cajan, Cannabis sativa, Capsicum annuum, Carthamus tinctorius, Chamelaucium sp., Cicer arietinum, Citrullus lanatus, Citrus Limon, Coffea arabica, Cucumis sativus, Cucurbita maxima, Delphinium sp., Dendranthema x grandiflorum, Dianthus caryophyllus, Fragaria sp., Gladiolus sp., Glycine max, Gossypium hirsutum, Guizotia abyssinica, Helianthus annuus, Ipomoea batatas, Lablab purpureus, Lathyrus odoratus, Liatris sp., Limonium sp., Linum usitatissimum, Mangifera indica, Medicago sativa, Mentha spicata, Nicotiana tabacum, Ocimum sp., Oryza sativa, Phaseolus vulgaris, Pinus radiata, Pisum sativum, Ricinus communis, Sesamum indicum, Solanum lycopersicum, Solanum melongena, Solanum tuberosum, Sonchus oleraceus, Sorghum bicolor, Sphaeranthus indicus, Spinacia oleracea, Triticum aestivum, Vigna radiata, Vigna unguiculata, Zea mays

DISTRIBUIÇÃO GEOGRÁFICA 2020-10-21

Comumente relatado no Velho Mundo (Europa, África, Ásia) e Australásia, o sistema migratório H. armigera recentemente se estabeleceu na América Central e do Sul (Paraguai e Brasil, 2013; Argentina, Uruguai e Porto Rico, 2014 Peru, 2016). Em 2015, vários espécimes foram capturados na Flórida (EUA), mas pesquisas subsequentes confirmaram que a praga não se estabeleceu (El-Lissy, 2015, Hayden & amp Brambila, 2015 NAPPO, 2016). Larvas interceptadas em portos dos Estados Unidos e da Europa sugerem que a praga pode estar presente em mais países nas Américas (Gilligan et al., 2015, 2019). Na região de EPPO, H. armigera está estabelecido apenas na parte sul, onde pode hibernar. Na parte norte, apenas populações transitórias são encontradas ao ar livre. No interior, a maioria das descobertas de pragas está ligada à importação de material vegetal infestado e está sujeita a medidas de erradicação.

Região EPPO: Albânia, Argélia, Armênia, Áustria, Azerbaijão, Bélgica, Bulgária, Chipre, Finlândia, França (continente), Geórgia, Alemanha, Grécia (continente), Hungria, Israel, Itália (continente, Sardenha, Sicilia), Jordânia, Cazaquistão, Quirguistão , Malta, Moldávia, Marrocos, Macedônia do Norte, Polônia, Portugal (continente, Açores, Madeira), Romênia, Rússia (sul da Rússia, Sibéria Ocidental), Sérvia, Eslováquia, Eslovênia, Espanha (continente, Islas Canárias), Suíça, Tunísia, Turquia, Ucrânia, Uzbequistão
África: Argélia, Angola, Benin, Botswana, Burkina Faso, Burundi, Camarões, Cabo Verde, República Centro-Africana, Chade, Congo, Congo, República Democrática do, Cote d'Ivoire, Egito, Eswatini, Etiópia, Gabão, Gâmbia, Gana, Guiné, Quênia, Lesoto, Líbia, Madagascar, Malawi, Mali, Mauritânia, Maurício, Mayotte, Marrocos, Moçambique, Namíbia, Níger, Nigéria, Reunião, Ruanda, Santa Helena, Senegal, Seychelles, Serra Leoa, Somália, África do Sul, Sudão , Tanzânia, Togo, Tunísia, Uganda, Zâmbia, Zimbábue
Ásia: Afeganistão, Bangladesh, Butão, Camboja, China (Anhui, Fujian, Guangdong, Guangxi, Guizhou, Hainan, Hebei, Heilongjiang, Henan, Hubei, Hunan, Jiangsu, Jiangxi, Jilin, Liaoning, Neimenggu, Shandong, Shanxi, Sichuan, Xangang ( Hong Kong), Xinjiang, Xizhang, Yunnan, Zhejiang), Ilhas Cocos, Índia (Ilhas Andaman e Nicobar, Andhra Pradesh, Assam, Bihar, Delhi, Gujarat, Haryana, Himachal Pradesh, Jammu e Caxemira, Karnataka, Madhya Pradesh, Maharashtra, Odisha, Punjab, Rajasthan, Sikkim, Tamil Nadu, Uttarakhand, Uttar Pradesh, West Bengal), Indonésia (Irian Jaya, Java, Maluku, Nusa Tenggara, Sulawesi, Sumatra), Irã, Iraque, Israel, Japão (Hokkaido, Honshu, Kyushu , Shikoku), Jordânia, Cazaquistão, Coreia Dem. República Popular, Coreia, República, Kuwait, Quirguistão, Laos, Líbano, Malásia (Sabah, Sarawak, Oeste), Mianmar, Nepal, Paquistão, Filipinas, Arábia Saudita, Cingapura, Sri Lanka, Síria, Taiwan, Tajiquistão, Tailândia, Turcomenistão, Emirados Árabes Unidos, Uzbequistão, Vietnã, Iêmen
América Central e Caribe: Porto Rico
América do Sul: Argentina, Brasil (Amapá, Bahia, Distrito Federal, Espírito Santo, Goiás, Maranhão, Mato Grosso, Mato Grosso do Sul, Minas Gerais, Paraná, Piauí, Rio Grande do Sul, Roraima, São Paulo), Paraguai, Peru, Uruguai
Oceânia: Samoa Americana, Austrália (Nova Gales do Sul, Território do Norte, Queensland, Austrália do Sul, Tasmânia, Victoria, Austrália Ocidental), Fiji, Guam, Kiribati, Ilhas Marshall, Micronésia, Nova Caledônia, Nova Zelândia, Ilha Norfolk, Ilhas Marianas do Norte, Palau , Papua Nova Guiné, Samoa, Ilhas Salomão, Tonga, Tuvalu, Vanuatu

BIOLOGIA 2020-10-21

H. armigera possui excelentes habilidades de dispersão. Durante a oviposição, as fêmeas podem se mover de 5 a 10 km. Eles também podem migrar por longas distâncias (& gt100 Km) e auxiliados pelo vento até 2.000 Km (Behere et al., 2013). Além disso, eles têm alta fecundidade (aproximadamente 3.000 ovos são postos por fêmea durante 10 dias a 3 semanas). Os ovos podem eclodir após 3 dias se a temperatura for favorável (27-28 e graus Celsius). A emergência de adultos ocorre de maio a junho, dependendo da latitude e pode ser vista até outubro, dependendo das condições climáticas adequadas. A ampla gama de hospedeiros da espécie permite múltiplas escolhas para refúgios durante condições desfavoráveis ​​e permite persistência e expansão geográfica. H. armigera tem um tempo de geração curto, aproximadamente 30 dias no campo, e até 12 gerações por ano com ótimas condições temperadas e tropicais (média 3-5 nas regiões mediterrâneas e subtropicais). A duração dos diferentes estágios da vida diminui com o aumento da temperatura, com um ótimo de 32,5 graus Celsius. A diapausa facultativa (genotipicamente variável) permite a persistência de populações na presença de condições adversas.

H. armigera apresenta uma ampla pré-adaptação e resistência a pesticidas sintéticos e culturas transgênicas que produzem Bacillus thuringiensis toxinasBt colheitas) (Downes et al., Pearce 2010 et al., 2017). H. armigera tem um vírus simbionte mutualístico (HaDNV-1) que aumenta sua resistência a baculovírus e Bt toxina (Xu et al., 2014). A resistência a inseticidas é mais evidente em larvas de 4º e 5º instar. A resistência a inseticidas foi amplamente relatada para piretróides sintéticos (Tossou et al., 2019). Resistência a outros inseticidas, por ex. endossulfan, carbamatos e organofosforados também foram relatados (Torres-Villa et al. 2002).

A história de vida e fecundidade de H. armigera foi descrito em diferentes plantas hospedeiras principais. O tempo de desenvolvimento (emergência do ovo ao adulto) foi estimado em 15 dias no grão-de-bico, 12 no feijão-marinho e feijão-caupi e 11 no milho e soja. A duração do período larval é de aproximadamente 3 dias no feijão-caupi, grão de bico e soja, enquanto no milho é de aproximadamente 4 dias. O estágio larval pré-pupal imóvel abrange 13-14 dias dependendo da planta hospedeira, chegando a 14,4 dias na soja. O período de pupa é maior no milho (42,7 dias) e menor no grão-de-bico (35,2 dias). As mariposas adultas podem viver até 52 dias no milho e aproximadamente 49 dias no feijão-caupi, soja e grão de bico. A fecundidade foi registrada como maior no feijão-caupi com 93 ovos / dia e fecundidade bruta geral de 778 ovos e menor no milho, com 56 ovos / dia e fecundidade bruta 417 (Fathipour et al., 2020). Larvas criadas em dieta artificial apresentam uma preferência distinta de hospedeiro, diminuindo do tabaco para o algodão, seguido pelo tomate e pimenta malagueta. Mulheres adultas preferem tabaco para oviposição (Hu et al., 2018). A preferência do hospedeiro é variável dentro da mesma espécie de planta hospedeira. Diferentes variedades de soja influenciam a preferência alimentar e o comportamento das larvas. Naseri et al. (2009) testaram o comportamento alimentar, o tempo de desenvolvimento e a mortalidade de H. armigera larvas em treze variedades de soja encontrando diferenças na duração do tempo de desenvolvimento (34 a 42 dias), o período larval (17-23 dias), a longevidade dos machos (8,8 a 12,7 dias) e das fêmeas (8,4 a 10,9 dias). A mortalidade das larvas foi muito diferente dependendo da variedade de soja, variando de 8,3% a 29,6%.

DETECÇÃO E IDENTIFICAÇÃO 2020-10-21

Sintomas

Os furos são visíveis na base dos botões das flores, sendo este último oco. Bracteoles estão espalhados e enrolados para baixo. Folhas e brotos também podem ser consumidos pelas larvas.

Em tomates

Os frutos novos são invadidos e caem. As infecções secundárias por outros organismos levam ao apodrecimento.

Espigas são invadidas e o grão em desenvolvimento é consumido. As infecções bacterianas secundárias são comuns.

Morfologia

Branco-amarelado e brilhante no início, mudando para marrom-escuro antes da eclosão em forma de romã, 0,4-0,6 mm de diâmetro, a área apical ao redor da micrópila é lisa, o resto da superfície esculpida na forma de aproximadamente 24 costelas longitudinais, alternadas alguns sendo ligeiramente mais curtos, com numerosas cristas transversais mais finas entre eles colocados em plantas que estão florescendo, ou estão prestes a produzir flores.

O primeiro e o segundo ínstares larvais são geralmente branco-amarelado a marrom-avermelhado, sem marcas proeminentes na cabeça, escudo protorácico, escudo supra-anal e pernas protorácicas são marrom-escuro a preto, assim como os espiráculos e bases tuberculadas das cerdas , que dão à larva uma aparência manchada, os prolegs (5 pares) estão presentes no terceiro ao sexto e décimo segmentos abdominais. Um padrão característico se desenvolve em instares subsequentes. As larvas totalmente crescidas têm cerca de 30-40 mm de comprimento; a cabeça é marrom e mosqueada; as placas protorácica e supra-anal e as pernas são marrom-claras, apenas garras e espiráculos permanecendo pretos; a superfície da pele consiste em tubérculos estreitos e minúsculos. Os pontos de crochê nas próteses são dispostos em arco. O segmento final do corpo é alongado. Padrão de cor: uma faixa dorsal mediana estreita e escura de cada lado, primeiro uma faixa larga clara, depois uma faixa larga escura na linha lateral, uma faixa larga e muito clara na qual a fileira de espiráculos aparece claramente. A parte inferior é uniformemente bastante pálida. No padrão dorsal básico, numerosas faixas longitudinais muito estreitas, um tanto onduladas ou enrugadas são sobrepostas. A cor é extremamente variável dependendo da dieta, e o padrão descrito pode ser formado por tons de verde, amarelo-palha e rosa a marrom-avermelhado ou mesmo preto.

Castanho-mogno, com 14-18 mm de comprimento, superfície lisa, arredondada tanto para a frente como para a posterior, com dois espinhos paralelos afilados na ponta posterior.

Mariposa de corpo robusto de aparência noctuídea típica, com 3,5-4 cm de envergadura de asa larga no tórax e depois afinando, 14-18 mm de comprimento variável, mas masculino geralmente cinza-esverdeado e feminino laranja-marrom. As asas anteriores apresentam uma linha de sete a oito manchas pretas na margem e uma faixa larga, irregular e transversal marrom. As asas posteriores são de cor palha-clara com uma ampla borda marrom-escura que contém uma mancha mais clara; têm margens amareladas e veias fortemente marcadas e uma marca escura em forma de vírgula no meio. As antenas são cobertas por pêlos finos.

Para obter mais informações, consulte Dominguez Garcia-Tejero (1957), Hardwick (1965), Cayrol (1972), Delatte (1973).

Métodos de detecção e inspeção

As larvas que se alimentam podem ser vistas na superfície das plantas, mas frequentemente estão escondidas nos órgãos das plantas (flores, frutos, etc.). Os furos podem ser visíveis, mas caso contrário, é necessário abrir os órgãos da planta para detectar a praga em seu estágio larval. As larvas mostram uma preferência alimentar para as partes reprodutivas da planta hospedeira, e a superfície inferior das folhas é um local de oviposição comum preferido.

As armadilhas com feromônios sexuais (armadilhas específicas para espécies ou gêneros) substituíram as armadilhas luminosas (armadilhas para espécies não específicas), pois as primeiras fornecem uma ferramenta mais eficaz para monitorar mariposas adultas. Essas armadilhas facilitam a identificação e contagem e interrompem o acasalamento. As armadilhas de feromônio também podem detectar a emergência de mariposas adultas no início da primavera, auxiliando assim nas medidas de controle e avaliações de distribuição (Reddy & amp Manjunatha, 2000 Baker et al., 2011). Armadilhas de balde com isca de feromônio têm sido relatadas como as armadilhas mais eficientes para capturar Helicoverpa mariposas, por exemplo armadilha de balde (Guerrero et al., 2014). Para a captura em massa de adultos, uma média de 30-50 armadilhas de feromônios por hectare levou a aproximadamente 9.000 adultos / armadilha em plantações de tomate infestadas (Shah et al., 2017). As colheitas de armadilhas podem atrair, desviar, interceptar e reter H. armigera. Culturas com armadilhas de primavera podem atrair H. armigera à medida que emergem de pupas durante o inverno e reduzem o acúmulo de populações no início da temporada, além de permitir a detecção precoce da praga. As armadilhas devem ser colocadas a 1,5 a 1,8 m acima do solo (Aheer et al., 2009).

A identificação de todas as fases na região de EPPO será difícil no campo, caso o americano muito semelhante (H. zea) ou australiano (H. punctigera) espécies sejam introduzidas e estabelecidas. A separação do adulto de espécies semelhantes é feita de forma mais confiável por referência à genitália masculina (Hardwick, 1965 Pogue, 2004) ou usando testes moleculares. Protocolos para códigos de barras de DNA com base em COI são descritos no Apêndice 1 de PM 7/129 e podem ser usados ​​para apoiar a identificação de H. armigera e H. zea espécimes (EPPO, 2016 - em revisão). Um teste PCR multiplex em tempo real também foi desenvolvido para distinguir H. armigera e H. zea (Gilligan et al. 2015). Dado o conhecido impacto econômico da espécie em todo o mundo, a identificação precisa é a chave para evitar impactos dispendiosos em culturas econômicas valiosas.

O Protocolo de Diagnóstico EPPO para H. armigera fornece recomendações sobre como detectar e identificar a praga (Norma EPPO PM 7/19, 2003 - em revisão).

CAMINHOS DE MOVIMENTO 2020-10-21

As mariposas são migrantes facultativos. Quando as condições se tornam desfavoráveis, os adultos podem migrar por longas distâncias, levados pelo vento, por exemplo, do sul da Europa para o Reino Unido (Pedgley, 1985). Em regiões de alta latitude sem populações reprodutoras, as mariposas aparecem no final do verão após dias de ventos do sul e temperatura do ar acima de um limite de 11 ° C para o desenvolvimento larval. No comércio internacional, ovos e larvas de H. armigera pode ser transportado com plantas para plantio, flores de corte e vegetais (EFSA, 2014). H. armigera é regularmente interceptado em remessas de mudas e flores cortadas (por exemplo, crisântemos, Dianthus, rosas), frutas e vegetais (por exemplo, capsicum, morangos, espigas de milho, manga, ervilhas).

SIGNIFICADO DA PESTA 2020-10-21

Impacto econômico

H. armigera Foi relatado que causou sérias perdas em toda a sua área de distribuição, em particular no algodão, tomate e milho. A perda estimada na produtividade da cultura (por exemplo, milho, soja, tomate e algodão) na Ásia, Europa, África e Australásia é superior a 2 bilhões de dólares anualmente (Tay et al., 2013). Na Índia, as perdas para a produção de feijão bóer e grão de bico ultrapassaram 300 milhões de dólares (Reed & amp Pawar, 1981). No Brasil, um ano após a detecção, o impacto econômico foi estimado em 1 bilhão de dólares (Mastrangelo et al., 2014). Danos à soja no Brasil atingiram 100% emBt soja.

Por exemplo, no algodão, duas a três larvas de uma planta podem destruir todas as cápsulas em 15 dias no milho, consomem grãos no tomate, invadem as frutas, impedindo o desenvolvimento e causando a queda dos frutos. Um surto deste noctuida ocorreu em jovens Pinus radiata na Nova Zelândia em 1969 e 1970, quando as larvas consumiram mais de 50% da folhagem de cerca de 60% das árvores. Danos foram relatados na Índia em batatas, girassóis, Guizotia abissínica, feijão bóer e algodão. Danos no algodão de H. armigera pode ser de até 100% em campos não mitigados.

Na região de EPPO, H. armigera é de significativa importância econômica em Israel, Marrocos, Portugal, Rússia e Espanha e de menor importância nos demais países onde está estabelecida.

Ao controle

H. armigera é uma praga de difícil controle, pois é altamente polífaga, suas larvas vivem dentro de suas plantas hospedeiras e ela desenvolveu resistência a inúmeros pesticidas. Esforços estão sendo feitos em muitos países para controlar H. armigera, usando meios biológicos e químicos. Uma abordagem combinada de manejo integrado de pragas abrangendo várias estratégias em paralelo, por ex. predadores e parasitóides, bem como patógenos como agentes de biocontrole e estratégias de manejo de culturas (por exemplo, culturas consorciadas para sustentar predadores e parasitóides, culturas de armadilhas), e o uso de cultivares de plantas resistentes é recomendado e comprovadamente eficaz (Duraimurugan & amp Regupathy, 2005).

Inimigos naturais foram encontrados, incluindo parasitóides e predadores de ovos, larvas e pupas. Estes incluem Braconidae, Ichneumonidae, Trichogrammatidae, Scelionidae e Tachinidae. Predadores incluem Chrysopidae, Nabidae, Anthocoridae (Orius spp. e Geocoris spp.), Miridae, Coleoptera e Araneae. O sucesso foi alcançado em culturas específicas com liberações aumentativas de inimigos naturais e sistemas de biocontrole complexos que incorporam vários predadores / parasitóides. Na China, Trichogramma chilonis demonstrou ser o principal parasitóide de ovo de H. armigera em algodão (Liu et al., 2016). Fathipour e Sederatian (2013) sugerem que os inimigos naturais fornecem benefícios consideráveis ​​na soja, mas não podem controlar H. armigera populações sozinhas, especialmente em áreas propensas a invasões migratórias. Moore et al. (2004) testaram o potencial do vírus da poliedrose nuclear (NPV) para o biocontrole da praga em citros, enquanto Jeyarani et al. (2010) mostraram o mesmo padrão de biocontrole em algodão e grão de bico. B. thuringiensis demonstrou reduzir consideravelmente as populações europeias de H. armigera (Avilla et al., 2005). Recentemente (Chen et al., 2020) um novo vírus com potencial para biocontrole de H. armigera foi identificado, Heliothis virescens ascovirus 3i (HvAV-3i).

A utilização de plantas de cultivo resistentes, e. cultivares de grão de bico (Cicer arietinum) em combinação com B. thuringiensis também tem sido uma estratégia eficaz de biocontrole para larvas de H. armigera (Devi, 2011) embora resistência a Bt algodão transgênico também foi relatado (Gunning et al., 2005). As pupas de inverno podem ser controladas com aração no outono e inverno, em safras de maturação tardia, expondo as pupas ao calor e à predação (Duffield, 2004).

Muitas estratégias de gestão de culturas comumente usadas para melhorar a saúde das culturas também se aplicam ao controle de H. armigera. O cultivo adequado, irrigação, destruição de resíduos de culturas e rotação de culturas podem ajudar substancialmente a manter as populações abaixo de um nível de limite econômico. Colheitas armadilha de verão podem desviar H. armigera de uma safra economicamente importante. Essas culturas armadilha também têm sido utilizadas para aumentar as populações de inimigos naturais. Uma cultura de armadilha de sorgo, usada para manejar H. armigera, aumento das taxas de parasitismo por Trichogramma chilonis na população de pragas (Virk et al., 2004). Essas culturas armadilha devem ser destruídas antes da pupação de H. armigera larvas para deter a progressão da praga.

Risco fitossanitário

H. armigera é uma praga polífaga que pode atacar muitas culturas de importância econômica na região da EPPO (por exemplo, milho, tomate e várias culturas vegetais, plantas ornamentais). Embora seja certamente uma praga séria ao ar livre nos países mediterrâneos, o status de quarentena surge principalmente do risco de introdução em plantações de estufa no norte da Europa, no entanto, as tendências climáticas globais atuais podem mudar e / ou expandir a distribuição das espécies. Relatórios de H. armigera ser pego em armadilhas luminosas durante o verão em países do norte da UE, como Suécia, Reino Unido e Holanda (Franzen, 2004 Vos, 2000, 2003 Pedgley, 1985 Waring, 2006) atesta que a espécie pode se mover para latitudes mais altas. A diapausa facultativa presente nesta espécie pode facilitar a adaptação a temperaturas sazonais mais extremas. CLIMEX (modelo de nicho bioclimático) tem sido usado para estimar a adequação climática para H. armigera globalmente e corrobora essas afirmações (Kriticos et al., 2015). As áreas adequadas para expansão com base na existência de culturas adequadas, padrões de irrigação, mecanismos de estresse por frio e taxas de acúmulo de estresse por calor usando CLIMEX prevê uma distribuição mais ampla da praga que vai da América do Sul à América do Norte (até a fronteira com o Canadá), África do Sul ao Norte da Europa e Sul da Rússia, Ásia Oriental e Austrália.

MEDIDAS FITOSSANITÁRIAS 2020-10-21

As plantas importadas para o plantio devem ser oriundas de uma área onde H. armigera não ocorre ou de um local de produção onde H. armigera não foi detectado durante os 3 meses anteriores.

REFERÊNCIAS 2020-10-21

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RECONHECIMENTOS 2020-11-10

Esta folha de dados foi amplamente revisada em 2020 pelo Dr. Jose A. P. Marcelino, da Universidade da Flórida. Sua valiosa contribuição é reconhecida com gratidão.

Como citar esta folha de dados?

Histórico da folha de dados 2020-10-21

Esta folha de dados foi publicada pela primeira vez no Boletim da EPPO em 1981 e revisada nas duas edições de & # 39Pestes Quarantinas para a Europa & # 39 em 1992 e 1997, bem como em 2020. Ela agora é mantida em formato eletrônico na Base de Dados Global da EPPO . As seções em & # 39Identidade & # 39, & lsquoHosts & rsquo e & # 39Distribuição geográfica & # 39 são atualizadas automaticamente a partir do banco de dados. Para outras seções, a data da última revisão é indicada à direita.

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EPPO (1981) Folhas de dados sobre organismos de quarentena No. 110, Helicoverpa armigera. Boletim OEPP / Boletim EPPO 11(1), 1-6.


Patógenos de insetos

Fungos Aquáticos

Os fungos aquáticos de dois tipos que atacam as larvas de mosquitos têm recebido estudos consideráveis: espécies de Coelomomyces (classe Quitridiomicetos: ordem Blastocladiales) e Lagenidium giganteum (classe Oomycetes: ordem Lagenidiales).

O gênero Coelomomyces compreende mais de 80 espécies de fungos obrigatoriamente parasitas que têm um ciclo de vida complexo envolvendo uma alternância das gerações sexual (gametofítica) e assexuada (esporofítica). A fase sexual parasita um hospedeiro microcrustáceo, geralmente um copépode, enquanto a geração assexuada se desenvolve, com raras exceções, em larvas de mosquito. No ciclo de vida, um zigosporo biflagelado invade a hemocele de uma larva de mosquito, onde produz um esporófito que coloniza o corpo e forma esporângios resistentes. A larva morre e subsequentemente os esporângios sofrem meiose, produzindo meiosporos uniflagelados que invadem a hemocele de um copépode hospedeiro, onde um gametófito se desenvolve. Na maturação, o gametófito se cliva, formando milhares de gametas uniflagelados. A clivagem resulta na morte do copépode e na fuga dos gametas, que completam o ciclo de vida ao se fundir em zigosporos biflagelados, que então procuram outro mosquito hospedeiro. Os ciclos de vida desses fungos são altamente adaptados aos de seus hospedeiros. Além disso, como parasitas obrigatórios, esses fungos são muito exigentes em suas necessidades nutricionais e, como resultado, nenhuma espécie de Coelomomyces foi cultivado em vitro.

Coelomomyces, o maior gênero de fungos parasitas de insetos, foi relatado em todo o mundo a partir de inúmeras espécies de mosquitos, muitos dos quais são vetores de doenças importantes, como malária e filiariasis. Em algumas dessas espécies, Anopheles gambiae na África, por exemplo, epizootias causadas em algumas áreas por Coelomomyces matar mais de 95% das populações de larvas. Essas epizootias levaram a esforços para desenvolver várias espécies como agentes de controle biológico. Por várias razões, no entanto, esses esforços foram interrompidos. Um fator importante foi a descoberta de que o ciclo de vida requer um segundo hospedeiro para ser concluído. Também contribuíram a incapacidade de cultivar esses fungos em vitro e o desenvolvimento de Bti como um larvicida bacteriano para mosquitos.

Embora seja improvável que Coelomomyces fungos serão desenvolvidos como agentes de controle biológico, o interesse permanece no desenvolvimento L. giganteum. Este fungo oomiceto é facilmente cultivado em meio artificial e não requer um hospedeiro alternativo. No ciclo de vida, um zoósporo móvel invade uma larva de mosquito através da cutícula. Uma vez dentro da hemocele, o fungo coloniza o corpo por um período de 2–3 dias, produzindo um extenso micélio consistindo principalmente de hifas não septadas. Perto do final do crescimento, as hifas tornam-se septadas e de cada segmento se forma um tubo de saída que cresce de volta através da cutícula e forma zoosporângios na ponta. Os zoósporos se diferenciam rapidamente nestes, saindo por um poro apical em busca de um novo substrato. Além desse ciclo assexuado, oósporos sexuais resistentes de paredes espessas podem ser formados no cadáver do mosquito.


Os tricópteros e os lepidópteros podem ser distinguidos a olho nu? - Biologia

BORBOLETAS, TRAÇAS E PATINHAS (LEPIDOPTERA) DA COLÔMBIA BRITÂNICA


Borboleta monarca (Danaus Plexippus), foto de Diane Williamson

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Extraído da próxima publicação As famílias de insetos da Colúmbia Britânica.

Clique aqui para ler sobre as famílias de lepidópteros da Colúmbia Britânica.
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Em British Columbia, existem cerca de 2.285 espécies de Lepidoptera registradas - 184 são borboletas (incluindo 29 skippers) e 2101 são mariposas. Esses números variam de acordo com as autoridades consultadas. Embora haja reconhecimento público de dois grupos distintos e separados, & quot mariposas & quot e & quotbutterflies & quot, os especialistas incluem borboletas e skippers intimamente relacionados dentro de conjuntos muito maiores de mariposas. Todos estes são então classificados na ordem de inseto único Lepidoptera. A introdução abaixo fornece uma visão deste grupo com base na experiência dos autores.

Globalmente, cerca de 150.000 espécies de lepidópteros vivos foram descritas em aproximadamente 124 famílias. Em nível de espécie, isso é cerca de 17% da fauna de insetos mundialmente conhecida. No entanto, as estimativas sugerem que pode haver duas ou três vezes esse número de espécies na ordem. Os lepidópteros são a maior linhagem de organismos herbívoros, rivalizados apenas pelo enorme clado de besouros fitófagos (coleópteros) que inclui gorgulhos, besouros das folhas e besouros de chifre longo, um grupo de pelo menos 125.000 espécies nomeadas. As plantas angiospermas são os principais hospedeiros. O registro fóssil é esparso e é melhor representado por inclusões de âmbar e minas de folhas em folhas fósseis. Embora os primeiros fósseis de mariposas conhecidos sejam do início do Jurássico, 190 milhões de anos atrás, a ordem se diversificou amplamente no período Cretáceo e no início do Terciário com as plantas com flores. Assim, de todas as ordens de insetos, os Lepidoptera irradiaram mais recentemente.

As larvas lepidópteras são comumente chamadas de lagartas. Geralmente cilíndricos, possuem cabeça bem desenvolvida, tórax (o topo do protórax geralmente é esclerotizado) e abdome 10 segmentado. Existem três pares de pernas torácicas segmentadas de 5 e geralmente cinco pares de prolegs abdominais (segmentos 3 a 6 e 10). Prolegs são curtos e carnudos; as pontas geralmente têm pequenos ganchos (crochê). Em alguns grupos, as pernas torácicas e / ou pró-pernas podem ser reduzidas ou perdidas. As larvas não têm olhos compostos, mas geralmente há seis ocelos em cada lado da cabeça. As larvas se alimentam principalmente de mandíbulas mastigatórias, embora estas sejam modificadas em algumas formas de alimentação de seiva e mineração de folhas. Muitas larvas são peludas ou espinhosas de maneiras características, às vezes essas projeções são pungentes. A seda é fiada a partir de glândulas salivares modificadas que se abrem sob a boca; a seda é usada principalmente para fazer casulos ou outros abrigos. Muitas larvas pupam em casulos, outras não fazem nenhuma. As pupas das mariposas são geralmente lisas e marrons. As borboletas geralmente não formam um casulo e a pupa nua é freqüentemente chamada de crisálida & ndash ela pode ser esculpida ou colorida e freqüentemente é presa a uma planta com um cinto de seda.


Asa Angular Satyr (Polygonia satyrus), foto de Ian Lane

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Como reconhecer uma borboleta ou mariposa

Ao contrário da crença popular de que borboletas e mariposas são dois grupos separados que compõem os lepidópteros, as borboletas são apenas relativamente recentemente derivadas, coloridas, mariposas voadoras diurnas nos macrolepidópteros, consistindo nas superfamílias Hesperioidea e Papilionoidea. As mariposas mais estreitamente relacionadas estão na pequena família neotropical Hedylidae (cerca de 40 espécies no gênero Macrosoma), que muitas autoridades consideram ser borboletas por compartilharem alguns caracteres ancestrais de borboletas, incluindo uma pupa cintada, ovos eretos e uma bolsa no segmento abdominal 1.

Os membros dos lepidópteros se distinguem na fase adulta pela cobertura densa de escamas sobrepostas na cabeça, corpo e apêndices, incluindo os dois pares de asas membranosas. As envergaduras variam de cerca de 3 mm a 280 mm. Algumas espécies têm asas reduzidas e não funcionais; geralmente são fêmeas, mas em algumas espécies ambos os sexos não podem voar. As escamas são coloridas e dispostas em inúmeros padrões, desde os sutis e enigmáticos até os brilhantes e vistosos.

Os olhos compostos são grandes, muitas vezes com pelos entre as facetas ocelos ausentes (em borboletas e muitas mariposas) ou estão presentes, um acima de cada olho. As antenas são longas e delgadas, geralmente revestidas de escamas e compostas por dois segmentos basais e um flagelo de 20 a 60 unidades. O flagelo é variável em estrutura e frequentemente mais complexo nos homens do que nas mulheres. Incluem-se formas em forma de fio, dente de serra e taco e antenas em forma de pente ou plumose são comuns. O aparelho bucal quase sempre está sugando. Uma tromba formada pelas gáleas alongadas e estriadas dos maxilares (mantidas juntas por minúsculos espinhos entrelaçados) geralmente está presente. Este tubo de alimentação é normalmente longo e enrolado sob a cabeça quando não está em uso. As mandíbulas são quase sempre vestigiais ou ausentes. Os palpos labiais, geralmente 3 segmentados, são normalmente bem desenvolvidos e conspicuamente estendidos na frente da face. Os palpos maxilares estão normalmente reduzidos ou ausentes. O aparelho bucal é reduzido e sem função em alguns grupos de mariposas.


Elegant Sheep-Moth (Hemilenca Eglanterina) na UBC Spencer
Coleção do Museu Entomológico. Foto de Launi Lucus.

O protórax é geralmente pequeno, o mesotórax grande, o metatórax é um pouco menor que o mesotórax nas linhagens muito antigas, mas é muito menor na Heteroneura. Famílias de Noctuoidea possuem órgãos timpânicos em cavidades metatorácicas. As pernas são desenvolvidas para caminhar e pousar. As patas dianteiras são reduzidas em algumas famílias de borboletas, as patas traseiras em alguns hepialídeos e todas as patas geométricas são vestigiais em algumas fêmeas de Psychidae. A tíbia anterior tem um esporão apical ou nenhum. A superfície interna dessa tíbia geralmente apresenta uma epífise, um apêndice basalmente articulado em forma de esporão usado para limpar as antenas e a tromba. A tíbia média geralmente tem um par de esporas apicais e a tíbia posterior dois pares - um par apical e um par medial. Os tarsos são 5 segmentados e apresentam um par de garras, que podem ser simples, dentadas, bífidas ou reduzidas.

As asas são o atributo lepidóptero mais proeminente. Eles são geralmente cobertos nas veias e na membrana com duas camadas de cerdas (escamas) achatadas, minúsculas e alveoladas, que normalmente contêm pigmentos coloridos e são finamente estriadas e geralmente ocas e microscopicamente perfuradas. As cores iridescentes são o resultado da estrutura da escala. Muitos homens têm escamas de odor especializadas que ajudam a espalhar feromônios produzidos por glândulas associadas. Essas escamas podem estar espalhadas entre outras escamas ou estão concentradas em manchas, tufos ou dobras de asa. A venação é relativamente simples, com poucas veias cruzadas. Os grupos mais ancestrais têm asas dianteiras e traseiras de formato semelhante e a veia em ambas as asas é semelhante (homoneurosa), lembrando a dos Trichoptera. A veia Rs tem quatro ramos, Sc e R1 podem ter dois ramos, M quase sempre é tri-ramificado, CuP está presente e normalmente existem três veias anais. A venação da Heteroneura (& ldquodiferent veins & rdquo) mostra simplificação variável por meio de fusão e perda de veias, especialmente na asa posterior. O raio na asa anterior geralmente tem cinco ramos, mas Rs na asa posterior não é ramificado e R1 é fundido com Sc. A haste da mídia é perdida na maioria dos grupos, resultando na formação de uma grande célula discal no centro de ambas as asas e, nas superfamílias mais avançadas, o CuP está ausente em ambas as asas.


Repolho Branco (Pieris Rapae) foto de Ian Lane

O acoplamento das asas permite que as asas dianteiras e traseiras batam juntas. As mariposas com venação homônima prendem as asas com um jugum, um lóbulo na margem interna da asa anterior perto da base. A maioria das mariposas na Heteroneura usa um mecanismo de gancho e olho composto de um frênulo na base da asa posterior e retináculo na parte inferior da asa anterior. Nos homens, o frênulo é uma cerda única composta; o retináculo é um lobo membranoso. As fêmeas têm duas ou mais cerdas que se unem a uma fileira de cerdas na asa anterior. As borboletas e algumas mariposas não têm um frênulo, mas têm uma área umeral expandida na base da asa posterior que prende a parte inferior da asa anterior. As borboletas geralmente descansam com as asas mantidas juntas acima do corpo, as mariposas seguram as asas estendidas contra o substrato, sobrepostas e planas sobre o corpo, como um telhado ou enroladas ao redor do corpo.

No abdômen, o topo do segmento 1 é significativamente desclerotizado, os segmentos 7 a 11 podem ser altamente modificados para formar a genitália. Um par de órgãos do tímpano pode estar presente (por exemplo, em Pyraloidea, Geometroidea, Drepanoidea) perto da base do abdômen. Os cercos estão perdidos. As glândulas de feromônio podem ocorrer em vários locais do abdômen.


Senhora Pintada (Vannessa cardui), foto de Diane Williamson

As aproximadamente 200 espécies de Micropterigidae, de todos os Lepidoptera vivos, são as mais semelhantes às formas jurássicas originais. Junto com duas pequenas famílias do hemisfério sul, essas mariposas ainda usam mandíbulas para comer pólen e não desenvolveram uma tromba para sugar fluidos. Muitas larvas micropterígidas se alimentam de detritos de plantas e fungos, provavelmente a dieta original dos ancestrais dos Trichoptera e Lepidoptera. O enorme grupo Glossata, o & ldquotongued & rdquo Lepidoptera, que surgiu no início do Cretáceo, compreende o resto da ordem. As mandíbulas adultas nessas espécies foram perdidas ou reduzidas e uma tromba usada para se alimentar de fluidos evoluiu da maxila. A estrutura desse tubo de alimentação é única nos insetos. A Glossata também apresenta outra grande inovação, as fieiras sob a boca das larvas que dispensam seda. E todas, exceto as mariposas glossatan mais primitivas, têm escamas de asas ocas. A maioria das famílias mais antigas de Glossata tem larvas que se alimentam de minas de folhas ou ficam escondidas.

A grande maioria dos Glossata está incluída na Heteroneura, onde as veias da asa posterior são reduzidas e têm um padrão diferente do da asa anterior. Outra inovação crítica neste grupo é o frênulo que liga a asa posterior à asa anterior. Dentro da Heteroneura, mais de 100 famílias e quase 99% das espécies de lepidópteros pertencem à Ditrysia, uma linhagem cujas fêmeas têm aberturas genitais separadas para receber espermatozóides e botar ovos e onde esses dois dutos estão ligados internamente. As larvas de algumas linhagens primitivas (por exemplo, Gracillariidae) retêm os hábitos de extração de folhas e aborrecimento de plantas ou se escondem em caixas ou teias, mas a maioria se alimenta de plantas expostas.

Os Macrolepidoptera, um grupo ditrísio contendo borboletas, skippers e 26 famílias de mariposas (incluindo a maioria das mais familiares) surgiram em torno da fronteira do Cretáceo-Terciário. As espécies de macrolepidópteros compreendem cerca de 60% da ordem, embora a maioria das milhares de espécies não descritas certamente venha de linhagens anteriores, os chamados microlepidópteros. Os macrolepidópteros se distinguem por características como a perda completa da veia da asa CuP e o arranjo crescente dos crochês na borda interna da extremidade do proleg larval.

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Melissa Blue, homem, (Lycaeides melissa), foto de Werner Eigelsreiter

Em espécies diurnas, os machos são inicialmente atraídos pelas fêmeas por estímulos visuais nas formas noturnas, os machos respondem aos feromônios sexuais de fêmeas receptivas. O acasalamento pode ser estimulado pela emissão de feromônios masculinos de glândulas especiais no abdômen, pernas e asas. Os ovos são geralmente postos na planta alimentar ou perto dela, individualmente ou em lotes. Alguns inserem ovos no tecido da planta com ovipositores cortantes (por exemplo, Incurvarioidea, Eriocraniidae) ou em bainhas de folhas de grama (alguns Noctuidae).

As espécies de lepidópteros utilizam todas as partes das plantas - raízes, tronco, casca, galhos, galhos, folhas, botões, flores, frutos, sementes, galhas e material caído. As larvas que se alimentam em situações ocultas - brocas de madeira, mineradores de folhas e cascas, casebearers, fileiras de folhas e roletes de folhas - geralmente pertencem a famílias mais primitivas comedouros expostos, especialmente aqueles que se alimentam de dia, são de linhagens mais recentes. O hábito principalmente fitófago (comedor de plantas) dos Lepidópteros significa que a ordem não mostra a enorme diversidade trófica dos Coleópteros, Hymenópteros e Dípteros, embora haja alguma diversidade em alimentos além da matéria vegetal fresca. Algumas lagartas são carnívoras e comem massas de ovos de outros Lepidoptera (alguns Pyralidae) ou aranhas (alguns Oecophoridae), outras matam larvas de formigas (alguns Lycaenidae) ou cochonilhas (alguns Batrachedridae, Oecophoridae, Noctuidae). Ainda outros (Epipyropidae) são ectoparasitas em cigarrinhas e cigarrinhas e alguns grupos (por exemplo, Tineidae) se alimentam de material de origem animal, como lã e queratina. A família Pyralidae é especialmente diversa em sua dieta. Além de plantas, material vegetal fresco e em decomposição de todos os tipos, os alimentos variam de favos de cera de abelhas a espinhos de lagarta e grãos processados, de insetos escamados a preguiça e esterco de morcego. Nos Crambidae, várias centenas de espécies possuem larvas aquáticas que se alimentam de plantas aquáticas. Os adultos se alimentam principalmente de néctar e outros alimentos líquidos, como seiva de árvore em fermentação, melada de inseto e fluidos ricos em alimentos na lama e esterco. Mariposas no gênero noctuida do sudeste asiático Calyptra têm ganchos rasgadores na tromba, eles sugam o suco de frutas de casca grossa e o sangue de mamíferos. Em alguns grupos de lepidópteros, os adultos não se alimentam.


Esfinge de um olho (Smitherinthus ceerisyi) Foto de Ian Lane.

Os inimigos naturais dos lepidópteros são muitos e variados. Os ovos são parasitados por vespas nas larvas Chalicdoidea e Platygastroidea são mortas por ácaros, aranhas, vespas (especialmente Vespidae e Sphecidae) e vertebrados, principalmente aves. Larvas e pupas são fortemente parasitadas por nematóides, parasitóides himenópteros em Chalcidoidea, Braconidae e Ichneumonidae e por moscas dos Tachinidae. As doenças bacterianas e virais matam um grande número. Os seres humanos se alimentam de algumas espécies, por exemplo, algumas larvas grandes de cossídeos são comidas por aborígenes australianos e larvas do gênero saturni Colorádia são usados ​​como alimento por nativos americanos no oeste dos Estados Unidos. Os adultos são predados por plantas predadoras, insetos e aranhas, pássaros, morcegos e muitos outros organismos.

Para se defender contra muitos desses ataques, os membros da ordem são mestres da dissimulação e do engano. Algumas larvas vivem em caixas ou teias de seda, outras rolam ou amarram folhas e se escondem nelas. Muitos adultos e imaturos são surpreendentemente camuflados como casca de árvore, líquen, folhas e galhos. Alguns até imitam vertebrados perigosos, como cobras, usando manchas oculares e outras marcas surpreendentes. Muitas espécies fingem morrer quando atacadas, outras emitem substâncias químicas nocivas. Sesiids, especialmente, podem ser imitadores convincentes de vespas picadoras. As escamas características dos adultos são densas, parecidas com poeira e escorregadias; elas se desprendem facilmente do corpo e das asas, às vezes permitindo que um inseto atacado escape de um predador ou de uma teia de aranha pegajosa. Cabelos densos e espinhos em lagartas agem como barreiras para alguns parasitas e, especialmente aquelas projeções que irritam, detêm alguns predadores vertebrados. Muitas larvas e adultos sequestram produtos químicos desagradáveis ​​ou venenosos, desencorajando a predação por vertebrados. Centenas de espécies diurnas, desagradáveis ​​ou não, ganham alguma proteção contra predadores imitando espécies venenosas ou exibindo cores brilhantes e de alerta. A maioria das mariposas adultas evita os predadores de pássaros voando à noite, mas os morcegos representam um problema sério para elas. Muitos grupos têm órgãos do tímpano que permitem às mariposas ouvir os pulsos do sonar dos morcegos e realizar ações evasivas, algumas das quais as mariposas tigres emitem contra-pulsos para confundir os morcegos que estão atacando.


Woodland Skipper, foto de Ian Lane

Os lepidópteros são um grupo importante de organismos herbívoros e, portanto, de grande importância econômica na agricultura, horticultura e silvicultura. As pragas agrícolas de grãos e vegetais são numerosas e incluem os vermes do cartucho e os cutworms dos Noctuidae. Esta família também contém Heliothis zea (Boddie), o Earworm do Milho, uma praga séria de uma longa lista de culturas. A lista de pragas da cultura de pomares é encabeçada pelo tortricida Cydia pomonella (Linnaeus), a Mariposa Codling. Os desfolhadores da floresta também são legiões. Entre os mais prejudiciais estão Choristoneura fumiferana (Clemens) (Spruce Budworm) e seu parente ocidental C. occidentalis Freeman, o geometrid Lambdina fiscellaria lugubrosa (Hulst) (Looper de Hemlock Ocidental), Orgyia pseudotsugata (McDunnough) (Douglas-fir Tussock Moth) e as lagartas de tenda do Lasiocampidae. Várias mariposas cosmopolitas introduzidas são pragas graves de mercadorias armazenadas em residências e armazéns & ndash as mariposas da roupa dos Tineidae e as mariposas da refeição dos Pyralidae são as mais óbvias. Mariposas cerosas (Pyralidae) às vezes são economicamente destrutivas para as colônias de abelhas. Do ponto de vista econômico, qualquer papel negativo dos lepidópteros como predadores e parasitas é mínimo. Eles têm pouca importância médica ou veterinária, embora os pêlos das larvas e escamas adultas possam ser alergênicos e os pêlos e espinhas irritantes de algumas larvas causem dor e erupções cutâneas.

Ao contrário das moscas e besouros, os lepidópteros desempenham apenas um pequeno papel na decomposição do material orgânico. Alguns grupos são detritovores e fungívoros e, em certa medida, ajudam na decomposição de restos de animais e vegetais, por exemplo, as mariposas da roupa tineid reciclam lã, penas e outros produtos de origem animal. As espécies de lepidópteros são predominantemente herbívoras, mas apenas algumas foram usadas com sucesso no controle biológico de ervas daninhas. Exemplos incluem Tyria jacobaeae (Linnaeus) para controlar Tansy Ragwort e a piralide sul-americana, Cactoblastis cactorum (Berg), trazido para a Austrália para controlar o introduzido Opuntia cacto. Muitas mariposas e borboletas visitam frequentemente as flores em busca de néctar e são provavelmente polinizadores importantes. Em alguns casos, a relação é tão específica que algumas espécies de plantas podem ser polinizadas apenas por certas espécies de iúca de mariposas e mariposas de iúca dos Prodoxidae são exemplos.


Pine White Butterfly, foto de David Blevins

As espécies de Lepidoptera têm desempenhado papéis importantes na ciência biológica. Os padrões complexos nas asas fornecem uma excelente base para o estudo da genética e da embriologia. Muitos dos primeiros triunfos na fisiologia dos insetos vieram de experimentos com lepidópteros e a ordem desempenhou um papel vital nos estudos sobre mimetismo, coloração adaptativa e variação geográfica e sazonal. Como os requisitos de habitat e as flutuações populacionais de muitas espécies raras são bem conhecidos, os lepidópteros, especialmente as borboletas, tiveram um lugar importante no desenvolvimento de estratégias de conservação de invertebrados. A arte e a literatura estão repletas de referências à beleza, elegância e simbolismo dos lepidópteros.

Talvez a maior contribuição econômica e cultural da ordem seja a seda. Principalmente um produto de Bombyx mori (Linnaeus) (o silkmoth domesticado), este material tem sido economicamente importante por pelo menos 4000 anos e sua importação precoce para a Europa abriu conexões entre as civilizações oriental e ocidental.

Estrutura da Lepidopera

Usamos a terminologia de Kristensen (1999) para descrever a estrutura dos lepidópteros.


Ca & eumlnis espécie - Maldição dos Pescadores

Observação: estritamente o nome do gênero é Ca & eumlnis, mas como as pessoas que procuram informações na internet geralmente não incluem acentos (sinais diacríticos), como o trema acima do caractere & euml, usamos o mais fácil de digitar Caenis no texto principal desta página.

A menor das moscas com asas britânicas, a Caenis as moscas costumam ser chamadas de Maldição do Pescador. Caenis as ninfas rastejam entre o lodo e os detritos no leito do rio ou lago, e muitas vezes são cobertas por pedaços de detritos que agem como camuflagem - como no exemplo mostrado aqui.

Caenis as ninfas vivem nos leitos dos trechos de fluxo lento dos rios e nas áreas rasas da maioria dos tipos de águas paradas. Em geral, quanto menor o fluxo e quanto mais serapilheira cai na água, mais adequado é o habitat para esses insetos amantes do silte. Identificando Caenis ninfas em nível de espécie é difícil e, para algumas espécies, é necessário usar um microscópio para examinar pequenos detalhes que não são claramente visíveis a olho nu. Caenis Horaria, na foto acima, é uma exceção: tem um pronoto (a cobertura em placa do primeiro segmento do tórax) que é largo na frente e muito mais estreito na parte traseira, e a margem lateral do pronoto é notavelmente côncava.

Dun of Caenis Rivulorum

E daí? Nada. exceto que se você começar a se interessar pelas moscas que está tentando imitar, é inevitável que você se pergunte por que entomologistas profissionais dividiram o Caenis voa em várias espécies. (Pelo menos seis Caenis espécies são bastante comuns na Grã-Bretanha e na Irlanda, e outras três espécies menos difundidas são conhecidas por ocorrerem em certas localidades.)

Uma pequena ninfa com cauda de faisão avançou pela margem lamacenta de uma piscina para imitar um Caenis ninfa em busca de restos vegetais, mas, em minha experiência, há pouca justificativa para isso. Uma minúscula ninfa artificial pescada no filme de superfície vale a pena tentar no início de um Caenis eclodir, mas assim que essas pequenas moscas começarem a emergir aos milhões, esperar que uma truta escolha o seu minúsculo pedaço em vez de qualquer uma das miríades de outras parece uma estratégia sem esperança. Por que não apenas assistir? Ou talvez experimente uma mosca muito grande na esperança de que uma truta gananciosa queira mudar de dieta!

Dun ou subimago

No estágio pardo, a maior parte do Caenis todas as espécies encontradas na Grã-Bretanha e na Irlanda parecem muito. Todos retêm três caudas nos estágios de inseto alado de seus ciclos de vida. Alguns surgem pela manhã e outros ao anoitecer. Eles deixam a água como duns, voam para o arbusto, rocha ou outro objeto mais próximo (como uma pessoa!) Em terra seca e imediatamente trocam de pele para se tornarem fiandeiros. Esta é uma visão incrível, e se você nunca viu uma mosca alada transpor de castanho para fiandeiro, você sabe o que fazer: ficar ao lado de um lago de lama, canal ou rio de fluxo lento durante um Caenis eclodir e as mangas do seu casaco serão sua 'tela de filme da vida selvagem'.

Caenis duns podem ser copiados por imitações totalmente brancas. O desafio é amarrar as moscas pequenas o suficiente para serem representações confiáveis ​​dessas minúsculas moscas com asas ascendentes, e os anzóis tamanhos 22 a 26 são pequenos demais para a maioria das pessoas. O amável Caenis as imitações mostradas aqui foram amarradas pela maravilhosa estilista irlandesa Alice Conba.

Spinner ou imago

Caenis os fiandeiros são geralmente muito semelhantes aos duns, mas suas caudas são muito mais longas e suas asas mais transparentes.

Às vezes pode haver tantos Caenis emergindo como duns e retornando à água como spinners que os flyfishers acham impossível tentar trutas com uma imitação correspondente. No entanto, durante incubações relativamente esparsas, uma pequena mosca branca ou de cor creme às vezes resolve. Não há necessidade de ter padrões separados para combinar o pardo e o fiandeiro e, certamente, nenhuma razão para diferenciar as várias espécies de Caenis. Este é um caso de tamanho único e um padrão serve para todos.

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Materiais e métodos

A presença de herbívoros se alimentando de M. calvescens frutas foram investigadas em dois locais de campo na Costa Rica, Cariblanco (10 ° 18′59 ″ N e 84 ° 11′00 ″ W, 986 m acima do nível do mar) e Vereh (09 ° 40′00 ″ N e 83 ° 31 ′ 40 ″ W, 1.200 m acima do nível do mar), distantes aproximadamente 60 km. Para aumentar a abundância desta planta normalmente incomum, 200 M. calvescens plantas foram plantadas entre 2003 e 2005 em um terreno limpo de aproximadamente 1.000 m 2 em Cariblanco, enquanto 50 M. calvescens as plantas foram plantadas durante o mesmo período em uma parcela de 300 m 2 em Vereh. No momento deste estudo, as plantas variavam de árvores imaturas com cerca de 1 m de altura a árvores reprodutivamente maduras com até cerca de 4 m de altura. Nestes sítios, localizados em Cariblanco e Vereh, também havia populações naturais de M. calvescens, consistindo de 10–20 árvores maduras variando de 3 a 8 m de altura em vários hectares de floresta tropical secundária nativa levemente perturbada. No local de Cariblanco, as condições eram muito úmidas (& gt7.000 mm de precipitação anual) sem estação seca. O local de Vereh foi menos úmido (precipitação anual de aproximadamente 3.000 mm) com uma estação seca de 1 a 2 meses. Em um local adicional plantado em Sabanilla de Montes de Oca (09 ° 56′48 ″ N e 84 ° 02′45 ″ W, 1.200 m acima do nível do mar), localizado a mais de 60 km de populações naturais conhecidas de M. calvescens, não encontramos M. luteofascia.

Os estudos de laboratório foram conduzidos no Departamento de Biologia da Universidade da Costa Rica em San Pedro de Montes de Oca. Durante o período em que os insetos foram criados em condições de laboratório, ocorreram aproximadamente 11-12: 13-12 (L: D), com temperatura e umidade relativa de 22 ± 3 ° C e 68 ± 5%, respectivamente. Amostras de voucher de M. luteofascia foram depositados no Museu de Zoologia do Departamento de Biologia da Universidade da Costa Rica no Instituto de Ciencias Agrarias, Consejo Superior de Investigaciones Científicas (CSIC), Madrid, Espanha, e no Centro de Biodiversidade Naturalis, Museu Nacional de História Natural (RMNH, Rijksmuseum voor Natuurlijke Historie), antigas coleções de Zoologia de Leiden, Leiden, Holanda.

Descrição e Biologia de M. luteofascia

No total, 16 insetos adultos coletados em Cariblanco e Vereh foram usados ​​para a descrição da espécie. Para determinar a morfologia da espécie, a genitália foi dissecada seguindo metodologia publicada anteriormente (Robinson 1976, Brown 1997). Para as lâminas da genitália masculina, fenosafranina foi usada para a coloração. O clorazol preto foi usado para tingir as partes não esclerotizadas da genitália feminina. Para determinar o número de instares de M. luteofascia, um total de 274 larvas foram coletadas nos locais de campo em Cariblanco e Vereh e colocadas em etanol 70%. A largura da cápsula cefálica, medida como a distância entre os gêneros, foi registrada para cada larva usando um estereomicroscópio com um micrômetro (Dyar 1890). No total, 32 pupas de M. luteofascia foram colocados individualmente em frascos de vidro de 50 ml e seguidos até a emergência dos adultos. Para estudar o parasitismo de M. luteofascia, infrutescências com frutos maduros foram coletadas em Cariblanco e Vereh e levadas ao laboratório para determinar as taxas de parasitismo de. M. luteofascia larvas. Aproximadamente três infrutescências, cada uma de uma árvore separada, foram coletadas em cada local em várias datas em novembro e dezembro de 2006. De cada infrutescência, aproximadamente 5–20 larvas de último ínstar foram removidas e colocadas em um frasco de vidro de 100 ml com 1,5 cm de vermiculita úmida no fundo para pupação. Frascos com pupas foram verificados a cada 2 dias para a emergência de parasitóides ou M. luteofascia adultos.

Abundância e danos de herbívoros em M. calvescens Frutas

As infrutescências foram coletadas de Cariblanco e Vereh para determinar o número de frutos com larvas de diferentes insetos herbívoros e os danos presentes por fruto. A amostragem foi conduzida de junho a agosto de 2006 em Cariblanco e de janeiro a março de 2007 em Cariblanco e Vereh. No total, 3–15 infrutescências de um total de 3–10 árvores diferentes foram coletadas a cada mês por local e 56–150 frutos selecionados aleatoriamente foram dissecados de cada infrutescência. A maturidade de cada fruta foi classificada visualmente em verde, rosa esverdeado, rosa ou roxo. Após a dissecção, os herbívoros foram identificados e o dano aos frutos foi classificado de acordo com seis níveis de dano: 0 (nenhum dano), 5, 25, 50, 75 ou 100% de dano (ou seja, falta de polpa).

Impacto de M. luteofascia em Números de Sementes e Germinação de Sementes

Para quantificar o efeito de M. luteofascia no número de sementes e na germinação dos frutos, foi determinado o número de sementes em um total de 80 frutos maduros. Os frutos foram selecionados aleatoriamente a partir de infrutescências infestadas coletadas de três plantas diferentes em Vereh em março de 2007. Após a dissecção, cada fruto foi classificado como não danificado (n = 63) contendo um M. luteofascia larva e tendo 50-75% de danos aos frutos (n = 5) ou contendo um M. luteofascia larva e tendo 75-100% de danos aos frutos (n = 12). A amostragem foi direcionada para frutos dos quais larvas totalmente alimentadas já haviam emergido, para quantificar os impactos máximos esperados de M. luteofascia em uma base por fruta. Para esta parte específica do estudo, todas as frutas amostradas mostraram mais de 50% de danos. Após a contagem do número de sementes por fruto, as sementes de cada fruto foram colocadas em papel de filtro úmido em uma placa de petri de vidro (15 cm de diâmetro). As sementes foram umedecidas a cada 3 dias e a germinação foi registrada aos 40, 60, 90 e 120 dias. As sementes germinadas foram removidas em cada etapa de tempo.

Análise Estatística

Uma análise de agrupamento foi realizada com os dados de largura da cápsula usando a análise de agrupamento K-Means do SPSS versão 25 para determinar o número total de instares larvais em M. luteofascia. A classificação instar com base na análise de agrupamento foi seguida por uma análise de variância unilateral (ANOVA) e o teste T2 de Tamhane (P ≤ 0,05) para separar as médias. Esta análise foi usada anteriormente para determinar os instares larvais em outra espécie de lepidóptero (Castillo et al. 2014). As diferenças na porcentagem de frutas em relação ao número total de frutas amostradas que não foram danificadas ou danificadas por um herbívoro em particular foram analisadas usando um teste de proporções de duas amostras unicaudais (P ≤ 0,05) com Stata versão 15.1. As diferenças nos danos aos frutos (entre meses no mesmo local e entre locais) foram analisadas por Kruskal-Wallis e Mann-Whitney você testes com o SPSS versão 25. As correlações entre o dano aos frutos e a maturidade dos frutos foram realizados usando a correlação de Spearman unicaudal com o SPSS. Os testes de Kruskal-Wallis também foram usados ​​para comparar as diferenças nos danos aos frutos entre os diferentes níveis de maturidade dos frutos. Os dados comparando o número de sementes e a porcentagem de germinação de sementes de acordo com o dano ao fruto foram analisados ​​com Kruskal-Wallis e Mann-Whitney você testes com SPSS.


Earworm do milho (Helicoverpa zea)

Amarelo, rosa e verde são cores comuns encontradas nas larvas do verme da espiga do milho.

Nome (s) comum (is): lagarta da orelha do milho, lagarta do algodão, lagarta da soja, lagarta da fruta do tomate

Descrição

A lagarta da orelha do milho pertence à Ordem dos Lepidópteros (borboletas, mariposas e mariposas) e o estágio adulto é uma mariposa robusta, de corpo acastanhado a amarelo amanteigado, com envergadura de cerca de 1 1/4 a 1 1/2 polegadas. Geralmente há faixas mais escuras presentes perto das pontas das asas dianteiras e traseiras.

Existem seis instares larvais (ou estágios). O primeiro ínstar tem cerca de 1/16 ”de comprimento e o 6º ínstar pode crescer até 1 3/4 polegadas de comprimento. Não existe uma cor única para as larvas, e elas podem variar do amarelo ao rosa e ao verde. Independentemente da coloração, haverá uma faixa mais escura abaixo da linha média do topo da larva, e faixas um pouco mais largas nas bordas laterais do corpo quando visto de cima. Uma faixa amarelada é freqüentemente encontrada na lateral das larvas, e a faixa contém os espiráculos circulares escuros, os orifícios que deixam o ar entrar no corpo do inseto. As larvas têm muitos microespinhos no dorso e nas laterais do corpo, que não são encontrados em outras pragas comuns da lagarta do milho. A cabeça é alaranjada a bronzeada, mas pode ser mais acastanhada em algumas larvas.

Larva jovem da lagarta da orelha do milho em cânhamo. Observe os microespinhos proeminentes no corpo. Forma verde de uma larva do verme da orelha do milho de estádio tardio. Adulto de lagarta da orelha do milho. Kate Crumley.

Origem e Distribuição

A lagarta da orelha do milho é nativa do Novo Mundo e hiberna no Texas, tem várias gerações aqui e é uma ameaça durante a estação de cultivo. Nos Estados Unidos, acredita-se que seja capaz de passar o inverno ao sul de cerca de 40 graus de latitude norte, mas à medida que o verão avança, as mariposas voam para o norte e infestam todo o país e parte do Canadá.

Verme da orelha do milho adulto com cor amarela amanteigada típica.

Habitat e hospedeiros

A lagarta da orelha do milho tem uma gama de hospedeiros alimentares extremamente ampla e pode ser encontrada onde quer que suas plantas hospedeiras cresçam. Existem muitas plantas não agrícolas nas quais a lagarta da orelha pode se desenvolver no início do ano, antes que as safras e os jardins sejam plantados. Os hospedeiros cultivados incluem milho doce, milho de campo, feijão verde, feijão-vagem, feijão-nhemba, ervilha, pimentão, berinjela, alface, batata doce, arroz, algodão, uva, morango e muitos outros. Normalmente, o “verme” no milho doce é a lagarta da espiga do milho. A lagarta da orelha do milho também é uma praga muito significativa na produção de cânhamo ou cannabis, e não é incomum encontrar larvas consumindo botões e folhas.

Vida útil

Os ovos são colocados individualmente nas plantas hospedeiras. Estas são brancas peroladas quando colocadas e tornam-se um pouco mais amarelas ao longo dos três dias ou mais antes de eclodirem.O estágio larval, compreendendo seis instares larvais, dura 12 a 15 dias durante a parte quente da estação de crescimento, mais quando está mais frio. Quando totalmente crescidas, as larvas de 6º instar deixam a planta hospedeira, enterram-se no solo e entram no estágio de pupa, que dura 10 & # 8211 15 dias durante o verão. Os adultos emergem do solo, acasalam-se e dispersam-se para botar ovos. Às vezes eles se dispersam muito

Ovo de lagarta da espiga do milho recém-depositado na seda do milho.

longas distâncias em frentes de tempestade. As mariposas consomem líquidos e néctar como alimento e não são prejudiciais às plantas.

Gestão

Se você mora no estado do Texas, entre em contato com o agente local ou entomologista para obter informações de gerenciamento. Se você mora fora do Texas, entre em contato com o ramal local para obter as opções de gerenciamento.

As práticas de manejo diferem dependendo de qual cultura está sendo danificada. No milho do campo e no milho doce, os ovos são colocados em sedas e as larvas recém-eclodidas alimentam-se no canal da seda e depois na ponta da espiga. Nesse caso, há pouca oportunidade de uso de inseticidas porque as larvas estão em espaços protegidos. Se os inseticidas forem usados, eles devem ser aplicados no momento da postura dos ovos, geralmente com aplicações repetidas desde o momento da sedimentação até depois que o estágio de seda marrom é atingido.

O controle é mais direto quando os vermes estão se alimentando do lado de fora da folha ou da estrutura de frutificação. Neste caso, formulações pulverizáveis ​​de Bacillus thuringiensis pode ser aplicado se um método de controle menos tóxico for desejado. Deve-se notar, no entanto, que os vermes do milho agora são resistentes a muitas das toxinas Bt nesses inseticidas pulverizáveis ​​porque desenvolveram resistência a elas no milho Bt (OGM) nos últimos 25 anos em que o milho tem sido usado nos Estados Unidos. Os piretróides sintéticos podem ser eficazes, especialmente em larvas menores, mas também ocorre que os vermes do milho desenvolveram níveis significativos de resistência aos piretróides sintéticos devido ao seu amplo uso na agricultura. O clorantraniliprol é altamente eficaz nas larvas do verme da espiga do milho, mesmo nas larvas grandes. O espinosade e o espinetoram também são muito eficazes, assim como o antigo inseticida carbaril (Sevin). Os produtores agrícolas têm mais opções disponíveis e devem consultar um guia de controle específico da cultura.

Citações

Imagens Bugwood


Fontes de Referência

Mattheck, C. e Weber, K. Manual de decaimento de madeira em árvores. Arboricultural Association 2003.

Dicionário dos Fungos Paul M. Kirk, Paul F. Cannon, David W. Minter e J. A. Stalpers CABI, 2008

A história taxonômica e as informações de sinônimos nestas páginas são extraídas de muitas fontes, mas em particular da Lista de Verificação de Fungos da British Mycological Society e (para basidiomicetos) da Lista de Verificação de Kew dos Basidiomycota britânicos e irlandeses.


Galeria Tricholomataceae e Hydnangiaceae

o Tricholomataceae constitui um grupo muito grande de mais de 100 gêneros, todos com carne branca ou muito pálida e impressões de esporos que variam do branco ao rosa pálido ou lilás. Alguns cogumelos neste grupo são comestíveis, enquanto outros (Clitocybe rivulosa é um exemplo) podem ser assassinos.

Muitos desses cogumelos são bastante distintos e podem ser identificados com alta confiança por meio de um exame cuidadoso a olho nu. No entanto, existem alguns fungos superficialmente semelhantes neste grupo, onde uma espécie é um comestível de primeira e a outra um envenenador grave. Portanto, muito cuidado é essencial ao coletar cogumelos selvagens do Tricholomataceae família para alimentação, as espécies cinza e marrom-acinzentadas devem ser evitadas de uma vez.

Existem pelo menos 750 espécies europeias registradas na família Tricholomataceae.

Todas as cores do arco-íris e várias outras.

Impressões de esporo do Tricholomataceae são brancos, esbranquiçados, rosa-claros ou lilases-claros, mas na maioria das outras características macroscópicas há grande diversidade dentro do grupo. As brânquias podem ser anexadas, adnate ou decurrentes stipes podem ter um anel ou nenhum anel e as tampas vêm em toda a gama de cores de fungo - branco, amarelo, laranja, rosa, marrom, verde e cinza - e no caso de Clitocybe odora, retratado aqui, até mesmo azul brilhante!

Para obter mais informações sobre fungos nas famílias Tricholomataceae e Hydnangiaceae e uma visão mais aprofundada da ecologia e estrutura das espécies apresentadas em nossas páginas da Galeria Tricholomataceae, consulte o último livro de Pat O'Reilly Fascinado por Fungos, cujas cópias assinadas pelo autor estão disponíveis online aqui.

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Kansas State University


Close do ácaro do trigo (SEM).

Introdução

O ácaro do trigo é amplamente distribuído na América do Norte. Esses minúsculos ácaros eriofídeos são vetores importantes do vírus do mosaico do trigo (WSMV), que é uma das doenças mais destrutivas do trigo no oeste do Kansas. Eles também são vetores do Vírus das Planícies Altas, uma doença do trigo e do milho nas Grandes Planícies, e do Vírus do Mosaico Triticum (TrMV). As infecções combinadas de WSMV e TrMV podem ser especialmente prejudiciais no trigo.

Historia de vida

Os ácaros dos cachos do trigo adultos e imaturos são organismos minúsculos, brancos, em forma de charuto, com quatro patas perto da cabeça. Eles são quase invisíveis a olho nu e se encaixam nas nervuras das folhas do trigo. Os ovos são colocados em fileiras ao longo das nervuras das folhas. Os ácaros se reproduzem mais rapidamente em 75 ° a 85 ° F. A reprodução para em temperaturas próximas de zero, mas os ácaros podem sobreviver por vários meses em temperaturas próximas de zero e por vários dias a 0 ° F. Em boas condições, uma geração pode ser concluída em 10 dias. A maioria dos ácaros são encontrados nas folhas terminais e se movem para cada nova folha à medida que ela emerge. Populações pesadas de ácaros podem fazer com que as margens das folhas se movam ou se enrolem para dentro, daí o nome. Conforme a planta do trigo seca, os ácaros do trigo se reúnem nas folhas da bandeira e até mesmo nas glumas da cabeça, onde são captados pelas correntes de vento e carregados para seus hospedeiros de grama durante o verão, incluindo trigo voluntário, milho e algumas outras gramíneas . À medida que os hospedeiros de verão começam a secar, ocorre o processo inverso e os ácaros são carregados pelos ventos para o trigo de inverno recém-emergido. Granizo durante o período de descaminho pode levar a grandes populações de super-verão, derrubando cabeças contendo ácaros do trigo no chão e iniciando o voluntariado precoce. Este voluntário precoce pode então ser imediatamente infestado com ácaros do trigo.

Práticas de gerenciamento

A destruição do trigo voluntário pelo menos 2 semanas antes do plantio do trigo de inverno no outono é a prática de manejo mais eficaz para esse ácaro e a doença que ele transmite. Evitar o plantio precoce também pode reduzir o número de ácaros do trigo e o tempo que eles têm para transmitir a estria do trigo. A seleção varietal também pode ser uma forma importante de reduzir o impacto da estria do trigo. Os produtores em áreas onde a estria de trigo é comum devem evitar variedades que são altamente suscetíveis ao WSMV. O cultivar RonL KSU é um trigo branco que apresenta um alto nível de resistência ao WSMV, desde que não seja exposto a temperaturas extremamente altas em estágios de crescimento vegetativo. Assim, RonL deve ser plantado no meio da temporada para garantir que sua resistência não seja comprometida por altas temperaturas que podem ocorrer no início do outono ou no final da primavera. Informações adicionais sobre a susceptibilidade varietal à estria de trigo estão disponíveis na publicação KSRE MF-991: Wheat Variety Disease and Insect Ratings. Até o momento, o controle de ácaros do trigo com miticidas foliares não se mostrou uma prática eficaz.


Assista o vídeo: Use of the Surber Sampler (Janeiro 2022).